Artigo de método

Protocolo para avaliar os efeitos relativos da genética e ambiente no chifre e crescimento do corpo para uma vida útil longa cervídeos provenientes

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DOI:

10.3791/56059

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8 de agosto de 2017

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1Department of Wildlife, Fisheries and Aquaculture, Mississippi State University, 2Department of Natural Resource Management, South Dakota State University, 3Mississippi Department of Wildlife, Fisheries and Parks

Neste artigo

Resumo

Diferenças fenotípicas entre as populações de cervídeos provenientes podem estar relacionadas ao nível de população genética ou nutrição; discernir o que é difícil na natureza. Este protocolo descreve como nós projetamos um estudo controlado, onde a variação nutricional foi eliminada. Nós achamos que variação fenotípica de masculino cariacu foi mais limitada pela nutrição do que genética.

Resumo

Cervídeos provenientes fenótipo pode ser colocado em uma das duas categorias: eficiência, que promove a sobrevivência sobre crescimento morfométricos extravagante e luxo, que promove o crescimento de grande porte de armas e o corpo. Populações da mesma espécie exibem cada fenótipo dependendo das condições ambientais. Embora o tamanho do antler e corpo de macho cariacu (Odocoileus virginianus) varia conforme a região Fisiográfica no Mississippi, Estados Unidos da América e é fortemente correlacionado com variação regional na qualidade nutricional, os efeitos do nível populacional de genética de populações nativas e repovoamento de esforços anteriores não podem ser desconsiderados. Este protocolo descreve como nós projetamos um estudo controlado, onde outros fatores que influenciam o fenótipo, como idade e nutrição, são controlados. Trouxemos as fêmeas grávidas selvagens capturados e filhotes de seis meses de três regiões fisiográficas distintas no Mississippi, EUA para a unidade de veado de Memorial de Dawkins Mississippi estado Universidade Rusty. Veado da mesma região foram criados para produzir uma segunda geração de prole, permitindo-nos avaliar respostas geracionais e efeitos maternos. Todos os veados comeram a mesma alta qualidade (pellet de veado de proteína bruta de 20%) dieta ad libitum. Nós exclusivamente marcado cada neonato e gravou pé de massa, traseiras do corpo e o comprimento total do corpo. Cada queda subsequente, nós sedado indivíduos através da injeção remota e amostrados a morfometria, mesmo mais chifres dos adultos. Nós achamos que todos morfometria aumentada em tamanho de primeira para a segunda geração, com compensação integral do tamanho do antler (variação regional não está mais presente) e a compensação parcial de massa corporal (alguma evidência de variação regional) evidente na segunda geração. Segunda geração os machos que se originou da nossa região de solo mais pobre qualidade exibida sobre um aumento de 40% no tamanho do antler e um aumento de 25% da massa corporal quando comparados a suas contrapartes selvagens colhidos. Nossos resultados sugerem que a variação fenotípica de espelho cariacu macho selvagem em Mississippi estão mais relacionadas às diferenças na qualidade nutricional do que o nível de população genética.

Introdução

Fatores ambientais, que experiências de uma mãe durante a gestação e lactação podem influenciar o fenótipo de sua prole, independente do genótipo1,2,3. As mães que habitam ambientes de alta qualidade provavelmente produzirá descendentes que exibem um fenótipo de luxo (grande chifre e corpo tamanho4), Considerando que as mães que habitam um ambiente de baixa qualidade podem produzir descendentes que exibem um fenótipo de eficiência (pequeno chifre e corpo tamanho4). Portanto, persistindo em um ambiente de alta qualidade pode permitir que uma mãe produzir a prole masculina com grandes características fenotípicas, que podem influenciar diretamente oportunidades reprodutivas5,6,7,8 a prole e indiretamente influenciam a aptidão inclusiva da mãe.

Embora a nutrição influencia directamente as características fenotípicas entre táxons (Ursus americanus, Ursus arctos9; Liasis fuscusI 10; Larus michahellis 11), vários fatores podem afetar o cariacu fenótipos no Mississippi, Estados Unidos da América. Tamanho do antler e corpo são cerca de um terço maior para algumas populações, em comparação com outros12. Esta variação é fortemente correlacionada com forragem qualidade13,14; os machos maiores são encontrados em áreas com a maior qualidade da forragem. No entanto, os esforços de restauração histórica de cariacu em Mississippi podem ter levado para gargalos genéticos e/ou fundador efeitos15,16, que também parcialmente pode explicar alguns da variação regional observada na cariacu fenótipo.

Nós fornecemos o protocolo que usamos para controlar a qualidade nutricional dos selvagens capturados cariacu, que nos permitiu avaliar se o fenótipo masculino é restrito por nível de população genética. Este protocolo também nos permitiu avaliar se atraso efeitos maternos estiveram presentes em nossa população. Nosso projeto controlado é preferencial de estudos realizados em populações variando gratuito que limitam-se ao uso de variáveis ambientais como um proxy para restrição nutricional3,17. Nosso projeto controlado permite também outras variáveis tais como potencial crônica estresse interações relacionadas ao social, para ser mantida constante, como todos os indivíduos estão sujeitos à moradia semelhante e práticas de produção animal. Além disso, como nutrição influencia diretamente a outros aspectos da história de vida desde a reprodução até sobrevivência18,19, controlando a nutrição permite investigadores avaliar outras variáveis que afetam os aspectos da história de vida dos mamíferos. Protocolos semelhantes foram descritos para avaliar questões relacionadas a aspectos da história de vida para outros ungulados da América do Norte (por exemplo, 20,,21).

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Protocolo

Declaração de Ética: O Comitê Institucional de Cuidado e Uso de Animais da Universidade Estadual do Mississippi aprovou todas as técnicas de captura, manejo e marcação sob os protocolos 04-068, 07-036, 10-033 e 13-034.

1. Estabelecer locais de captura, imobilizar e transportar veados-cervos selvagens

  1. Identifique propriedades públicas e privadas inscritas no Programa de Assistência à Gestão de Veados22 e estabeleça ≥29 locais de captura em três regiões-fonte no Mississippi, EUA.
    1. Identifique diversos locais de captura dentro de cada região-fonte para garantir que a amplitude da variação genética presente na população regional seja obtida.
    2. Observação: aqui, as regiões-fonte incluíram o Delta, que compreende quase 17% da área total do Mississippi, EUA, e é considerada uma região de solo de alta qualidade, com a agricultura como uso principal da terra23,24. Todos os animais do estudo foram capturados nesta região dentro da distribuição de O. v. virginianus25. Outras regiões incluíram a região do Loess Fino (Loess Fino superior e inferior combinados), que compreende quase 14% da área total do Mississippi, EUA, e é considerada uma região de solo de qualidade média. A agricultura também é um uso principal da terra na região do Loess Fino, embora não seja tão prevalente quanto no Delta23,24. Todos os animais do estudo foram capturados nesta região dentro da distribuição de O. v. virginianus21. Por fim, a região de solo da Planície Costeira Inferior (LCP) compreende quase 22% do Mississippi e é classificada como uma região de solo de baixa qualidade. Os usos principais da terra na LCP são a produção de madeira de pinus e a pastagem de gado23,24. A LCP também sobrepõe-se à distribuição geográfica de O. v. osceola; quatro das seis populações-fonte estavam a menos de 21 km dessa distribuição25. Este subsespécie foi descrito como menor que O. v. virginianus26.

Mapa das regiões de origem do solo; Delta, Planície Costeira Inferior, Loess Fino; diagrama geográfico.
Figura 1: Populações de Origem. Regiões fisiográficas onde matrizes grávidas e veados jovens foram capturados no Mississippi, EUA. Esta figura foi modificada a partir da referência31. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

  1. Selecione locais potenciais de captura que atendam aos seguintes critérios: características de habitat favoráveis ao deslocamento de veados, proximidade de estradas para acesso e distribuição ao longo da área de estudo.
    NOTA: Os locais de captura devem permitir o esconderijo do técnico responsável pela captura.
    1. Isca os locais com cerca de 10 kg de milho descascado para atrair os veados e avalie o uso com base no consumo da isca e nas imagens de veados capturadas por câmeras sensíveis ao movimento. Realoque para locais alternativos caso os veados não visitem os locais isca em um período de 5 a 7 dias.
  2. Durante os eventos de captura, permaneça em um "posto" oculto.
    1. Posicione o posto cerca de 20 m a sotavento do monte de isca, levando em consideração a direção predominante do vento, de modo que os veados que se aproximam da isca tenham menor probabilidade de detectar o odor do técnico de captura.
      NOTA: Postos elevados são fortemente recomendados, e o uso de cintos de segurança é obrigatório. Existem várias variações de postos, com diferentes fornecedores comerciais, e sua utilização varia conforme preferência pessoal. Por exemplo, um posto fixo inclui assento com escada acoplada à árvore por meio de cintas. Postos portáteis de escalada podem ser transportados pelo técnico de captura e permitem maior mobilidade, pois o técnico pode escolher uma árvore específica ao chegar ao local de captura. Postos portáteis de escalada são limitados ao uso em árvores retas, sem galhos na altura escolhida.
  3. Utilize uma arma de dardos acoplada a um dardo de telemetria de 3 cc para administrar uma mistura de tiletamina HCl (4,4 mg/kg) e xilazina HCl (2,2 mg/kg).
    1. Planeje os esforços de captura para coincidir com o ciclo típico de atividade crepuscular dos veados27. Inicie cada tentativa de captura 2 a 3 h antes do pôr do sol.
    2. Continue os eventos de captura por 2 a 3 h após o pôr do sol, utilizando óculos de visão noturna e um laser de ponto vermelho para posicionamento do tiro, caso os veados não sejam capturados durante o período diurno.
    3. Dispare nos veados quando estiverem de lado e imóveis.
      NOTA: A coxa traseira do veado é o alvo, pois possui tecido muscular significativo e está localizada longe do coração e dos pulmões.
    4. Aguarde cerca de 15 min para que os animais alvo injetados (crias de seis meses de idade, de ambos os sexos, ou fêmeas adultas grávidas) fiquem completamente imobilizados antes de localizá-los com equipamento de telemetria direcional.
    5. Confirme que os indivíduos estão sedados verificando os reflexos oculares (piscar). Em seguida, aplique pomada oftálmica nos olhos e vendilhe os veados para reduzir o estresse.
      NOTA: A perda da termorregulação é uma consequência da imobilização.
    6. Utilize um termômetro retal para avaliar a temperatura corporal após a recuperação. Aqueça os veados com cobertores aquecidos se a temperatura do animal estiver abaixo de 37,7 °C. Resfrie os veados com bolsas de gelo se a temperatura do animal estiver acima de 40,0 °C.
    7. Posicione o veado em decúbito esternal sobre uma maca estilo militar e transporte-o do local de captura até um reboque fechado.
    8. Após colocar o veado no reboque, reverta os efeitos da xilazina HCl com 0,125 mg/kg de yohimbina HCl28.
    9. Transporte todos os veados capturados até a instalação de cativeiro desejada (por exemplo, Mississippi State University Rusty Dawkins Memorial Deer Unit; MSU Deer Unit) e mantenha-os separados por região de origem.

2. Instalações de Cativeiro e Práticas Gerais de Manejo de Animais de Pesquisa

NOTA: A Unidade de Veados da MSU é subdividida em cinco baias de 0,4 a 0,8 ha.

  1. Cubra todos os lados de cada cercado com tela de sombreamento para atuar como barreira visual e física entre os cercados. A tela de sombreamento ajuda a reduzir lesões e fornece sombra durante os meses de verão.
  2. Coloque 1-2 abrigos elevados em formato de caixa em uma extremidade de cada cercado para facilitar os eventos de dardos durante a coleta de dados.
  3. Coloque dois comedouros do tipo cocho em extremidades opostas de cada cercado para reduzir a competição por alimento entre os veados. Forneça também um bebedouro em cada cercado.
  4. Forneça aos veados uma dieta de alta qualidade (pelotas para veados com 20% de proteína bruta) ad libitum.
    OBSERVAÇÃO: Neste caso, forrageiras adicionais disponíveis nos cercados incluíam (Trifolium spp) e festuca (Festuca spp), juntamente com gramíneas e ervas espontâneas.
  5. Se presentes, mantenha as forrageiras disponíveis nos cercados utilizando uma mistura de herbicidas para controle de plantas daninhas de folhas largas e gramíneas, aplicadas nas doses indicadas nos rótulos respectivos.
    OBSERVAÇÃO: Provavelmente será necessário usar instalações fora do campus para alojar machos com idade igual ou superior a 5,5 meses. Essas instalações consistiam em dois cercados de 0,7 ha em cada uma de três propriedades, com práticas de manejo semelhantes às da Unidade de Veados da MSU.

Mapa dos estados dos EUA destacando os condados do Mississippi; diagrama de distribuição geográfica.
Figura 2: Localizações das Instalações de Cativeiro. Área do estudo onde as instalações satélite e a Unidade de Cervos da Universidade Estadual do Mississippi (MSU) estavam localizadas. As áreas sombreadas indicam os condados de Oktibbeha (A), Noxubee (B), Attala (C), Scott (D) e Copiah (E), Mississippi, EUA. Esta figura foi modificada a partir da referência34. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

3. Controle de Parasitas e Doenças

  1. Monitore animais de pesquisa para parasitas nematoides (Strongyloides spp) utilizando flutuação fecal, com os parasitas medidos como ovos por grama (OPG).
    1. Se presentes em níveis elevados, realize o controle parasitário administrando um vermífugo em pellets (ingrediente ativo fenbendazol) na proporção de cerca de 0,77 kg de vermífugo em pellets por 22,7 kg de ração durante o mês de maio.
    2. Se os níveis parasitários permanecerem altos após o tratamento inicial, utilize um tratamento tópico com ivermectina (5 mg/mL)29, misturado na proporção de 2 mL/0,45 kg, e administre aos animais na proporção de 0,45 kg de ração tratada por 45,4 kg de massa corporal do animal.
      NOTA: A doença epizoótica hemorrágica é uma doença viral às vezes letal, transmitida por um mosquito-pólvora (Culicoides spp) durante os meses de verão e outono. Se presente, trate o local de pesquisa com inseticida (inseticida de volume ultra-baixo a 5%) de 2 a 3 vezes por semana, de 1º de julho a 1º de outubro, para reduzir a prevalência dos vetores entre os animais de pesquisa. Aplique este inseticida dentro de cada curral e ao redor do perímetro do local cerca de 90 minutos antes do pôr do sol oficial, por meio de um nebulizador. Os métodos preferenciais para controle de parasitas e doenças são específicos para cada instalação de cativeiro. Os veterinários devem ser consultados durante qualquer pesquisa com vida selvagem em cativeiro para garantir a saúde e a segurança dos animais.

4. Coleta de Dados

Estudo da anatomia de cervos, medindo o comprimento da perna com uma fita métrica, pesquisa de campo, biologia da vida selvagem.
Figura 3: Coleta de Dados de Cervos Recém-Nascidos. Medição do comprimento do pé traseiro de um cervo recém-nascido na Unidade de Cervos Memorial Rusty Dawkins da Universidade Estadual do Mississippi, no condado de Oktibbeha, Mississippi, EUA. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

  1. Procure diariamente pela criação de veados em cativeiro durante a estação de parto.
    1. Marque os cervos recém-nascidos de forma única com identificadores plásticos médios nas orelhas, utilizando um aplicador de brincos com antibiótico aplicado na extremidade macho do brinco para prevenir infecções potenciais. Coloque o brinco aproximadamente no centro da orelha do cervo.
    2. Meça a massa corporal (com precisão de 0,01 kg) com uma balança digital suspensa e meça o comprimento do pé traseiro e o comprimento total do corpo (com precisão de 1 mm).
    3. Colete amostras de pelos e envie para um local remoto para determinação de parentesco (consulte a Tabela de Materiais).
      NOTA: A determinação de parentesco foi realizada com base em DNA, utilizando um banco de dados proprietário, não estatístico e com linguagem de consulta estruturada personalizada. Na comparação de alelos em pares, o site remoto de determinação de parentesco atribuiu o parentesco ao excluir todos os machos e fêmeas exceto um pai e uma mãe, com base na presença de um alelo compartilhado de cada progenitor em todos os locos testados (B. G. Cassidy, comunicação pessoal). Esse método de determinação de parentesco também foi utilizado em pesquisas anteriores com veados caudas-brancas em cativeiro30,31.
    4. Administre 2 cc de toxoide contra Clostridium perfringens tipos C e D e antitoxina contra Clostridium perfringens tipos C e D por via subcutânea e administre 0,3 cc/kg de ivermectina em propilenoglicol (Escola de Veterinária da Universidade Estadual do Mississippi, Mississippi, EUA) por via oral a cada cervo.
  2. Imobilize quimicamente machos adultos (≥1,5 anos de idade) durante outubro e novembro para coleta de dados.
    1. Imobilize os adultos em baias utilizando a mesma combinação de cloridrato de tiletamina e cloridrato de xilazina usada para captura de animais selvagens (passo 1.4).
    2. Durante os eventos de sedação, conduza o técnico que irá aplicar o dardo até a extremidade da baia onde estão localizados os postos elevados de observação. Posicione um único técnico em cada um dos dois postos.
    3. Peça à pessoa que acompanhou o técnico até o posto que retorne à extremidade oposta da baia.
      NOTA: Os veados se afastam desses técnicos e posicionam-se diante dos postos, onde os técnicos estão em posição adequada para realizar disparos éticos em cada veado.
    4. Dispare nos veados quando estiverem de lado e imóveis (seção 1.4).
    5. Aguarde cerca de 15 minutos para que os animais atingidos pelo dardo fiquem completamente imobilizados antes de se aproximar.
    6. Confirme que os indivíduos estão sedados verificando os reflexos oculares (piscar). Aplique pomada oftálmica nos olhos e vendilhe os veados para reduzir o estresse.
    7. Após a sedação bem-sucedida de um veado individual, monitore as taxas vitais do animal.
      1. Use um termômetro retal para avaliar a temperatura corporal após a recuperação. Aqueça os veados com mantas aquecidas se a temperatura do animal estiver abaixo de 37,7 °C. Resfrie os veados com bolsas de gelo se a temperatura do animal estiver acima de 40,0 °C.
    8. Coloque o veado em uma maca estilo militar e transporte-o por meio de um veículo utilitário para uma área predeterminada de coleta de dados.
    9. Após o transporte, registre as mesmas medidas morfométricas coletadas ao nascimento (passo 4.1).
      1. Meça a massa corporal (com precisão de 0,01 kg) com uma balança digital suspensa e meça o comprimento do pé traseiro e o comprimento total do corpo (com precisão de 1 mm).
        NOTA: Os veados individuais reagem de maneira diferente à combinação de medicamentos utilizada durante os eventos de sedação; portanto, administre cerca de 0,1–0,3 cc da mistura de cloridrato de tiletamina e cloridrato de xilazina (dependendo da massa corporal de cada veado) caso o animal desperte antes da conclusão da coleta de dados.
    10. Administre quantidades apropriadas de antibiótico, ivermectina, vacina contra clostridiose e vacina contra leptospirose a todos os veados após serem transportados para a área de coleta de dados (consulte as seções 1 e 3).
  3. Realize três medições de chifres em machos adultos utilizando uma fita métrica específica para chifres enquanto o animal estiver sedado.
    1. Meça a largura interna (distância máxima entre os ramos principais), a circunferência basal (diâmetro mínimo localizado entre o colarinho e o primeiro ramo, G1) e o comprimento do ramo principal (distância da base do chifre até a ponta do ramo principal) dos chifres antes da remoção.
    2. Remova os chifres cerca de 3 cm acima do colarinho utilizando uma serra alternada. Não remova chifres a menos de 3 cm de altura.

Procedimento veterinário em vida selvagem utilizando ferramenta elétrica para remoção de chifres, método de conservação.
Figura 4: Coleta de Dados de Machos Adultos. Remoção de chifres com serra tico-tico em um cervo-do-mato macho adulto em cativeiro. Clique aqui para visualizar uma versão maior desta figura.

  1. Após coletar todos os dados do indivíduo sedado, coloque o veado na baia apropriada e administre 0,125 mg/kg de cloreto de iombina HCl28 ou 4,0 mg/kg de cloreto de tolazolina HCl32 para reverter os efeitos do cloreto de xilazina HCl. Monitore os indivíduos para garantir que permaneçam em posição esternal até que saiam da sedação e estejam completamente alertas.
    NOTA: Caso ocorram complicações e os animais precisem ser eutanasiados, a eutanásia por dislocação cerebral por meio de pistola de atordoamento e seccionamento da veia jugular são meios éticos para abater o animal.
  2. Leve os chifres a uma área designada para finalizar a medição do tamanho dos chifres.
    1. Meça cada ponta individual que se projeta a partir do eixo principal (G1, G2, G3, etc.) e pontos adicionais anormais com auxílio de um arame.
      NOTA: Pontos que não possuem um correspondente no eixo principal oposto ou que não estão de acordo com a definição de um conjunto típico de chifres são definidos pelo Boone and Crockett Club33.
    2. Enrole o arame ao redor do ponto onde a ponta se encontra com o eixo principal e marque esse ponto como referência.
    3. Meça a partir desse ponto de referência até a ponta da ponta e repita para cada ponta.
    4. Obtenha as demais medidas de circunferência identificando o ponto mais estreito entre as pontas G1 e G2 (circunferência H2), entre as pontas G2 e G3 (circunferência H3) e entre as pontas G3 e G4, se presente (circunferência H4).
    5. Se a ponta G4 não estiver presente, meça a distância entre o ponto médio da ponta G3 e a extremidade do eixo principal e meça a circunferência H4 no ponto intermediário.
    6. Meça menos de quatro circunferências quando os chifres tiverem menos de três pontas.
      NOTA: Por exemplo, um eixo principal com dois pontos típicos inclui apenas três medições de circunferência. Os indivíduos podem usar outras diretrizes (Safari Club International) para calcular o tamanho dos chifres; no entanto, métodos consistentes devem ser usados para cada animal para comparação válida.
    7. Após realizar todas as medições, calcule uma pontuação dos chifres semelhante à pontuação Boone e Crockett bruta atípica33.
    8. Pese os chifres com precisão de 0,1 g usando uma balança digital científica e atribua uma massa crítica mínima de 1 g para animais de primeiro ano com chifres menores que 3 cm.
  3. Imobilize quimicamente juvenis em baias com aproximadamente 5,5 meses de idade, utilizando os mesmos métodos empregados em adultos (seção 4.2), e marque os juvenis com uma etiqueta plástica grande na orelha (passo 4.1.1).
    1. Utilize as mesmas taxas da mistura de fármacos para imobilizar adultos em cativeiro conforme usadas para imobilizar veados selvagens (seção 1).
    2. Colete as mesmas medidas obtidas ao nascimento (passo 4.1.2) e administre os mesmos profiláticos dados aos adultos (seção 4.2).
      NOTA: Após a coleta de todos os dados, transporte cada macho juvenil até sua instalação satélite designada aleatoriamente por meio de reboque.

5. Produção de Descendentes da Primeira e Segunda Geração

  1. Classifique veados jovens de seis meses capturados na natureza e filhotes nascidos na instalação de cativeiro a partir de mães capturadas na natureza como indivíduos da primeira geração.
  2. Durante a estação reprodutiva, coloque dois machos com 7-16 fêmeas, obtendo uma razão sexual média de reprodução de um macho para oito fêmeas.
    NOTA: Selecione machos reprodutores de instalações satélite com base na aparência física, pois os machos mais saudáveis (com maiores chifres e tamanho corporal) têm maior probabilidade de cobrir as fêmeas durante toda a estação reprodutiva sem sofrer lesões devido ao comportamento agressivo dos machos nesse período.
    1. Permita que os veados acasalem apenas com outros indivíduos da mesma região de origem (por exemplo, machos do Delta acasalam com fêmeas do Delta, machos do Thin Loess acasalam com fêmeas do Thin Loess, e machos do LCP acasalam com fêmeas do LCP).
  3. Classifique veados concebidos por pais da primeira geração como descendentes da segunda geração. Crie esses indivíduos em cativeiro desde o nascimento e forneça a mesma dieta de alta qualidade oferecida aos seus pais.
    NOTA: As fêmeas podem produzir filhotes em múltiplos anos, mas normalmente com diferentes pais a cada ano. Colete os mesmos dados sobre os descendentes da segunda geração que foram coletados sobre os indivíduos da primeira geração e os capturados na natureza.

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Resultados

Individual idade, qualidade nutricional e genética influencia o fenótipo masculino cariacu. Nosso projeto de estudo permitiu-nos para controlar a qualidade dos cervos de nutrição estavam consumindo e nos permitiu identificar a idade de cada veado para comparações válidas dentro de classes do ano. Controlando a nutrição e idade com nosso projeto de estudo, melhor fomos capazes de entender se nível populacional genética foram restringindo o fenótipo dos machos do estudo de duas populações. ...

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Discussão

Existem várias etapas associadas com nosso protocolo; no entanto, existem quatro etapas essenciais que devem ser tomadas para garantir o sucesso com este protocolo. Primeiro, durante a captura de veados selvagens, deve haver vários locais de captura ao longo de uma região única fonte (etapa 1.1.1). Ter vários locais de captura garante que qualquer variabilidade genética associada com a região de origem será representada entre veados. Em segundo lugar, veado deve ser mantido separado por região de origem durante a época d...

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Agradecemos o Mississippi departamento de vida selvagem, pesca e parques (MDWFP) pelo apoio financeiro, usando recursos da ajuda Federal no ato de restauração de vida selvagem (W-48-61). Agradecemos os biólogos MDWFP W. McKinley, r. Blaylock, Gary r. e L. Wilf pelo extenso envolvimento na recolha de dados. Agradecemos também S. Tucker como coordenador de instalações e vários estudantes de pós-graduação e técnicos para sua ajuda na recolha de dados. Este manuscrito é contribuição WFA427 da floresta de Universidade de estado de Mississippi e centro de pesquisa de vida selvagem.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Arnês
Suporte
Milho
Modelo 196 Projetor Modelo 196Pneu-Dart, Pensilvânia, EUA
Dardos de Radiotelemetria 3cc(Pneu-Dart, Pensilvânia, EUA)
Vários Tamanhos Dardos (Pneu-Dart, Pensilvânia, EUA)
Teletamine HCl (Telazol, Fort Dodge Animal Health, Iowa, EUA)
Xilazina HCl (West Texas Rx Pharmacy, Amarillo, Texas, EUA)
Yhoimbine HCl
Tolazoline HCl
Estilo Militar Gurney
Termômetro
Pano
20% Proteína Bruta Pellets de Veado (Purina AntlerMax Professional High Energy Breeder 59UB, Purina, Missouri, EUA)
Alimentadores
Trevo Comercial (Durana Clover, Pennington Seed Co., Geórgia, EUA)
Festuca Comercial (Max-Q Fescue, Pennington Seed Co., Geórgia, EUA)
Cobertores
Pacotes de Gelo Controle de
Ervas Daninhas de Folha Larga (2, 4-DB Herbacide, Butyrac 200)
Controle de Grama (Poast Herbacide, BASF Co.)
Wormer PelletedSafeguard Co., ingrediente ativo fenbendazol
Tratamento Parasita Pour-on (Ivomec, Merial Co.)
InseticidaRiptide, McLaughlin Gormley King Co.) 
Etiquetas de Orelha de Plástico Médio e Grande (Allflex, Texas, EUA)
Local remoto que designou parentescoDNA Solutions Gerente de Soluções para Animais (DNA Solutions, Oklahoma, EUA)
Balança Digital Suspensa (Moultrie, EBSCO Industries, Inc.) 
Fita Métrica
Clostridium Perfringens Tipos C e D Toxoid Essencial 3 (Colorado Serum Co.)
Clostridium perfringens tipos C e D antitoxina de origem equina(Colorado Serum Co.)
Ivermectina em antibiótico propilenoglicol
(Nuflor, Schuering-Plough Animal Health Corp., New Jersey, EUA)
Ivermectina (Norbrook Labratories, LTD., Down, Irlanda do Norte, Reino Unido)
Vacina clostidrial(Vision 7 com SPUR, Ivesco LLC, Iowa, EUA)
Vacina contra leptospirose (Leptoferm-5, Pfizer, Inc., Nova York, EUA)
Reboque para transporte
Serra recíproca (DEWALT, Maryland, EUA)
Balança Digital Científica (Global Industrail, Global Equipment Company Inc)
Fita
Fogger
Etiquetas de Orelha de Plástico (Allflex, Texas, EUA)
Etiquetador de orelha de plástico(Allflex, Texas, EUA)
de Segurança com Elevado de DescascadoRetalde SombraEstilo CalhaMétrica de Chifre

Referências

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  2. Forchhammer, M. C., Clutton-Brock, T. H., Lindstrom, J., Albon, S. D. Climate andpopulation density induce long-term cohort variation in a northern ungulate. J Anim Ecol. 70 (5), 721-729 (2001).
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