É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Expressão, Purificação e Actividade Antimicrobiana de S100A12

8.1K vistas

⸱

DOI:

10.3791/55557

⸱

13 de maio de 2017

 ,  ,  ,  , 
1Department of Life and Physical Sciences, Fisk University, 2Tennessee Valley Healthcare Systems, U. S. Dept. of Veterans Affairs, 3Department of Medicine - Division of Infectious Diseases, Vanderbilt University Medical School, 4Department of Biochemistry, Vanderbilt University

Neste artigo

Resumo

Aqui, apresentamos um método para expressar e purificar S100A12 (calgranulina C). Descrevemos um protocolo para medir sua atividade antimicrobiana contra o patógeno humano H. pylori .

Resumo

As proteínas de calgranulina são mediadores importantes da imunidade inata e são membros da classe S100 da família EF-mão de proteínas de ligação de cálcio. Algumas proteínas S100 têm a capacidade de se ligar a metais de transição com alta afinidade e efetivamente seqüestrar eles longe de patógenos microbianos invasores em um processo que é denominado "imunidade nutricional". O S100A12 (EN-RAGE) liga tanto o zinco como o cobre e é altamente abundante em células imunes inatas tais como macrófagos e neutrófilos. Relatamos um método refinado para a expressão, enriquecimento e purificação de S100A12 na sua configuração ativa de ligação a metais. A utilização desta proteína em análises de crescimento e viabilidade bacteriana revela que S100A12 tem actividade antimicrobiana contra o patogénio bacteriano Helicobacter pylori . A actividade antimicrobiana baseia-se na actividade de ligação ao zinco de S100A12, que quela o zinco nutriente, privando assim H. pylori que requer zinco para crescimento e pRoliferation.

Introdução

As prote�as S100 s� uma classe da fam�ia EF-hand de prote�as de liga�o de c�cio com uma diversidade de fun�es 1 . Eles são expressos de uma forma específica de tecidos e células, e regulam um amplo espectro de funções celulares 2 , 3 . Exclusivas para proteínas de ligação ao cálcio, as proteínas S100 exibem funções intracelulares e extracelulares 4 , 5 . Dentro da célula, a ligação de Ca2 + induz uma alteração conformacional que expõe uma superfície hidrofóbica que alveja especificamente parceiros de ligação à proteína 6 . Este mecanismo intracelular regula processos importantes como proliferação celular, diferenciação e metabolismo energético. No meio extracelular, as proteínas S100 exibem duas funções 7 . Num deles, actuam como proteínas associadas a padrões moleculares associados (DAMP) e iniciam uma pró-inflamaçãoResposta imune atórica através da interação com receptores de reconhecimento de padrão 8 , 9 . Além disso, vários membros da classe de proteínas S100 sequestam metais de transição, uma função que serve para privar patógenos microbianos em um processo denominado imunidade nutricional 10 , 11 .

S100A12 (também conhecida como calgranulina C e EN-RAGE) é altamente expressa em macrófagos e neutrófilos e tem sido identificada como potencial biomarcador para doenças inflamatórias 12,13 . Além de ligar o cálcio nos seus locais EF-Hand, S100A12 tem dois locais de ligação de metais de transição de alta afinidade localizados em extremidades opostas da interface dimérica 14 , 15 . Cada sítio de ligação é constituído por três resíduos de histidina e um resíduo de ácido aspártico e pode quelar zinco ou cobre 16 , 17 . Recentemente, relatamos que a fome de zinco dependente de S100A12 é importante na regulação do crescimento de Helicobacter pylori e da atividade de fatores de virulência pró-inflamatórios 18 .

H. pylori infecta o estômago de cerca de metade da população humana do mundo; Tornando-se sem dúvida um dos mais bem sucedidos patógenos bacterianos [ 19] . A infecção com H. pylori pode levar a resultados significativos da doença gástrica incluindo gastrite, úlcera péptica e duodenal, linfoma de tecido linfóide associado à mucosa (MALT) e adenocarcinoma gástrico invasivo (câncer de estômago). O câncer de estômago é a principal causa de morte associada ao câncer de não-cardia no mundo, eo maior fator de risco associado para câncer de estômago é a infecção por H. pylori .

H. pylori persiste no nicho gástrico apesar de um robuSt resposta imune ao patógeno, sublinhando a necessidade de uma melhor compreensão dos mecanismos imunes de controle desta infecção bacteriana 20 , 21 , 22 , 23 . A inflamação associada ao H. pylori é caracterizada por uma profunda infiltração de células polimorfonucleares, ou neutrófilos, que depositam um repertório de proteínas antimicrobianas, incluindo S100A12, no local da infecção 18 , 24 , 25 . Em um esforço para entender o complexo diálogo entre hospedeiro e patógeno, buscamos refinar a técnica para purificar S100A12 e usá-lo para estudar o efeito antimicrobiano que exerce sobre este patógeno clinicamente relevante. O protocolo abaixo descreve uma técnica melhorada para a purificação de S100A12 no seu estado biologicamente activo; Capazes de se ligar a metais nutrientes com altaE eliminando-os de microrganismos invasores. Além disso, os métodos abaixo destacam a utilidade desta proteína como um reagente crítico para estudar o mecanismo pelo qual as moléculas antimicrobianas inatas restringem o crescimento de patógenos bacterianos.

As proteínas da família S100A ganharam apreciação como um importante grupo de moléculas do sistema imune inatas que participam na sinalização imune bem como na defesa do hospedeiro 27 . O mais bem estudado destes é a calprotectina (MRP-8/14, calgranulina A / B, S100A8 / A9) 28 , 29 , 30 . A calprotectina é uma proteína associada a neutrófilos que forma um heterodímero das subunidades S100A8 e S100A9 que liga metais de transição na interface dímero 31 . Verificou-se que a calprotectina possui dois locais de ligação de metal: o local 1 pode ligar Zn2 + , Mn2 + ou Fe2 + e o sítio 2 pode Se Zn2 + 31 , 32 . Numerosos relatos demonstraram que a calprotectina tem atividades antimicrobianas contra diversos agentes patogênicos incluindo Staphylococcus aureus , Candida albicans , Acinetobacter baumannii , Klebsiella pneumoniae , Escherichia coli e H. pylori e que os efeitos inibitórios são devidos à atividade de quelação de metal da calprotectina 25,28 , 29 .

Trabalhos anteriores demonstraram que a calprotectina exerce numerosas atividades sobre H. pylori, incluindo a alteração da estrutura do lípido A na membrana externa, reprimindo o sistema de secreção tipo IV (que é um importante fator de virulência proinflamatório dentro de H. pylori ), induzindo a formação de biofilme e reprimindo Crescimento e viabilidade de H. pylori de uma forma dependente da doseClass = "xref"> 25 , 33 . Além disso, os ensaios genéticos e bioquímicos revelaram que a actividade antibacteriana da calprotectina contra H. pylori foi largamente derivada da sua capacidade para ligar o zinco nutriente 25 . H. pylori requer zinco, como foi determinado por pesquisas anteriores, que utilizou um meio quimicamente definido para determinar os requisitos de micronutrientes para este patógeno para crescer e proliferar [ 34] . Além disso, a calprotectina foi altamente abundante nos tecidos infectados com H. pylori e associada a infiltrados neutrófilos, indicando que o hospedeiro pode empregar calprotectina como estratégia antimicrobiana durante a infecção e subseqüente inflamação 25,35.

Evidências recentes de técnicas de triagem proteômica não-direcionadas sugerem que sob condições onde espécies reativas de oxigênio são abundantes, calprotecO estanho sofre modificações pós-translacionais que alteram o local de ligação da hexa-histidina, inibindo assim a actividade de ligação do metal da proteína 36 . Como tal, nós hipotetizamos que outras proteínas da família S100A entre o vasto repertório dessas moléculas poderiam potencialmente atuar como quelantes metálicos auxiliares. Seleccionou-se S100A12 para estudo adicional porque não foi identificado no referido ecrã para modificação pós-tradução, tem a capacidade de ligar o zinco e é altamente abundante em tecidos humanos derivados de indivíduos infectados com H. pylori .

O nosso trabalho indica que S100A12 pode inibir o crescimento ea viabilidade de H. pylori de uma forma dependente da dose na estirpe G27 de H. pylori , e que a actividade antimicrobiana desta proteína pode ser invertida pela adição de zinco em excesso de nutrientes. Este trabalho complementa o nosso trabalho anterior indicando S100A12 exerceram atividade antimicrobiana contra PMSS1 e 7.13 de H. pylori , demonstrando sua ampla atividade antibacteriana contra numerosos isolados clínicos e linhagens de H. pylori adaptadas ao laboratório 18 . Juntos, estes resultados confirmam a importância de S100A12 como um mecanismo para controlar o crescimento bacteriano e proliferação via imunidade nutricional. Futuros estudos desta importante interacção hospedeiro-bactéria poderiam incluir explorar a actividade de S100A12 para reduzir a carga bacteriana dentro dos tecidos do hospedeiro ou determinar a contribuição desta proteína para a sinalização imune no contexto da infecção por H. pylori .

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

1. Expressão de S100A12

  1. Transformar células BL21 DE3 competentes com um plasmídeo pGEMEX-S100a12 utilizando um protocolo padrão de choque térmico 18 . Adicionar 1 a 5 μL de plasmídeo a 50 μL de bactérias num tubo de microcentrífuga em gelo. Incubar durante 20 min.
  2. Aquecer as células a 42 ° C durante 30 s.
  3. Incubar as células em gelo durante 2 min.
  4. Adicionar 500 μL de meio SOC às células. Incubar a 37 ° C com agitação a 250 rpm num agitador orbital durante 1 h.
  5. Placa 150 μL da reação de transformação em meio LB-agar (suplementado com 100 μg / mL de ampicilina). Incubar durante 12-16 h a 37 ° C.
  6. Escolha uma colônia. Inocular 2 mL de LB (suplementado com 100 μg / mL de ampicilina).
  7. Incubar durante 4-6 h a 37 ° C num agitador orbital (300 rpm). A OD 600 deve ler entre 1-3 unidades de absorvância.
  8. Adicionar 500 μL de cultura inicial a 50 mL de ZYM-5052 autoinduCtion 26 suplementado com 100 μg / mL de ampicilina. Para melhor arejamento e máxima expressão, use um frasco Erlenmeyer de 250 mL. Agitar (300 rpm) durante 24 h, a 37 ° C.
  9. Transferir a suspensão bacteriana para um tubo de centrífuga. Pellet as células por centrifugação (4.000 xg, 10 min) a 4 ° C.
  10. Decantar a mídia, registrar a amostra e armazenar a pasta celular a -80 ° C. A amostra é estável por anos.

2. Purificação de S100A12 utilizando cromatografia de baixa pressão

  1. Ressuspender as células em 30 mL de Tris 20 mM, pH 8,0.
  2. Sonicate a suspensão em gelo para lisar células. Utilize ~ 20 W de saída, 5 s ligado e 5 s fora do ciclo durante 5 min.
  3. Transferir a solução para tubos de centrífuga de alta velocidade. Esclarecer o lisado celular por centrifugação, 20.000 xg durante 30 min a 4 ° C.
  4. Decantar o sobrenadante e transferir para um copo de polipropileno limpo de 100 mL. Arrefecer a solução colocando o copo em gelo. Adicionar uma agitaçãoR e adicionar lentamente 11,20 g de sulfato de amónio. Deixar a solução agitar sobre gelo durante mais 1 h. Isto irá criar uma solução a 60% de sulfato de amónio e precipitar a maioria das proteínas endógenas de E. coli . S100A12 permanecerá solúvel.
  5. Centrifugar a solução a 4 ° C, 20 000 xg durante 20 minutos para sedimentar a proteína precipitada.
  6. Decantar o sobrenadante e transferir para tubos de diálise (MWCO 3.500 kDa). Dializar contra 1 L de Tris 20 mM, pH 8,0 a 4 ° C. Mude o tampão de diálise duas vezes. Permitir 4 h entre as alterações.
  7. Cromatografia de permuta aniónica
    1. Realizar a cromatografia em um sistema de baixa pressão. O caudal típico é de 1 mL / min.
    2. Equilibrar uma coluna de 5 mL de Sepharose com 10 mL de Tris 20 mM, pH 8,0.
    3. Coloque os ~ 40 mL de solução de S100A12 usando a bomba de amostra (colete o fluxo através).
    4. Lavar a coluna com 10 mL de Tris 20 mM, pH 8.
    5. Desenvolver a coluna com um gradiente 0-30% (BuFfer B é Tris 20 mM, pH 8,0, NaCl 1 M) ao longo de 19 volumes de coluna (CV, 95 mL). Recolher fracções de 5 mL.
    6. Tomar uma alíquota de 10 μL de cada fracção e analisar utilizando MES SDS PAGE com coloração Coomassie. Executar o gel utilizando uma tensão constante (20 V / cm) durante 30 min.
    7. Pool fracções contendo S100A12. S100A12 corre a ~ 10 kDa de proteína num gel desnaturante.
    8. Concentrar as fracções para 5 mL utilizando um dispositivo de ultrafiltração (MWCO 10 kDa). Centrifugar a 3000 xg durante ~ 8 min. Pegue a fração superior.
  8. Cromatografia de exclusão de tamanho
    1. Equilibrar a coluna S75 com 1 CV (120 mL) de Tris 20 mM pH 8, NaCl 100 mM.
    2. Injectar <5 mL de fracções S100A12 concentradas (a partir da cromatografia de permuta iónica).
    3. Desenvolver a coluna a um caudal de 1 mL / m em 120 mL. Recolher fracções de 5 mL.
    4. Tomar uma alíquota de 10 μL de cada fracção e analisar utilizando SDS PAGE com coloração com Coomassie. Validar a identidade proteica usandoWestern blot ou espectrometria de massa (massa molecular calculada da subunidade monomérica 10,575.0 Da, medida 10575,4 Da).
  9. Frações de pool
    1. Medir a absorv�cia da prote�a A 280 utilizando um espectrofot�etro. Use o buffer SEC como um espaço em branco. O coeficiente de extinção calculado para o homodímero S100A12 é 5960 M -1 cm -1 .
      NOTA: Rendimentos típicos são 35-45 mg de S100A12 por 50 mL de cultura.
    2. Alíquota S100A12 em tubos de microcentrífuga de 1,5 mL (1 mg / tubo), congelamento rápido em azoto líquido e armazenar a -80 ° C.

3. Ensaios de actividade antimicrobiana

  1. Colocar a estirpe G27 de H. pylori sobre placas de ágar de soja trípticas suplementadas com sangue de ovelha a 5% (placas de ágar sangue). Crescer 2-3 dias a 37 ° C em ar ambiente suplementado com 5% de dióxido de carbono.
  2. Inocular H. pylori em caldo de Brucella suplementado com 1x colesterol. Cultura sobreAgitação noturna (250 rpm) a 37 ° C em ar ambiente suplementado com 5% de dióxido de carbono.
  3. Diluir H. pylori 1:10 em 50% de caldo de Brucella, 50% de tampão de calprotectina mais 1x colesterol e cultura em meio isolado ou suplementado com 100 μM de cloreto de zinco mais 0, 100 ou 1000 μg / mL de S100A12 purificado. Cultura agitação durante a noite (250 rpm) a 37 ° C em ar ambiente suplementado com 5% de dióxido de carbono.
  4. No dia seguinte, efectuar diluições em série e placa sobre placas de agar de sangue. Deixar as colónias bacterianas crescerem durante 2-3 dias a 37 ° C em ar ambiente suplementado com 5% de dióxido de carbono. Enumerar as unidades formadoras de colónias para calcular o crescimento bacteriano na presença ou ausência de S100A12 e / ou zinco exógeno.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

S100A12 expressão e purificação

Uma purificação em três passos produziu ~ 40 mg de S100A12 recombinante a partir de 50 mL de cultura bacteriana. O primeiro passo foi uma precipitação com sulfato de amónio de proteínas endógenas de E. coli . Este passo foi seguido por cromatografia de permuta aniónica ( Figura 1A ). A proteína é rastreada por uma SDS-PAGE corada com Coomassie Brilliant Bl...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

É apresentado um protocolo eficiente para expressão e purificação de S100A12 humano. O sistema de expressão de E. coli é a ferramenta mais comum usada para a produção de proteínas recombinantes, particularmente quando são necessárias quantidades de mg para estudos bioquímicos e biofísicos. Um aperfeiçoamento chave do procedimento aqui descrito é o uso de meios de auto-indução 26 que aumenta o rendimento da proteína purificada por um factor de quase trinta em comparação com a expressão co...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Agradecimentos

Esta pesquisa foi apoiada pelo Departamento de Veteranos Assuntos Carreira Desenvolvimento Award 1IK2BX001701, CTSA prêmio UL1TR000445 do Centro Nacional para o Avanço Translational Sciences, o National Science Foundation Award Números 1547757 e 1400969, e NIH concessão GM05551. Seu conteúdo é exclusivamente da responsabilidade dos autores e não representam necessariamente visões oficiais do Centro Nacional para o Avanço das Ciências Translacionais ou dos Institutos Nacionais de Saúde.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
S100A12 Expressão
Células de expressão
BL 21 (DE3) células competentesNew England BiolabsC25271
Componentes
de pesquisa de extrato deleveduraY20020-250.0
Produtosde pesquisa NaCl InternationalS23020-500.0
pesquisa detriptonaT60060-250.0
FeCl3Sigma-AldrichF2877
MgSO4Research Products InternationalM65240-100.0
Na2HPO4Research Products InternationalS23100-500.0
KH2PO4Research Products InternationalP41200-500.0
NH4ClResearch Products InternationalA20424-500.0
Na2SO4Research Products InternationalS25150-500.0
Produtos de Pesquisa de GlicerolInternationalG22020-1.0
Produtos de Pesquisade D-glicoseG32040-500.0
lactose Sigma-AldrichL2643
Agente de seleção
ampicilinaProdutos de Pesquisa InternacionalA40040-5.0
S100A12 Purificação
AKTA Start Sistema de CromatografiaGE29-220-94
HiTrap Q Sepharaose Fast FlowGE17-5156-01
HiPrep 16/60 S-200 HRGE17-1166-01
Nanodrop lite espectrofotômetroThermo Fisher ScientificND-LITE
Tris BaseResearch ProductsInternational T60040-1000.0
H. pylori Culture
Placas de ágar sangueLab Supply CompanyBBL221261
Caldo BrucellaSigma-AldrichB3051
Colesterol (250x)Thermo Fisher Scientific12531018
NaClSigma-Aldrich793566
CaCl2Sigma-AldrichC4901
β-mercaptoetanolSigma-AldrichM6250
Tris BaseSigma-AldrichT1503
Cloreto de ZincoSigma-Aldrich229997
médios de autoinduçãoProdutos Internacional Produtos de International Internacional

Referências

  1. Schiopu, A., Cotoi, O. S. S100A8 and S100A9: DAMPs at the crossroads between innate immunity, traditional risk factors, and cardiovascular disease. Mediators Inflamm. 2013, 828354(2013).
  2. Chen, B., et al. S100A9 induced inflammatory responses are mediated by distinct damage associated molecular patterns (DAMP) receptors in vitro and in vivo. PLoS One. 10 (2), e0115828(2015).
  3. Chernov, A. V., et al. The calcium-binding proteins S100A8 and S100A9 initiate the early inflammatory program in injured peripheral nerves. J Biol Chem. 290 (18), 11771-11784 (2015).
  4. Fanjul, M., et al. Presence of MRP8 and MRP14 in pancreatic cell lines: differential expression and localization in CFPAC-1 cells. Am J Physiol. 268 (5 Pt 1), C1241-C1251 (1995).
  5. Vogl, T., Gharibyan, A. L., Morozova-Roche, L. A. Pro-inflammatory S100A8 and S100A9 proteins: self-assembly into multifunctional native and amyloid complexes. Int J Mol Sci. 13 (3), 2893-2917 (2012).
  6. Smith, S. P., Shaw, G. S. A change-in-hand mechanism for S100 signalling. Biochem Cell Biol. 76 (2-3), 324-333 (1998).
  7. Bresnick, A. R., Weber, D. J., Zimmer, D. B. S100 proteins in cancer. Nat Rev Cancer. 15 (2), 96-109 (2015).
  8. Leclerc, E., Heizmann, C. W. The importance of Ca2+/Zn2+ signaling S100 proteins and RAGE in translational medicine. Front Biosci (Schol Ed). 3, 1232-1262 (2011).
  9. Goyette, J., Geczy, C. L. Inflammation-associated S100 proteins: new mechanisms that regulate function. Amino Acids. 41 (4), 821-842 (2011).
  10. Kehl-Fie, T. E., Skaar, E. P. Nutritional immunity beyond iron: a role for manganese and zinc. Curr Opin Chem Biol. 14 (2), 218-224 (2010).
  11. Zackular, J. P., Chazin, W. J., Skaar, E. P. Nutritional Immunity: S100 Proteins at the Host-Pathogen Interface. J Biol Chem. 290 (31), 18991-18998 (2015).
  12. Realegeno, S., et al. S100A12 Is Part of the Antimicrobial Network against Mycobacterium leprae in Human Macrophages. PLoS Pathog. 12 (6), e1005705(2016).
  13. Perera, C., McNeil, H. P., Geczy, C. L. S100 Calgranulins in inflammatory arthritis. Immunol Cell Biol. 88 (1), 41-49 (2010).
  14. Moroz, O. V., et al. Structure of the human S100A12-copper complex: implications for host-parasite defence. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 59 (Pt 5), 859-867 (2003).
  15. Moroz, O. V., Blagova, E. V., Wilkinson, A. J., Wilson, K. S., Bronstein, I. B. The crystal structures of human S100A12 in apo form and in complex with zinc: new insights into S100A12 oligomerisation. J Mol Biol. 391 (3), 536-551 (2009).
  16. Moroz, O. V., Dodson, G. G., Wilson, K. S., Lukanidin, E., Bronstein, I. B. Multiple structural states of S100A12: A key to its functional diversity. Microsc Res Tech. 60 (6), 581-592 (2003).
  17. Cunden, L. S., Gaillard, A., Nolan, E. M. Calcium Ions Tune the Zinc-Sequestering Properties and Antimicrobial Activity of Human S100A12. Chem Sci. 7 (2), 1338-1348 (2016).
  18. Haley, K. P., et al. The Human Antimicrobial Protein Calgranulin C Participates in Control of Helicobacter pylori Growth and Regulation of Virulence. Infect Immun. 83 (7), 2944-2956 (2015).
  19. Cover, T. L., Blaser, M. J. Helicobacter pylori in health and disease. Gastroenterology. 136 (6), 1863-1873 (2009).
  20. Tham, K. T., et al. Helicobacter pylori genotypes, host factors, and gastric mucosal histopathology in peptic ulcer disease. Hum Pathol. 32 (3), 264-273 (2001).
  21. Wotherspoon, A. C., Ortiz-Hidalgo, C., Falzon, M. R., Isaacson, P. G. Helicobacter pylori-associated gastritis and primary B-cell gastric lymphoma. Lancet. 338 (8776), 1175-1176 (1991).
  22. Correa, P., Piazuelo, M. B. The gastric precancerous cascade. J Dig Dis. 13 (1), 2-9 (2012).
  23. de Martel, C., Forman, D., Plummer, M. Gastric cancer: epidemiology and risk factors. Gastroenterol Clin North Am. 42 (2), 219-240 (2013).
  24. Algood, H. M., Gallo-Romero, J., Wilson, K. T., Peek, R. M., Cover, T. L. Host response to Helicobacter pylori infection before initiation of the adaptive immune response. FEMS Immunol Med Microbiol. 51 (3), 577-586 (2007).
  25. Gaddy, J. A., et al. The host protein calprotectin modulates the Helicobacter pylori cag type IV secretion system via zinc sequestration. PLoS Pathog. 10 (10), e1004450(2014).
  26. Studier, F. W. Stable expression clones and auto-induction for protein production in E. coli. Methods Mol Biol. 1091, 17-32 (2014).
  27. Gilston, B. A., Skaar, E. P., Chazin, W. J. Binding of transition metals to S100 proteins. Sci China Life Sci. 59 (8), 792-801 (2016).
  28. Corbin, B. D., et al. Metal chelation and inhibition of bacterial growth in tissue abscesses. Science. 319 (5865), 962-965 (2008).
  29. Kehl-Fie, T. E., et al. Nutrient metal sequestration by calprotectin inhibits bacterial superoxide defense, enhancing neutrophil killing of Staphylococcus aureus. Cell Host Microbe. 10 (2), 158-164 (2011).
  30. Liu, J. Z., et al. Zinc sequestration by the neutrophil protein calprotectin enhances Salmonella growth in the inflamed gut. Cell Host Microbe. 11 (3), 227-239 (2012).
  31. Damo, S. M., et al. Molecular basis for manganese sequestration by calprotectin and roles in the innate immune response to invading bacterial pathogens. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (10), 3841-3846 (2013).
  32. Nakashige, T. G., Zhang, B., Krebs, C., Nolan, E. M. Human calprotectin is an iron-sequestering host-defense protein. Nat Chem Biol. 11 (10), 765-771 (2015).
  33. Gaddy, J. A., et al. Helicobacter pylori Resists the Antimicrobial Activity of Calprotectin via Lipid A Modification and Associated Biofilm Formation. MBio. 6 (6), e01349-e01315 (2015).
  34. Testerman, T. L., Conn, P. B., Mobley, H. L., McGee, D. J. Nutritional requirements and antibiotic resistance patterns of Helicobacter species in chemically defined media. J Clin Microbiol. 44 (5), 1650-1658 (2006).
  35. Leach, S. T., Mitchell, H. M., Geczy, C. L., Sherman, P. M., Day, A. S. S100 calgranulin proteins S100A8, S100A9 and S100A12 are expressed in the inflamed gastric mucosa of Helicobacter pylori-infected children. Can J Gastroenterol. 22 (5), 461-464 (2008).
  36. Wilkie-Grantham, R. P., et al. Myeloperoxidase-dependent lipid peroxidation promotes the oxidative modification of cytosolic proteins in phagocytic neutrophils. J Biol Chem. 290 (15), 9896-9905 (2015).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Etiquetas

Purifica o de S100A12Sequestro de ZincoPrecipita o por Sulfato de Am nioCromatografia de Troca Ani nicaCromatografia de Exclus o MolecularAn lise por SDS PAGEEnsaio de H pyloriProte na de Liga o a MetaisImunidade Nutricional
Expressão, Purificação e Actividade Antimicrobiana de S100A12
Entre em contato
Recomendar à biblioteca

Privacidade

Termos de uso

Políticas

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Todos os direitos reservados.