Este artigo descreve um protocolo para o isolamento de axénica em larga escala e a coleção de miracidia livres de sangue fascíola Schistosoma mansoni e seu posterior processamento para introdução na cultura em vitro .
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Artigo de método
Este artigo descreve um protocolo para o isolamento de axénica em larga escala e a coleção de miracidia livres de sangue fascíola Schistosoma mansoni e seu posterior processamento para introdução na cultura em vitro .
Acasos de sangue humanos, Schistosoma spp., têm um ciclo de vida complexo que envolve as fases do desenvolvimento sexuais e assexuadas dentro de um caracol intermediário e mamífero hospedeiro final, respectivamente. A capacidade de isolar e sustentar os estágios do ciclo de vida diferentes condições em vitro cultura facilitou grandemente as investigações dos mecanismos celulares, bioquímicos e moleculares de regulação, host, desenvolvimento e crescimento do parasita interações. Transmissão da esquistossomose exige reprodução assexuada e o desenvolvimento de múltiplos estágios larvas dentro do anfitrião do caracol; o miracidium infecciosa, através de sporocysts primárias e secundárias, para a fase final do cercarial que é infecciosa para os seres humanos. Neste trabalho apresentamos um protocolo passo a passo para incubação em massa e isolamento de Schistosoma mansoni miracidia de ovos obtidos a partir de fígados de ratos infectados e sua subsequente introdução na cultura em vitro . Prevê-se que o protocolo detalhado irá incentivar novos pesquisadores a participar e ampliar este importante campo de pesquisa esquistossomíase.
O ser humano sangue vermes Schistosoma spp., são os agentes causadores da esquistossomose, uma doença tropical negligenciada que afligem um estimado de 230 milhões de pessoas em todo o mundo1. A espécie mais difundida, Schistosoma mansoni, é geograficamente distribuída na América do Sul, o arquipélago das Caraíbas, o Médio Oriente e de África subsahariana2. O ciclo de vida de S. mansonie outros schistosomes, é complexo, envolvendo um mamíferos hospedeiro definitivo e caramujos de água doce do gênero Biomphalaria que servem como hospedeiros intermediários obrigatórios.
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Todos os cuidados com animais e procedimentos experimentais foram aprovados pelo Comitê de uso da Universidade de Wisconsin-Madison, sob protocolo e cuidados institucionais de Animal nenhum. V005717. O seguinte protocolo envolve o trabalho em uma instituição de nível de biossegurança 2 (BSL2) para patógenos humanos, apesar de nenhum dos estágios esquistossomíase retratados no presente protocolo são infectantes aos seres humanos ou outros mamíferos. Segui as políticas institucionais para a manipulação de agentes patogénicos humanos risco grupo 2 (RG2).
Nota: Nós usamos ratos fêmeas Swiss-Webster (6 - semanas de idade) devido à sua maior susc....
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A grande maioria dos miracidia normalmente será foram coletada os dois primeiros "colheitas". Incubação de miracidia isolado na CBSS + desencadeia o processo de transformação de miracidium-para-sporocyst (Figura 4A- C). Dentro da primeira hora seguinte transferência de cultura poços contendo CBSS +, a maioria dos miracidia cessar natação (Figura 4A). Às 6 h em cultura, miracidia estão ativamente derramamento suas.......
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Miracidia de S. mansoni, isolado e manipulados conforme descrito aqui, pode infectar somente o host intermediário de caracol e, portanto, não representam um risco biológico humano durante esta fase de desenvolvimento larval. No entanto, para evitar a exposição acidental/infecção de caracóis, tenha cuidado para realizar miracidial isolamentos em um local diferente de áreas onde espécies sensíveis de gênero Biomphalaria podem estar presentes ou mantida. Uma sala separada, registrada como espaço BSL2, é al.......
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Os autores não têm nada a divulgar.
Financiado em parte pela concessão de NIH RO1AI015503. Ratos infectados esquistossomíase foram fornecidos pela esquistossomose NIAID Resource Center, no Instituto de pesquisas biomédicas (Rockville, MD) através de HHSN272201000005I de contrato NIAID-NIH para distribuição por meio de recursos do BEI.
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| solução salina balanceada de Chernin (CBSS+) | Para 1L de solução | ||
| 2,8 g de cloreto de sódio | Fisher Scientific | S271-3 | Dissolva sais, exceto cloreto de cálcio, e |
| 0,15 g de cloreto de potássio | Açúcares Sigma-Aldrich | P5405 | em 800 mL ddH2O |
| 0,07 g de fosfato de sódio, dibásico anidro | Fisher Scientific | S374-500 | Dissolva o cloreto de cálcio separadamente em 200 |
| 0,45 g de sulfato de magnésio heptahidratado | Sigma-Aldrich | M1880 | mL ddH2O |
| 0.53 g cloreto de cálcio di-hidratado | Mallinckrodt | 4160 | Adicione lentamente o soln de cálcio ao soln de sal/açúcar com |
| 0,05 g de bicarbonato de sódio | Fisher Scientific | S233-3 | com mistura constante |
| 1 g de glicose | MP Biomedicals | 152527 | Ajuste para pH 7.2 e esterilize por filtro usando um |
| 1 g de trealose | Sigma-Aldrich | T0167 | 0,22 µ m filtro descartável de garrafa |
| 10 mL 100X penicilina/estreptomicina | Hyclone | SV30010 | Adicione penicilina filtrada e sola de estreptomicina; uso prévio |
| Incompleto Bge meio (Ibge) | Para solução de 900 mL | ||
| 220 mL Schneider' s Drosophila meio modificado | Lonza | 04-351Q | Misture o meio de Schneider com 680 mL ddH2O |
| 4,5 g de hidrolisado enzimático de lactalbumina | Sigma-Aldrich | L9010 | Adicione hidrolisado de lactalbumina e galactose |
| 1,3 g de galactose | Sigma-Aldrich | G0625 | Ajuste para pH 7,2 e filtre esterilize usando um 0,22 µ m filtro descartável pré-esterilizado |
| Meio Bge completo (cBge) | Para 100 mL de solução | ||
| 90 mL Meio | Para inativar o FBS por calor: Incubar o FBS descongelado em | ||
| 9 mL de calor inato. soro fetal bovino (FBS) (Optima) | Atlanta Biologicals | S12450 | banho-maria a 60° C por 1 hora enquanto suavemente |
| 1 mL de penicilina/estreptomicina 100X | Hyclone | SV30010 | girando o frasco a cada 10 min Alíquota FBS inativada por calor em tubos de 15 mL e armazene a -20 graus Celsius. Misture o meio + FBS e esterilize com filtro usando um 0,22 µ m pré-esterilizado filtro descartável de tampa de garrafa Adicione penicilina e estreptomicina antes de usar |
| Água da lagoa (solução estoque) | 1L de solução estoque | ||
| 12,5 g de carbonato de cálcio | Fisher Scientific | C64-500 | Misture todos os sais em 1L de ddH2O |
| 1,25 g de carbonato de magnésio | Fisher Scientific | M27-500 | Note que os sais não terão completamente |
| 1,25 g cloreto de sódio | Fisher Scientific | S271-3 | dissolvido. Agite vigorosamente para suspender |
| 0,25 g de cloreto de potássio | Sais Sigma-Aldrich | P5405 | antes de fazer a sola de trabalho; |
| Água da lagoa (solução de trabalho) | 1,5L de solução | ||
| 0,8 mL de solução estoque água da lagoa (agite antes do uso) em | Misture o estoque para ddH2O | ||
| 1500 mL de ddH2O | Esterilize a água da lagoa por autoclave (lento ciclo) | ||
| 1,5 mL de penicilina/estreptomicina 100X | Hyclone | SV30010 | Adicione penicilina e estreptomicina uso prévio |
| solução salina (NaCl 1,2%) | 1,5L de solução | ||
| 18 g de cloreto de sódio em 1500 mL de ddH2O | Fisher Scientific | S271-3 | para esterilizar |
| 1,5 mL de penicilina/estreptomicina 100X | Hyclone | SV30010 | Adicione penicilina e estreptomicina uso prévio |
| Equipamento e material adicionais: Câmara de | |||
| 7-L | Seguindo o protocolo IACUC aprovado nº V001551 | ||
| Tanque e regulador | poços | ||
| TPP | 92424 | ||
| Frascos | |||
| Fonte de luz (150W) | Chiu Tech Corp | Modelo F0-150 | |
| Centrífuga, refrigerada, balde oscilante | Eppendorf | Modelo 5810R | |
| Centrífuga garrafas (250 mL) | Tubos | ||
| de 15 mL, tubos de transferência descartáveis estéreis | Corning | 430053 | |
| Estéreis | Fisher Scientific | 1371120 | |
| 0.22 µ M Filtro de Garrafa Descartável Pré-esterilizado | Liquidificador EMD Millipore | SCGPS05RE | |
| Aço inoxidável | Waring Commercial | Model 51BL31 | |
| Copo de liquidificador, capacidade de 100 mL | Microscópio | ||
| Nikon Instruments | Eclipse TE300 |
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