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Artigo de método

Métodos de estudo epitelial Transporte função das proteínas e Expressão em Native Intestino e Caco-2 células cultivadas em 3D

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DOI:

10.3791/55304

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16 de março de 2017

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Neste artigo

Aviso de errata

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Resumo

Nós descrevemos métodos simples para o estudo da regulação da função intestinal transportador de serotonina (SERT) e de expressão, utilizando um modelo in vitro de células de cultura de células Caco-2 cultivadas em 3D e um modelo ex vivo de intestino de rato. Estes métodos são aplicáveis ​​para o estudo de outros transportadores epiteliais.

Resumo

O epitélio intestinal tem importantes funções de transporte e de barreira que desempenham um papel-chave nas funções fisiológicas normais do corpo, proporcionando uma barreira para partículas estranhas. transporte epitelial prejudicada (íon, nutrientes, ou drogas) tem sido associada a muitas doenças e pode ter consequências que ultrapassam as funções fisiológicas normais dos transportadores, como por influenciar a integridade do epitélio e o microbioma intestinal. Compreendendo a função e a regulação das proteínas de transporte é crítico para o desenvolvimento de intervenções terapêuticas melhoradas. O maior desafio no estudo do transporte epitelial é o desenvolvimento de um sistema modelo adequado que recapitula características importantes das células epiteliais intestinais nativas. Vários modelos in vitro de cultura de células, tais como células Caco-2, T-84, e células HT-29-Cl.19A são normalmente utilizados em pesquisa de transporte epitelial. Estas linhas celulares representam uma abordagem reducionista para modelar o epithelium e têm sido utilizados em vários estudos mecanicistas, incluindo o seu exame de interacções epiteliais-microbiana. No entanto, as monocamadas de células não reflectem com precisão as interacções célula-célula e o microambiente in vivo. As células cultivadas em 3D mostraram-se promissores modelos para estudos de permeabilidade de drogas. Mostra-se que as células Caco-2 em 3D podem ser utilizados para estudar os transportadores epiteliais. É também importante que os estudos em células Caco-2 são complementados com outros modelos para excluir efeitos específicos de células e para ter em conta a complexidade do intestino nativo. Vários métodos têm sido anteriormente utilizados para avaliar a funcionalidade de transportadores, como o saco evertido e absorção nas células epiteliais isolados ou em vesículas da membrana do plasma isoladas. Levando em consideração os desafios no campo com respeito a modelos ea medição da função de transporte, demonstramos aqui um protocolo para crescer células Caco-2 em 3D e descrevem o uso de uma câmara Ussing como umabordagem eficaz para medir o transporte da serotonina, como no epitélio intestinal polarizadas intactas.

Introdução

O epitélio intestinal é equipado com várias proteínas de transporte (canais, ATPases, co-transportadores e trocadores) que realizam numerosas funções que vão desde a absorção de nutrientes, electrólitos, e medicamentos para a secreção de fluido e de iões no lúmen. proteínas de transporte gerar gradientes electroquímicos que permitem o movimento de iões ou moléculas de um modo vectorial. Isto é conseguido por as distribuições assimétricas de os sistemas de transporte nas membranas basolaterais e apicais de células epiteliais polarizadas. Além disso, as junções apertadas, que amarrar as células epiteliais adjacentes, desempenham um papel importante neste processo, serv....

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Protocolo

1. Estudo de intestinal transportador num sistema de cultura 3D de Caco-2: Cultivo Cultura de Células Caco-2 3D sobre uma mistura de proteína gelatinoso

  1. factor de crescimento reduzida Descongelar mistura gelatinosa proteína em gelo durante 8 h (ou O / N) a 4 ° C. Uma vez descongelada, fazer 1 mL ou 500 mL alíquotas para uso ou armazenar a -20 ° C para uso posterior.
  2. No dia da cultura, as placas de cultura pré-resfriamento (para extracção de ARN e proteína) ou lâminas de câmaras (por imunocoloração) em gelo. Adicionar 30 uL de mistura de proteína gelatinosa a cada poço de uma corrediça de vidro compartimentado oito poços (ou 120 uL por poço de uma....

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Resultados

A imunocoloração em 3D Caco-2 cistos é mostrado na Figura 1. Uma imagem representativa de um plano XY mostrando lúmen bem demarcadas do cisto 3D coradas com faloidina actina é representado na Figura 1A. O lado voltado para o lúmen denota o lado apical. As células epiteliais de cultura em resultado ambiente 3D num fenótipo epitelial robusto. Diferentes células Caco-2 cistos no dia 12, quando a actina e SERT foram co-corados, são mostradas na Figur.......

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Discussão

As monocamadas de células Caco-2 completamente diferenciadas foram utilizados extensivamente como monocamadas epiteliais polarizadas para estudar o transporte intestinal 10, 11, 12, 13, 14, 15. No entanto, para imitar a organização fisiológico das células epiteliais intestinais, tem havido um interesse considerável no desenv.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Agradecemos ao Sr. Christopher Manzella, estudante de MD/PhD no laboratório RKG, por ajudar a editar e revisar nosso manuscrito.

....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
10x PBSATCCATCC® HTB&tímido; 37™Células
10x PBSCarl ZeissMicrosope para Imagem Confocal
3[H]-5-HT LabtekII152453Células de cultura para microscopia
5-HT Gibco70013-032Não é uma substância perigosa
95% O2- 5% CO2 cilindroKPL71-00-27Não é uma substância perigosa
Ágar (para placas de ágar)FischerBP151-100Toxicidade aguda, Ora
Ágar (para eletrodo)SigmaG7126-1KGNão é uma substância perigosa
Alexa Fluor FaloidinaSigmaC3867-1VLNão é uma substância perigosa
Albumina de soro bovino (BSA)SigmaP6148-500GNocivo se ingerido ou inalado
CaCl2LifeTechnologiesA12380Não é uma substância perigosa
Células Caco-2 SigmaA8806-5GNão é uma substância perigosa
Tampão de lise celularFischerBP337-100Não é um substância perigosa
Lâminas ChaberedSigmaS5886-1KGNão é uma substância perigosa
Solução de colágeno tipo 1SigmaS8045-500G
EletrodosSigmaS-0876
EMEMGibco da Life Technologies25200-056
Soro fetal bovino (FBS)Corning356234usado como matriz extracelular
FluoxetinaQiagen74104
GentamicinaATCC30-2003 Mídia deCultura
Sinalização Celular de Glicina, Danvers, MA
Hepes Roche11836145001
IndometacinaGibco da Life Technologies15070-063
K2HPO4Gibco da Life Technologies15710-064
KOHGibco da Life Technologies15630-080
Ácido L-ascórbico líquida 10082147da Gibco by Life
Technologies Gibco by Life Technologies70013--032
LSM710 MetaPhysiologic Instruments, San Diego, CA EM-CSYS-8
de Manitol, San Diego, CA P2304
MatrigelPhysiologic Instruments, San Diego, CA VCC MC8
MgCl2Physiologic Instruments, San Diego, CA DM MC6
Multicanal Tensão/corrente ClampPhysiologic Instruments, San Diego, CA P2300
NaClPhysiologic Instruments, San Diego, CA P2023-100
NaClFisher Scientific, Hampton, NHBP1423
NaHCO3Sigma-Aldrich, St Louis, MOS5886
Soro de cabra normal (NGS, 10%)Fisher Scientific, Hampton, NHS233
Paraformaldeído (PFA)Sigma-Aldrich, St Louis, MOP288
Pen-StrpSigma-Aldrich, St Louis, MOC3881
Reagente de ensaio de proteínaSigma-Aldrich, St Louis, MO10420
Coquetel de inibidor de proteinaseMEDOX, Chicago, IL estilo G- 12300
RNA easy Mini kitSigma-Aldrich, St Louis, MOM4125
Módulo de Entrada de Eletrodo de Canal Único Sigma-Aldrich, St Louis, MOA92902
Controles deslizantes para câmaras snapwellSigma-Aldrich, St Louis, MOH9523
Fosfato de sódio (Na2HPO4)Sigma-Aldrich, St Louis, MOF132
Hidróxido de sódio (NaOH)Sigma-Aldrich, St Louis, MOT7039
TGF-β 1Perkin-Elmer, Waltham, MANFT1167250UC
Triton X-100Packard Instruments, Downers Grove, ILB1600
Tripsina EDTASigma-Aldrich, St Louis, MO221473
Tween-20Bio Rad Laboratories, Hércules, CA5000006
Câmara de Ussing (somente câmara)Sigma-Aldrich, St Louis, MOI7378
Sistemas de Câmara UssingSigma-Aldrich, St Louis, MOA1296
de CélulasContador de cintilação Instrumentos Fisiológicos

Referências

  1. Simon-Assmann, P., Turck, N., Sidhoum-Jenny, M., Gradwohl, G., Kedinger, M. In vitro models of intestinal epithelial cell differentiation. Cell Biol Toxicol. 23 (4), 241-256 (2007).
  2. Shen, C., Meng, Q., Zhang, G. Design of 3D printed insert for hanging culture of Caco-2 cells. B....

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Reimpressões e permissões

Errata


Formal Correction: Erratum: Methods to Study Epithelial Transport Protein Function and Expression in Native Intestine and Caco-2 Cells Grown in 3D
Posted by JoVE Editors on 1/01/1970. Citeable Link.

A correction was made to the Authors section in: Methods to Study Epithelial Transport Protein Function and Expression in Native Intestine and Caco-2 Cells Grown in 3D.

One of the authors' names was corrected from:

Arivarasu N. Anabazhagan

to:

Arivarasu N. Anbazhagan

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