Artigo de método

Inserção Transvaginal Mesh no Modelo Ovino

DOI:

10.3791/55706

27 de julho de 2017

Neste artigo

Resumo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este protocolo descreve a implantação de malha no septo rectovaginal ovino usando uma única técnica de incisão vaginal, com e sem a inserção guiada por trocares de braços de ancoragem.

Resumo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este protocolo descreve a inserção de malha no septo rectovaginal em ovelhas usando uma única técnica de incisão vaginal, com e sem a inserção guiada por trocares de braços de ancoragem. As ovelhas parosas foram submetidas à dissecção do septo rectovaginal, seguido da inserção de um implante com ou sem quatro braços de ancoragem, ambos destinados a caber a anatomia ovina. Os braços de ancoragem foram colocados usando um trocar e uma técnica de "fora-dentro". Os braços cranianos foram passados ​​através dos músculos obturador, gracilis e adutor magnus. Os braços caudais foram fixados perto do ligamento sacrotubero, através dos músculos coccygeus. Esta técnica permite a imitação de procedimentos cirúrgicos realizados em mulheres que sofrem de prolapso de órgão pélvico. Os espaços e elementos anatômicos são facilmente identificados. A parte mais crítica do procedimento é a inserção do trocar craniano, que pode penetrar facilmente na cavidade peritoneal ou nos órgãos pélvicos circundantes. ThiS pode ser evitado por uma dissecção retroperitoneal mais extensa e guiando o trocarte mais lateralmente. Esta abordagem é projetada apenas para testes experimentais de novos implantes em modelos de animais grandes, já que a inserção guiada por trocar é atualmente não utilizada clinicamente.

Introdução

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

O prolapso do órgão pélvico é clinicamente diagnosticado na metade das mulheres que tiveram pelo menos um parto vaginal, mas subjetivamente, incomoda a metade das mulheres em geral 1 . O principal suporte da terapia é a reconstrução cirúrgica usando tecido nativo ou material de implante, mas cada um desses métodos tem suas limitações, incluindo recorrência ou complicações locais 2 , 3 , 4 . O implante ideal ainda não foi identificado; Portanto, existe uma demanda contínua de inovação de produtos e para o desenvolvimento de um oleoduto adequado para experimentação pré-clínica antes da introdução de novos produtos e técnicas para o mercado. Uma das etapas desta pista é a avaliação experimental em modelos animais adequados 5 , 6 . Idealmente, eles devem imitar os ambientes anatômicos, biomecânicos e biológicos. Quando se trata deE avaliação experimental de novos implantes, eles geralmente são testados primeiro em modelos menores, seja para biocompatibilidade ou para a reconstrução de defeitos da parede abdominal. Esse tipo de experimentos foi criticado, porque os implantes não estão inseridos na área de interesse ( ou seja, a vagina) 7 . Os modelos de cirurgia vaginal são mais escassos, certamente quando o objetivo do experimento é documentar as características biomecânicas dos explantes. Por esse motivo, houve um movimento de coelhos para ovelhas 8 . As ovelhas adultas são modelos de animais grandes com uma vagina de tamanho razoável e acessível. Eles podem ser usados ​​para a avaliação intercalar de novos implantes, e é possível reproduzir exposições vaginais com certos materiais 9 , 10 , 11 , 12 , 13 . Não só as dimensões e a anatomiaDa vagina ovina e do assoalho pélvico são comparáveis ​​aos humanos, mas também a ocorrência espontânea de prolapso, que ocorre em 15% das ovelhas. Os fatores de risco de prolapso são sobrepostos (por exemplo , multipartite, histórico prévio de POP, aumento da pressão intra-abdominal induzida por maior peso corporal ou quando pastoreia em colinas e efeitos comparáveis ​​de (fito) estrogênios) 6 , 14 . Na Europa, as ovelhas são a única alternativa razoável, já que a pesquisa sobre primatas não humanos foi quase completamente banida. Aqui, o modelo foi levado um passo adiante imitando a inserção transvaginal de implantes usando trocartes e guias para a colocação livre de tensão de malhas no septo recto-vaginal. Seguiu-se a fixação do implante usando ancoragem com os braços através dos ligamentos dos músculos, o que pode ser considerado equivalente à prática clínica 15 , 16 . Até agora, esta técnicaNão foi estudado, embora muitos acreditam que podem ocorrer complicações específicas devido ao uso dessas tiras mais longas e / ou ao piercing de estruturas anatômicas.

Em um estudo anatômico detalhado anterior, o piso pélvico ovino foi comparado à pelve feminina 17 . Quando se trata de ancorar o implante, as ovelhas não possuem o ligamento sacrospinoso, mas possuem um ligamento sacrotubero bem desenvolvido e amplo. O nervo pudendo corre ventralmente sobre ele, tornando-o inseguro para usar esse marco como um ponto de suspensão. Por outro lado, o músculo coccygeus e sua fáscia, bem como a membrana obturadora, são acessíveis através do espaço rectovaginal. Aqui, propõe-se o acesso e a posição das estruturas anatômicas para a fixação dos braços de ancoragem. Os instrumentos que podem ser usados ​​para posicionar a malha são discutidos. Finalmente, a relação dos braços ou trocares com estruturas anatômicas adjacentes, como vasos e nervos, umaBem como possíveis complicações intra-operatórias, também são descritas.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

A aprovação ética para este experimento foi obtida do Comitê de Ética em Experimentação Animal da KU Leuven (P065 / 2013). Os animais foram tratados de acordo com as diretrizes nacionais vigentes sobre o bem-estar dos animais.

1. Material e animal experimental

  1. Preparação cirúrgica
    1. No teatro cirúrgico, cubra uma mesa com uma capa esterilizada e prepare um trocar curvo estéril ( Figura 1 , painel A), instrumentos cirúrgicos estéreis, suturas e gaze estéril. Execute todo o procedimento cirúrgico em condições estéreis, se o experimento incluir acompanhamento. Coloque todos os instrumentos sobre a mesa para estar pronto para uso durante a cirurgia.
    2. Remova um implante retangular estéril e / ou um implante com braços de ancoragem da embalagem estéril e coloque-os sobre a mesa coberta com uma camada estéril ( Figura 1B , C e D ).


Figura 1: Trocar e Implantes. ( A ) Desenho esquemático do trocarte. ( B ) Implante de fluoreto de polivinilideno em forma de H (PVDF), com um detalhe da parte central (painel C ). Sua forma foi inspirada nas malhas de quatro braços atualmente disponíveis para o reparo do prolapso transvaginal. O corpo retangular (30 x 40 mm 2 ) é prolongado lateralmente por quatro braços estendidos (150 x 10 mm 2 ). As dimensões dos braços são projetadas para serem suficientemente longas para perfurar as estruturas de suspensão relevantes, com base em estudos anatômicos anteriores 17 . ( D ) O implante retangular (30 x 40 mm 2 ). Ambos os implantes foram feitos de fluoreto de polivinilideno; As características e propriedades têxteis estão na Tabela 1 .
  1. Animal experimental (EwE, 45-60 kg)
    1. Administrar pré-medicação de 1 mL de 15 mg / mL de sulfato de atropina e 1 mL / 50 kg de xilazina HCl por via intramuscular (im) 30 min antes do procedimento cirúrgico.
    2. Após 30 min, assegure-se de que a premedicação tenha tornado a ovelha letárgica e com sono.
    3. Insira um cateter intravenoso na veia jugular e administre 0,075 mL / kg de cetamina 100 mg / mL de HCl. Confirme a anestesia profunda observando a falta de reação aos estímulos dolorosos.
    4. Mova o animal para a mesa cirúrgica e assegure suas vias aéreas por intubação. Manter a anestesia com 2,5% de isoflurano em 5 L / min de oxigênio.
    5. Mantenha a linha intravenosa inserida na veia jugular e forneça 500 mL de solução salina a uma taxa de fluxo de 150 mL / h.
    6. Administrar antibióticos profiláticos im (clavulanato de amoxicilina, 7 mg / kg) e analgésicos pós-operatórios (buprenorfina e clorocresol, 1 mL) ou o equivalente de acordo com os protocolos locais.
    7. Coloque o animal acesoPosição de hotomy no final da mesa cirúrgica e segure seus membros, com os quadris em hiper-flexão, usando cordas ( Figura 2 , painel A).
    8. Esvaziar manualmente a bexiga e o reto empurrando-os trans-vaginalmente.
    9. Raspar o periné, a parte medial da coxa e a cauda se dobra e desinfectar com polividona de iodo 7,5% ( Figura 2 , painel B e C).

figure-protocol-1
Figura 2: Cirurgia de animais. ( A ) Uma ovelha colocada na posição supina, com os quadris hiper-flexionados segurando os membros inferiores. ( B ) Os pontos de entrada externos para a inserção do trocar estão no lado ventral (seta vazia) e dorsalmente nas dobras laterais da cauda (flecha cheia). ( C ) Posição dos pontos de inserção ventral; A linha tracejada no meio representaO plano midsagital do animal. ( D ) septo rectovaginal dissecado. ( E ) Inserção do trocar ventral através dos músculos do lado medial da coxa, do forame obturador e do espaço paravaginal. A trajetória do trocar piercing é controlada com o dedo. ( F e G ) Uma vez que o trocarte está no lugar, a eslinga do fio (seta aberta) é avançada e carregada com o braço da malha vaginal. ( H ) Posição final dos braços ventral (flechas cheios) e dorsal (seta vazia). ( I ) A parte central é colocada livre de tensão entre a parede vaginal e a adventitia retal.

  1. Prepare pessoal para uma cirurgia em condições estéreis. Coloque uma tampa cirúrgica e máscara de boca, lave as mãos para a cirurgia e coloque um vestido cirúrgico e luvas estéreis.
  2. Cubra o animal com uma camada estéril e faça uma abertura acima do genitalhiato.

2. Procedimento cirúrgico

  1. Preparação do septo rectovaginal
    1. Segure a parede vaginal dorsal 3 cm craniana ao anel de himeene usando pinça Allis.
    2. Pegue uma seringa carregada com 10 mL de solução salina e esteja equipada com uma agulha 22 G. Insira-o através do epitélio vaginal (aproximadamente 3 a 4 mm de profundidade) e na linha média do septo rectovaginal, 1,5 cm craniano ao anel de himeene.
    3. Execute "aqua-dissection" injetando solução salina no septo rectovaginal 11 .
    4. Faça uma incisão da linha média de 3 cm de comprimento no epitélio vaginal, iniciando caudal para a pinça Allis (passo 2.1.1) e terminando no anel himeônico usando um bisturi. Insira o espaço recto-vaginal através desta incisão.
    5. Coloque o retractor auto-retentor (veja a Tabela de Materiais ) sobre o periné e coloque quatro ganchos afiados na incisão vaginal para mantê-lo aberto.
    6. Com seu dedo, dissecar sem corte a fáscia recto-vaginal da parede vaginal lateralmente em direção às paredes laterais pélvicas e cranialmente até o aspecto caudal do beco sem saída. Crie espaço adequado para a parte central da malha de 30 x 40 mm 2 ( Figura 2 , painel D).
  2. Realize hemostasia com pinça hemostática ou uma ligadura hemostática entrecruzada sempre que necessário.
    NOTA: Pequenos sangramentos podem ser apertados com a pinça hemostática. Isso esmaga o vaso e inicia a cascata de coagulação natural. Para um sangramento mais forte, segure o vaso sanador com fórceps e coloque uma ligadura entrecruzada, assegurando-o com um nó quadrado. Neste ponto, pode-se inserir o implante retangular (passo 2.2) ou continuar com a dissecção para inserir o implante com braços de ancoragem (passo 2.3).
  • Inserção de malha plana
    1. Insira o retractor vaginal na incisão vaginal para permitir uma melhor visão deA parte craniana da área dissecada.
    2. Suture o canto craniano esquerdo e direito do implante com uma simples sutura de polipropileno 3/0 interrompida nos lados esquerdo e direito do aspecto mais craniano do espaço recto-vaginal dissecado. Corte o material de sutura residual. Mantenha a sutura afastada do lúmen vaginal ( ou seja, não penetre na parede vaginal).
      NOTA: O implante é sempre suturado para o tecido conjuntivo compreendendo o septo recto-vaginal. A parede vaginal não é penetrada se o material da sutura não puder ser visto na vagina.
    3. Adicione uma sutura interrompida simples adicional a meio do caminho ao longo do aspecto craniano do implante.
    4. Suture as bordas laterais do implante a meio caminho sobre o tecido conjuntivo circundante com um simples polipropileno 3/0 interrompido. Mantenha o implante o mais achatado possível e sem tensão.
    5. Suture os cantos caudais esquerdo e direito com suturas de polipropileno 3/0 interrompidas simples à esquerda e à direitaLados do aspecto mais caudal do espaço rectovaginal.
    6. Adicione uma sutura interrompida simples adicional no meio do lado caudal do implante.
    7. Feche as incisões vaginais com uma sutura de poliglactina 3/0 correndo.
  • Inserção e ancoragem do implante com os braços (técnica guiada por trocartes).
    1. Continue a dissecação do espaço recto-vaginal criado no passo 2.1 cranio-ventralmente para atingir o aspecto medial do forame obturador, que pode ser facilmente palpado.
    2. Disseca o espaço caudo-lateralmente para alcançar o aspecto caudal do ligamento sacrotubero e do músculo coccygeus caudalmente localizado.
    3. Com um número não. 24 lâminas, faça quatro incisões de 1 cm de largura no lado vulvar, cortando a pele e a fáscia muscular superficial ( Figura 2 , painel B e C).
    4. Faça duas incisões "ventrais" no aspecto medial da coxa, aproximadamente 4 cm de crânio da borda caudal.O arco ciático ( ou seja , a borda inferior da sínfise) e 3 cm lateral da linha média ( Figura 2 , painel C).
    5. Faça duas incisões "dorsais" ao nível da inserção das dobras da cauda, ​​2 cm medial ao ischiadicum do tubérculo, que pode ser facilmente palpado ( Figura 2 , painel B).
    6. Coloque um trocar curvo através de uma das incisões ventrais ( Figura 2 , painel E).
    7. Passe o trocar através do músculo adutor magnus, o obturador externo e o aspecto medial do forame obturador.
    8. Controle a progressão do trocarte com um dedo inserido através da incisão vaginal. Guie sua ponta para o arco tendinoso do músculo elevador ani ( Figura 2 , painel E).
    9. Exponha o fio guia na incisão da parede vaginal e carregue com o correspondente braço de malha cranial ipsilateral ( Figura 2 , painel F).
    10. Puxe o trocarte carregado com o mEsh braço através das estruturas acima. Mantenha o braço livre de tensão.
    11. Repita o processo com o segundo braço craniano através da incisão ventral do outro lado do animal.
    12. Através de uma incisão dorsal, passe o trocar através do músculo coccygeus, apenas distal ao ligamento sacrotubero ( Figura 2 , painel G).
    13. Exponha o fio guia através da incisão vaginal, segure o braço dorsal da malha e puxe-o para fora. Mantenha o braço livre de tensão e repita do outro lado.
    14. Ajuste a posição da malha achatando-a e aplicando tensão nos braços, mas mantenha a malha livre de tensão ( Figura 2, painel I, Figura 3 ).
    15. Corrija o corpo da malha com uma simples sutura de polipropileno 3/0 interrompida no meio da sua borda caudal, assegurando-a ao tecido conjuntivo circundante.
    16. Corte os braços ao nível da pele e feche todas as incisões cutâneas com simples polígono 3/0 interrompidoSuturas de ecaprona ( Figura 2 , painel H).
    17. Feche a incisão vaginal com uma sutura de poliglecaprona 3/0 em execução.
  • figure-protocol-2
    Figura 3: Ilustração esquemática da Pelve de Ovino, com os Braços Cranianos Passando pelo Forame do Obturador e os Braços Caudais Passando pelas Dobras da Cauda. O amplo tecido sacrotubero está em azul. O painel menor ilustra a posição dos braços em um animal em posição reclinada, antes de encurtar a quantidade excessiva de material. O painel principal mostra o mesmo, mas com a pele e os músculos removidos.

    Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

    Resultados

    Loading...
    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

    Gerenciamento em uma configuração de Observação mais longa

    Após o procedimento cirúrgico, a embalagem vaginal (uma embalagem de gaze em solução com solução salina inserida na vagina imediatamente após a cirurgia) pode ser inserida por 24 h para garantir a posição do implante. A ovelha deve ser colocada em uma gaiola de recuperação e sua função respiratória é seguida até a recuperação completa. Mais tarde, é po...

    Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

    Discussão

    Loading...
    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

    Aqui, descrevemos um procedimento experimental em ovelhas, com o objetivo de imitar a dissecção vaginal e inserção de malha transvaginal de um implante com ou sem braços de ancoragem. As etapas e instrumentos subsequentes foram inspirados por procedimentos cirúrgicos realizados para POP e incontinência urinária de estresse 15 , 16 , 19 , 20 . Após as dissecações anatômicas iniciais, ainda havi...

    Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

    Divulgações

    Loading...
    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

    Este programa de pesquisa sobre o modelo ovino foi apoiado por uma concessão incondicional de Medri e Blasingame, Burch, Garrard e Ashley (Atlanta GA, EUA). Os acordos são tratados através do escritório de transferência de Leuven Research and Development. Os patrocinadores não interferiram no planejamento, execução ou relatório dessa experiência, nem possuem os resultados. NS e LH são beneficiários de uma subvenção da CE no quadro FP7 (projeto Bip-Upy, NMP3-LA-2012-310389). A AF foi apoiada por uma doação da CE no programa de parceria indústria-acadêmica (251356).

    Agradecimentos

    Loading...
    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

    Agradecemos a Ivan Laermans, Rosita Kinart, Ann Lissens (Centro de Tecnologias Cirúrgicas, KU Leuven, Leuven, Bélgica). Jo Verbinnen e Kristof Reyniers (Vesalius Institute of Anatomy, Faculdade de Medicina, KU Leuven, Leuven, Bélgica) forneceram suporte técnico durante o experimento. Agradecemos a Leen Mortier pela ajuda com gerenciamento de dados e manuscritos. Agradecemos à FEG Textiltechniken pela fabricação de malhas protótias, esterilizando-as e doando-as incondicionalmente para pesquisa.

    Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

    Materiais

    Lista de materiais utilizados neste artigo
    NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
    Animais: 
    ovelha parosa (45 - 65 kg)Zoö Instituto Técnico do KU LeuvenNAanimal experimental
    Vestuário estéril: 
    campo estéril 45 x 75 cmLohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemanha33002outro material
    estéril OU cortina 150 x 180 cmLohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemanha33009outros materiais
    estéreis brilham 2xLohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemanha16652outro material
    vestido cirúrgico estéril 2xLohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemanha19342outro material
    tampa de cabeça cirúrgica 2xLohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemanha17427outro material
    máscara cirúrgica 2xLohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemanha11983outros materiais
    Outro material
    implanteFEG Textiltechnik GmbH, Aachen, AlemanhaNAimplante propositadamente projetado
    /0 sutura de polipropilenoProlene, Ethicon, Diegem, Bélgica8762Hmaterial de sutura
    3/0 sutura de poligecaproneVicryl, EthiconJ311Hsutura cotonetes de gaze de material
    10 x 10 cm 10x, 12 camadasLohmann & Rauscher, Regensdorf, Alemanha11574seringa de outro material
    10 mLBecton Dickinsosn S.A., Madrid, Espanha300613de dissecção de água
    calibre 16Terumo, Leuven, BélgicaNN-2238Rdissecação de água
    Equipamento cirúrgico:
    lâmina nº 22Instrumentos de belas ciências, Heidelberg, Alemanha10022-00cirúrgico instrumentos
    Pinças de tecido Allis 1xInstrumentos de belas ciências, Heidelberg, Alemanha11091-15instrumentos cirúrgicos
    Pinças de padrão padrão 1 x 2 theeth 1xInstrumentos de belas ciências, Heidelberg, Alemanha11023-14instrumentos cirúrgicos
    Pinças de padrão padrão retas serrilhadas 1xInstrumentos de belas ciências, Heidelberg, Alemanha11000-14instrumentos cirúrgicos
    Cabo de bisturi 1xInstrumentos de belas ciências, Heidelberg, Alemanha10004-13instrumentos cirúrgicos
    Pinça Halstead-Mosquito 2xInstrumentos de belas ciências, Heidelberg, Alemanha13008-12instrumentos cirúrgicos
    Tesouras de padrão padrão padrão 1xInstrumentos de belas ciências, Heidelberg, Alemanha14001-14instrumentos cirúrgicos
    Tesoura de Metzenbaum 1xInstrumentos de ciências finas, Heidelberg, Alemanha14016-18instrumentos cirúrgicos
    Crile Wood porta-agulhas 1xInstrumentos de ciências finas, Heidelberg, Alemanha12003-15instrumentos cirúrgicos
    Pinças Kell 1xInstrumentos de ciências finas, Heidelberg, Alemanha13018-14instrumentos cirúrgicos
    Retrator de retenção automática Long Starr com oito ganchos de estada afiados de 5 mmCooper Surgical, Tumbull, EUA3704instrumentos cirúrgicos
    Heaney Simon Vaginal RetractorMedical supplies & equipments co., Katy, Texas, USA403-129FSIinstrumentos cirúrgicos
    Trocarte (Insnare)Bard, West Sussex, ReinoUnido NAqualquer trocarte no mercado para implante de malha transvaginal
    Medicação:
    clavulanato amoxilicilina 1000 mg / 300 mL (Ampicilina)GSK, Wavre, BélgicaNAantibióticos
    buprenorfina 0,3 mg/mL + clorocresol 1,35 mg/mL (Vetregesic)Ecuphar, Oostkamp, BélgicaNAanalgesia
    cetamina HCL 100 mg/mL (Cetamina 1000)Ceva Sante Animale, Bruxelas, BélgicaNAanestesia
    isoflurano (IsoFlo)Abbott Laboratories Ltd, Maidenhead, Berkshire, Reino UnidoNAanestesia
    polividona de iodo 7,5% (Braunol)B. Braun Medical, Machelen, BélgicaNAsolução salina de desinfecção local
    500 mLB. Braun Medical, Machelen, BélgicaNAaqui-dissecção
    Xxylazine HCl, 1 mL/50 kg Vexylan, Ceva Sante Animale, BélgicaNApré-medicação
    atropina Sulfato 15 mg/mL (),Viatris, BélgicaNApré-medicação
    cirúrgico 3 agulha

    Referências

    Loading...
    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
    1. Glazener, C., et al. Childbirth and prolapse: Long-term associations with the symptoms and objective measurement of pelvic organ prolapse. BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 120 (2), 161-168 (2013).
    2. Jia, X., et al. Efficacy and safety of using mesh or grafts in surgery for anterior and/or posterior vaginal wall prolapse: systematic review and meta-analysis. BJOG. 115 (11), 1350-1361 (2008).
    3. Maher, C., et al. Transvaginal mesh or grafts compared with native tissue repair for vaginal prolapse. Review. 2 (2), 10-13 (2016).
    4. Nieminen, K., et al. Outcomes after anterior vaginal wall repair with mesh: a randomized, controlled trial with a 3 year follow-up. Am. J. Obstet. Gynecol. 203 (3), e1-e8 (2010).
    5. Abramowitch, S. D., Feola, A., Jallah, Z., Moalli, P. A. Tissue mechanics, animal models, and pelvic organ prolapse: a review. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 144, S146-S158 (2009).
    6. Couri, B., Lenis, A., Borazjani, A., Paraiso, M. F. R., Damaser, M. S. Animal models of female pelvic organ prolapse: lessons learned. Expert Rev. Obs. Gynecol. 7 (3), 249-260 (2012).
    7. Deprest, J., et al. The biology behind fascial defects and the use of implants in pelvic organ prolapse repair. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 17, S16-S25 (2006).
    8. Ozog, Y., Mazza, E., De Ridder, D., Deprest, J. Biomechanical effects of polyglecaprone fibers in a polypropylene mesh after abdominal and rectovaginal implantation in a rabbit. Int. Urogynecol. J. 23 (10), 1397-1402 (2012).
    9. Manodoro, S., et al. Graft-related complications and biaxial tensiometry following experimental vaginal implantation of flat mesh of variable dimensions. BJOG. 120 (2), 244-250 (2013).
    10. Endo, M., et al. Cross-linked xenogenic collagen implantation in the sheep model for vaginal surgery. Gynecol. Surg. , 113-122 (2015).
    11. Feola, A., et al. Host reaction to vaginally inserted collagen containing polypropylene implants in sheep. Am. J. Obstet. Gynecol. 212 (4), e1-e474 (2015).
    12. Barnhart, K. T., et al. Baseline dimensions of the human vagina. Hum. Reprod. 21 (6), 1618-1622 (2006).
    13. Tayrac, R., Alves, A., Thérin, M. Collagen-coated vs noncoated low-weight polypropylene meshes in a sheep model for vaginal surgery. A pilot study. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (5), 513-520 (2007).
    14. Sobiraj, A., Busse, G., I, H. B. O. S. E. D. Ivastigation into the blood plasma profiles progesterone in sheep sufferingform vaignal inversion and prolapse. Br. Vet. J. 142 (142), 218-223 (1986).
    15. Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. Anatomical conditions for pelvic floor reconstruction with polypropylene implant and its application for the treatment of vaginal prolapse. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 131, 214-225 (2007).
    16. Carey, M., Slack, M., Higgs, P., Wynn-Williams, M., Cornish, A. Vaginal surgery for pelvic organ prolapse using mesh and a vaginal support device. BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 115 (3), 391-397 (2008).
    17. Urbankova, I., et al. Comparative anatomy of the ovine and female pelvis. Gynecol. Obstet. Invest. , in press (2016).
    18. Maurer, M. M., Röhrnbauer, B., Feola, a, Deprest, J., Mazza, E. Mechanical biocompatibility of prosthetic meshes: A comprehensive protocol for mechanical characterization. J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 40, 42-58 (2014).
    19. Leval, J. Novel Surgical Technique for the Treatment of Female Stress Urinary Incontinence. Transobturator Vaginal Tape Inside-Out. Eur. Urol. 44 (6), 724-730 (2003).
    20. Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. Transobturator vaginal tape inside-out. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 127 (1), 123-129 (2006).
    21. Bafghi, A., et al. Bowel perforation as late complication of tension-free vaginal tape. J Gynecol Obs. Biol Reprod. 34 (6), 606-607 (2005).
    22. Hinoul, P., Vanormelingen, L., Roovers, J. P., de Jonge, E., Smajda, S. Anatomical variability in the trajectory of the inside-out transobturator vaginal tape technique (TVT-O). Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (10), 1201-1206 (2007).
    23. Schaller, O., et al. Illustrated Veterinary Anatomical Nomenclature. , Verlag Enke. Stuttgart, Germany. (2007).
    24. Serious Complications Associated with Transvaginal Placement of Surgical Mesh for Pelvic Organ Prolapse. FDA Safety Communication. , Available from: http://www.fda.gov/MedicalDevices/Safety/AlertsandNotices/PublicHealthNotifications/ucm061976.htm (2016).
    25. Reinier, M., Groep, G. Final Opinion on the use of meshes in urogynecological surgery. SCENIHR- European Commission. , (2016).

    Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

    Reimpressões e permissões

    Solicitar permissão para reutilizar o texto ou as figuras deste artigo JoVE

    Solicitar permissão

    Etiquetas

    Septo RetovaginalInser o Guiada por TrocarteBra os de AncoragemProlapso de rg os P lvicosT cnica Cir rgicaIncis o VaginalAnatomia OvinaImplante de Tela

    Artigos relacionados