É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Método simples e rápido para obter alta qualidade Tumor DNA de espécimes clínico-patológica usando toque citologia de impressão

10.7K visualizações

⸱

DOI:

10.3791/56943

⸱

21 de março de 2018

 ,  ,  , 
1Genome Analysis Center, Yamanashi Central Hospital, 2Pathology Division, Laboratory Department, Yamanashi Central Hospital, 3The University of Tokyo

Neste artigo

Resumo

Obtenção de DNA genômico de alta qualidade dos tecidos de tumor é um primeiro passo essencial para a análise de alterações genéticas, utilizando a próxima geração de sequenciamento. Neste artigo, apresentamos um método simples e rápido para enriquecer as células do tumor e obter DNA intacto do toque espécimes de citologia de impressão.

Resumo

É fundamental para determinar o status mutacional no câncer antes de administração e tratamento de drogas de alvo moleculares específicas para pacientes com câncer. Na prática clínica, fixada em formol parafina (FFPE) os tecidos são amplamente utilizados para testes genéticos. No entanto, FFPE DNA geralmente é danificado e fragmentada durante o processo de fixação com formol. Portanto, FFPE DNA não às vezes é adequada para testes genéticos por causa de baixa qualidade e quantidade de DNA. Aqui nós apresentamos um método de citologia de impressão de toque (TIC) para obter o DNA genômico de células de câncer, que pode ser observado sob um microscópio. Número de células de morfologia e câncer de células pode ser avaliado usando amostras TIC. Além disso, a extração de DNA genômico de amostras TIC pode ser concluída dentro de dois dias. O montante total e qualidade de TIC DNA obtido usando esse método foi maior do que a da FFPE DNA. Este método rápido e simples permite que os pesquisadores para obter DNA de qualidade para testes genéticos (por exemplo, análise de sequenciamento na próxima geração, digital PCR e PCR quantitativo em tempo real) e para encurtar o tempo de retorno para relatar os resultados.

Introdução

Próxima geração tecnologia de sequenciamento forneceu pesquisadores avanços significativos na análise da informação do genoma em variações genéticas, doença mendeliana, predisposição hereditária e câncer 1,2,3 . O Atlas de genoma do câncer (TCGA) e International Cancer Genome Consortium (ICGC) têm perseguido a identificação de alterações genéticas em diversos tipos de cancros comuns4. Centenas de genes de condutor essencial do câncer foram identificadas com êxito, e algumas destas moléculas são sendo direcionadas para o desenvolvimento de drogas a1,5,6.

Na prática clínica, espécimes FFPE são comumente usados para diagnóstico patológico e testes moleculares para várias doenças, incluindo câncer. No entanto, durante o processo de fixação com formalina, cross-linking da ADN-proteína ou DNA-DNA ocorre e fragmentação de DNA é induzida. Assim, amostras de DNA FFPE nem sempre são apropriadas para a análise genética por causa da baixa qualidade e quantidade de DNA7,8,9. Além disso, leva vários dias para preparar espécimes FFPE e habilidade técnica é necessária preparar com precisão as seções. Portanto, é desejável desenvolver um método simples e rápido para a obtenção de DNA intacto de alta qualidade.

Citologia é um método alternativo para diagnóstico patológico. Preparação das amostras citológicas é um mais simples, menos cara e mais rápida abordagem comparada com FFPE preparação10. A técnica TIC tem sido realizada em linfonodos sentinela e os tecidos marginais de doentes com cancro da mama para diagnóstico rápido no intra-operatório por alguns anos11,12. No entanto, existem alguns relatórios que têm examinado se o DNA genômico de alta qualidade pode ser extraído amostras TIC e usados para posterior análise genética. Amostras citológicas comumente estão manchadas de Papanicolaou (Pap) ou coloração Giemsa, e informamos anteriormente que a quantidade e a qualidade do DNA extraído de amostras de tique (especialmente amostras manchadas de Giemsa) são superiores para as amostras obtidas da FFPE tecidos13. Em comparação com a coloração de Papanicolau, coloração Giemsa tem uma vantagem em que exigem menos procedimentos de coloração. Na coloração de Papanicolau, depois que as amostras foram fixadas e coradas, eles devem ser montados com montagem médio (por exemplo, Malinol) para distinguir o conteúdo de amostra, tais como as células do tumor, as células normais e células inflamatórias sob um microscópio. Se o espécime de Pap é preparado sem a etapa de montagem, é quase impossível observar as células sob um microscópio, porque a amostra é secada. Em comparação, coloração Giemsa pode ser observado no estado seco, portanto, a etapa de montagem não é necessária para avaliação celular rápida. Por microdissection, coloração Giemsa é mais adequado porque requer espécimes secos.

Neste relatório, apresentamos um método simples e rápido para preparar espécimes TIC com coloração Giemsa e demonstrar que a TIC é uma fonte melhor para DNA, em comparação com espécimes FFPE.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

1. TIC preparação para avaliação microscópica rápida usando o vidro Normal desliza

  1. Execute a preparação de TIC logo que possível após materiais clínicos tecido patológico estão disponíveis. Se espécimes TIC não podem imediatamente ser preparados, mantenha os materiais de tecido cobertos com solução salina umedecida gaze estéril e guarde na geladeira para evitar a secagem de tecidos.
  2. Prepare-se 5 mm3 tecido material tais como tumores sólidos (por exemplo, fígado, pulmão e os tecidos da mama) clinicamente obtido por endoscopia ou cirurgia.
    1. Gentilmente Limpe o tecido com gaze estéril-revestido com soro fisiológico e remover o sangue, se a superfície do tecido tem um monte de sangue.
    2. Para amostras microscópicas tais como material de biópsia, manter a amostra umedecida com gaze estéril embebida em soro fisiológico.
  3. Cortar e aparar o tecido normal com uma faca de corte e expor a superfície da lesão tumor, se as massas do tumor não são visíveis grosseiramente.
  4. Toque na superfície do tumor dos espécimes ressecadas numa lâmina de vidro normal várias vezes com as mãos enluvadas. Visualmente, confirme que a área tocada é mais de 80% da lâmina de vidro normal.
  5. Levemente pressione a lâmina de vidro normal contra um slide de membrana polietileno naftalato (caneta) e esfregue suavemente 2 - 3 vezes com as mãos enluvadas. Visualmente, confirme que as células são transferidas da lâmina de vidro normal para o slide de membrana de caneta.
  6. Secar ao ar, o vidro e slides de membrana caneta durante 5 min à temperatura ambiente.
  7. Manche a lâmina de vidro normal para exame citológico direto. Mergulhe as lâminas de vidro com fixador solução para 5 s e em seguida mancha com a solução por 15 a coloração de Giemsa s.
  8. Avaliar e transmitir conteúdo de tumor e celularidade do slide de vidro normal inteiramente com um microscópio para avaliação rápida. Avaliar as células do tumor com base em diversos critérios; alargamento nuclear, cariótipo anormal, cromatina abundante, distribuição desigual de células, a relação do componente citoplasmático/componente nuclear, tamanho da célula e polaridade celular.

2. preparação da película da corrediça de membrana a caneta para testes genéticos

  1. Se a amostra mostra celularidade tumor mais de 60% de avaliação microscópica rápida (passo 1.8), cortar o filme tocou-tumor dos slides membrana caneta para extração de DNA com uma faca e com luvas de mãos. Transferi o filme cortado para um tubo estéril microcentrifuga com um pincette e mãos enluvadas.
  2. Se a celularidade do tumor foi determinada como baixa (menos de 60% do conteúdo do tumor) por avaliação microscópica rápida (passo 1.8), uso laser microdissection de capturar e obter amostras de tumor.
    1. Execute para avaliar as células do tumor usando protocolos padrão de coloração de Giemsa.
    2. Corte o filme do slide PEM membrana por apropriado do laser microdissection de captura.
    3. Transferi o filme cortado para um tubo estéril microcentrifuga com um pincette e mãos enluvadas.
    4. Armazene o tubo microcentrifuga filme contendo a 4 ° C até a extração de DNA (o protocolo pode ser pausado aqui).

3. extração de DNA

  1. Realize a extração de DNA de amostras de tecido da TIC ou FFPE usando um kit de extração de DNA FFPE de acordo com as instruções do fabricante com pequenas modificações. Um kit equivalente está disponível para a etapa de extração de DNA FFPE.
  2. Adicione 180 µ l de tampão de lise de tecido (pH = 8,3) ao tubo contendo filme microcentrifuga com uma pipeta manual 200 µ l. Adicionar 20 µ l de proteinase K, com uma pipeta de 20 µ l manual e misturar vortexing com um misturador de vórtice na velocidade máxima (aproximadamente 2.500 rpm) para 5 s.
  3. Incube as amostras a 56 ° C durante a noite com uma incubadora de ar.
  4. Incube as amostras FFPE e TIC a 90 ° C, em um bloco de calor durante 1 h e 10 min, respectivamente. Brevemente spin para baixo o tubo microcentrifuga a 1.500 x g, durante 5 s na temperatura de quarto com uma mini centrífuga.
  5. Adicione 200 µ l de tampão de Lise para a amostra com uma pipeta de 200 µ l e misturar completamente vortexing na velocidade máxima por 5 s.
  6. Adicionar 200 µ l de etanol (96-100%) com uma pipeta de 200 µ l e homogeneiza vortexing na velocidade máxima por 5 s. brevemente spin para baixo o tubo microcentrifuga a 1.500 x g, durante 5 s na temperatura de quarto com uma mini centrífuga.
  7. Transferir com cuidado todo o lisado para a coluna de rotação com uma pipeta de 1.000 µ l e centrifugar 6.000 x g por 1 min a 25 ° C.
  8. Coloque a coluna de rotação em um tubo limpo 2 mL coleção com as mãos enluvadas e descartar o tubo de coleta contendo o escoamento em uma caixa de plástico de eliminação.
  9. Adicionar 500 µ l de tampão de lavagem para a coluna de rotação com uma pipeta de 1.000 µ l e centrifugar 6.000 x g por 1 min a 25 ° C.
  10. Coloque a coluna de rotação em um tubo limpo 2 mL coleção com as mãos enluvadas e descartar o tubo de coleta contendo o escoamento em uma caixa de plástico de eliminação.
  11. Adicionar 500 µ l de tampão de lavagem para a coluna de rotação com uma pipeta de 1.000 µ l e centrifugar 6.000 x g por 1 min a 25 ° C.
  12. Descarte o tubo de coleta contendo o escoamento em uma caixa de plástico de eliminação. Coloque a coluna de rotação em um tubo de 1,5 mL limpa microcentrifuga com as mãos enluvadas e centrifugar a 20.000 x g, durante 3 min a 25 ° C para secar a membrana.
  13. Coloque a coluna de rotação em um tubo de ligação do DNA-baixo com as mãos enluvadas.
    1. Adicione 40-50 µ l de tampão de eluição para o centro da membrana de uma pipeta de 100 µ l.
    2. Incubar a temperatura ambiente por 5 min e centrifugar 20.000 x g por 1 min a 25 ° C.
    3. Armazene as amostras a-20 º C até o próximo passo (o protocolo pode ser pausado aqui).

4. avaliação da qualidade do DNA por PCR quantitativo em tempo Real

  1. Preparar a mistura mestre em um tubo estéril microcentrifuga com uma pipeta, como segue: 10 µ l de 2 x real-time PCR Master Mix, 1 µ l de 20 x RNase P Primer-sonda Mix (amplicon tamanho: 87 bp) e 8 µ l de água estéril livre de nuclease.
  2. Preparar a mistura de mestre segunda em um tubo estéril microcentrifuga da seguinte forma: 10 µ l de 2 x real-time PCR Master Mix, 1 µ l de 20 x RNase P Primer-sonda Mix (amplicon tamanho: 268 bp) e 8 µ l de água estéril livre de nuclease.
  3. Realizar diluições em série de DNA genômico de controle humano (fornecida no kit) 4 vezes para uma curva padrão de cinco pontos e determinar o absoluto de concentrações de DNA13.
  4. Adicione 19 µ l das duas misturas mestre preparadas (preparado na etapa 4.1 e 4.2) em separado poços de uma placa de reação óptica de 96 poços, com uma pipeta de 20 µ l.
  5. Adicione 1 µ l de FFPE ou o ADN TIC para separar poços contendo a mistura de reação com uma pipeta 2 µ l. Adicione 1 µ l de água livre de nuclease num poço separado contendo a mistura de reação para o controle de nenhum modelo.
  6. Segure o lado não-adesivas de uma película adesiva óptico e retirar o protetor de apoio no centro do filme. Delicadamente, arraste o aplicador sobre o filme e selar o filme sobre a placa de 96 poços.
  7. Misture suavemente a placa de 96 poços, utilizando um misturador de placa de 96 poços para 10 s na temperatura de quarto a 2.000 rpm. Centrifugue a placa brevemente a 1.000 x g, durante 3 min à temperatura ambiente.
  8. Ligue o instrumento PCR em tempo real e inserir a placa de 96 poços. Executar as reações de PCR usando o seguinte protocolo: 95 ° C por 20 s, seguido de 45 ciclos de 95 ° C por 1 s e 60 ° C durante 20 s. uso "curva" e "modo rápido".
  9. Avaliar fragmentação de DNA com a proporção de DNA (quantificação relativa; RQ) obtidos para o amplicon longo (268 bp) para o amplicon curto (87 bp). RQ é o valor médio da média amplicon/o tempo dos amplicons curto13.

5. preparação da biblioteca de sequenciamento de próxima geração

  1. Prepare a biblioteca de sequenciamento para sequenciamento de geração seguinte de acordo com as instruções do fabricante.
  2. Prepare a mistura PCR multiplex mestre em um tubo estéril microcentrifuga por amostra do seguinte modo: 4 µ l de 5 x solução de reação de PCR Multiplex, 4 µ l de 5 x piscina de cartilha, µ l de ≤6 TIC ou DNA FFPE (1-100 ng) e adicione água nuclease-livre até 20 µ l.
    1. Adicione a mistura de mestre de PCR multiplex para um tubo PCR e misture suavemente tocando o tubo.
    2. Brevemente spin para baixo o tubo microcentrifuga a 1.500 x g, durante 5 s na temperatura de quarto com uma mini centrífuga.
  3. Executar as reações de PCR usando o seguinte protocolo: 99 ° C por 2 min, seguido por 20 ciclos de 99 ° C por 15 s e 60 ° C por 4 min e exploração passo 10 ° C. Brevemente, girar para baixo o tubo PCR com uma mini centrífuga a 1.500 x g por 5 s à temperatura ambiente.
    Nota: Determine o número de ciclos com base no número de pares da primeira demão.
  4. Abra a tampa do tubo do PCR e adicionar 2 µ l da enzima de restrição com uma pipeta 2 µ l. Feche a tampa do tubo do PCR e misture suavemente tocando o tubo do PCR. Brevemente, girar para baixo o tubo PCR com uma mini centrífuga a 1.500 x g por 5 s à temperatura ambiente.
  5. Executar as reações de PCR usando o seguinte protocolo: 50 ° C por 10 min, a 55 ° C por 10 min, 60 ° C por 20 min, e exploração passo a 10 ° C. Brevemente, girar para baixo o tubo PCR com uma mini centrífuga a 1.500 x g por 5 s à temperatura ambiente.
  6. Adicione a mistura de mestre de ligadura com adaptador para o cada bem que contém os amplicons PCR digerido com uma pipeta da seguinte forma: 4 µ l da solução de ligadura do adaptador, 0,5 µ l do código de barras, 0,5 µ l de adaptador, 2 µ l de água livre de nuclease e 2 µ l de DNA ligase. Feche a tampa do tubo do PCR e misture suavemente tocando. Brevemente, girar para baixo o tubo PCR com uma mini centrífuga a 1.500 x g por 5 s à temperatura ambiente.
  7. Executar as reações de PCR usando o seguinte protocolo: 22 ° C por 30 min, 68 ° C por 5 min, 72 ° C por 5 min, e exploração passo a 10 ° C.
  8. Purifica a biblioteca de sequenciamento com grânulos magnéticos de acordo com as instruções do fabricante.
  9. Transferi a solução de biblioteca adaptador-ligado para o tubo de baixo-ligação de DNA de 1,5 mL. Adicione 45 µ l de grânulos magnéticos dentro do tubo de baixo-ligação de DNA para a purificação dest 1. Misture suavemente tocando o tubo e incubar durante 5 min à temperatura ambiente.
  10. Coloque o tubo de ligação do DNA-baixa em um rack magnético e, em seguida, incubar por 2 min à temperatura ambiente até que a solução é clara. Cuidadosamente, desprezar o sobrenadante com uma pipeta de 200 µ l sem perturbar os grânulos magnéticos.
  11. Adicionar 150 µ l de etanol a 70% acabadas com uma pipeta de 200 µ l e, em seguida, mover o tubo ao lado do íman para lavar os grânulos. Cuidadosamente, desprezar o sobrenadante sem perturbar os grânulos magnéticos.
  12. Repita a etapa 5.11 para uma segunda lavagem.
  13. Brevemente, girar para baixo o tubo com mini centrifugar 1.500 x g por 5 s à temperatura ambiente. Coloque o tubo de baixo-ligação de DNA em um rack magnético e cuidadosamente descartar as gotas com uma pipeta de 10 µ l de etanol.
  14. Adicione 50 µ l de TE baixo dentro do tubo de baixo-ligação de DNA contendo o pellet de grânulos magnético para dispersar os grânulos. Incube durante 2 min à temperatura ambiente.
  15. Coloque o tubo de baixo-ligação de DNA em um rack magnético e incubar a temperatura ambiente por 2 min, até que a solução é clara.
  16. Transferir a 50 µ l do sobrenadante no tubo de ligação baixa novo DNA e adicione 75 µ l de grânulos magnéticos com uma pipeta de 100 µ l para a purificação de 2nd . Misture suavemente tocando o tubo e incubar durante 5 min à temperatura ambiente.
  17. Coloque o tubo de baixo-ligação de DNA em um rack magnético e, em seguida, incubar por 2 min à temperatura ambiente até que a solução é clara. Cuidadosamente, desprezar o sobrenadante com uma pipeta de 200 µ l sem perturbar os grânulos magnéticos.
  18. Adicionar 150 µ l de etanol a 70% acabadas com uma pipeta de 200 µ l e, em seguida, mover o tubo ao lado do íman para lavar os grânulos. Cuidadosamente, desprezar o sobrenadante sem perturbar os grânulos magnéticos.
  19. Repita a etapa 5,18 para uma segunda lavagem.
  20. Brevemente, girar para baixo o tubo com uma mini centrífuga a 1.500 x g por 5 s à temperatura ambiente. Coloque o tubo de baixo-ligação de DNA em um rack magnético e cuidadosamente descartar as gotas com uma pipeta de 10 µ l de etanol.
  21. Adicione 50 µ l de TE baixo dentro do tubo de baixo-ligação de DNA contendo o pellet de grânulos magnético para dispersar os grânulos. Incube durante 2 min à temperatura ambiente.
  22. Coloque o tubo de baixo-ligação de DNA em um rack magnético e incubar a temperatura ambiente por 2 min, até que a solução é clara.
  23. Transferi o 45 µ l do sobrenadante contendo biblioteca purificada para o tubo de baixo-ligação DNA novo com uma pipeta de 100 µ l.

6. quantificar a concentração de biblioteca por PCR quantitativo em tempo Real

  1. Determine a concentração de cada biblioteca de acordo com instruções13 as indicações do fabricante.
    1. Prepare uma solução de 20-fold de diluição do seguinte modo: Misture 2 µ l de biblioteca purificada e 38 µ l de água nuclease livre em um tubo de baixo-ligação de DNA com uma pipeta 2 µ l e 100 µ l.
    2. Armazene as bibliotecas não diluídas a-20 º C até o passo 7.3.
  2. Preparar uma solução de 200-fold diluição da seguinte forma: misturar 5 µ l de 20-fold diluída purificada biblioteca (preparada na etapa 6.1) e 45 µ l de água nuclease livre em um tubo de baixo-ligação do DNA.
  3. Preparar uma solução de 2,000-fold diluição da seguinte forma: misturar 5 µ l de 200-fold diluída purificada biblioteca (preparada no passo 6.2) e 45 µ l de água nuclease livre em um tubo de baixo-ligação do DNA.
  4. Prepare a mistura de reação mestre do seguinte modo: misture 10 µ l de 2 x solução de mistura de mestre e 1 µ l de solução de ensaio da primeira demão-sonda em tubo estéril microcentrifuga de 20x com uma pipeta e, em seguida, misture tocando o tubo. Adicione 11 µ l do mix mestre reação nos poços de reação óptica de 96 poços.
  5. Adicione 9 µ l de 2,000-fold biblioteca diluída, 9 µ l de cada controle padrão ou 9 µ l de água livre de nuclease para cada poço com uma pipeta de 10 µ l.
  6. Segure o lado não-adesivas de película adesiva óptico e retirar o protetor de apoio no centro do filme.
    1. Delicadamente, arraste o aplicador sobre o filme e selar o filme sobre a placa de 96 poços.
    2. Misture suavemente a placa de 96 poços, utilizando um misturador de placa de 96 poços para 10 s à temperatura ambiente.
    3. Centrifugue a placa brevemente a 1.000 x g, durante 3 min à temperatura ambiente.
  7. Ligue o instrumento PCR em tempo real e inserir a placa de 96 poços. Executar as reações de PCR usando o seguinte protocolo: 50 ° C por 2 min, 95 ° C por 20 s, seguida de 40 ciclos de 95 ° C por 1 s e 60 ° C durante 20 s. uso "curva" e "modo rápido".
  8. Calcule a concentração de biblioteca não diluído multiplicando a concentração determinada com qPCR por 2.000.

7. na próxima geração de sequenciamento

  1. Plano a condição de execução e definir o parâmetro de execução dentro do software.
    1. Clique em [guia de plano] e [modelo] e selecione o método de execução apropriado.
    2. Selecione o aplicativo e o tipo de técnica e clique em [Next].
    3. Selecione o instrumento, kit de preparação de amostra (opcional), tipo de biblioteca de kit, kit de modelo, kit de sequenciamento, base do modo de calibração, tipo de chip, conjunto de sequência (opcional) e código de barras de controle e clique em [Next].
    4. Selecione os plugins e clique em [Next].
    5. Selecione o projeto e clique em [Next].
    6. Selecione a referência padrão e arquivos de cama da região de destino.
    7. Digite o nome de amostra, selecione o código de barras e clique em [executar plano].
  2. Executar a preparação de modelo e chip de carregamento em um instrumento automatizado de acordo com as instruções do fabricante. Descongele o cartucho de reagente à temperatura ambiente durante 45 min antes do uso.
  3. Diluir a biblioteca não diluída com água nuclease-livre de acordo com a concentração de biblioteca calculada na etapa 6,8 e fazer 20 bibliotecas de pM.
    1. Prepare uma biblioteca em pool para sequenciamento e loja no gelo.
    2. Adicione 25 µ l da biblioteca em pool com uma pipeta de 100 µ l para o fundo do tubo de amostra. Use a biblioteca em pool dentro de 48 h.
  4. Poder e abra a tampa do instrumento automatizado.
    1. Coloque o chip de sequenciamento, adaptador de chip, cartucho de enriquecimento, cartucho de ponta, placa PCR, PCR quadro selo, tubo de recuperação, cartucho de solução e cartucho de reagente para a posição apropriada do instrumento automatizado.
    2. Toque em [configurar execução] e [passo a passo] na tela.
    3. Feche a tampa e toque em [Iniciar verificação] na tela.
    4. Após o baralho o processo de digitalização, toque em [Next] na tela.
    5. Verifique o conteúdo do visor (tipo de jogo, tipo de chip, chip planos de ID, identificação da amostra,), definir a hora e toque em [Okey] na tela.
  5. Depois de terminar o carregamento da microplaqueta:
    1. Toque em [Next] na tela e abra a tampa.
    2. Descarregado o chip de sequenciamento do adaptador de chip com as mãos enluvadas.
    3. Coloque o chip dentro do recipiente de microplaqueta, rap com parafilm e loja a 4 ° C até a reação de sequenciamento.
    4. Removido o cartucho de enriquecimento, placa PCR, PCR quadro selo, tubo de recuperação, cartucho de solução e cartucho de reagente a posição apropriada do instrumento automatizado com as mãos enluvadas.
    5. Transferi um cartucho vazio-dica para a posição de resíduos da ponta do instrumento automatizado com as mãos enluvadas.
    6. Toque em [Next] e feche a tampa.
    7. Toque em [Iniciar] e limpar o instrumento automatizado por raios ultravioletas para 4 min.
  6. Dissolva um comprimido de clorito de sódio em 1.000 mL de água ultrapura e solução do filtro com uma unidade de filtro de fluxo de filtro de 0,22 µm.
    1. Ligue o instrumento de sequenciamento.
    2. Toque em [Clean] e [próximo] na tela do instrumento sequenciamento.
    3. Limpe o aparelho de sequenciamento com 250 mL de solução de clorito de sódio filtro esterilizados e posteriormente a 250 mL de água ultrapura.
  7. Toque em [inicializar] e selecione o kit de sequenciamento adequado na tela.
    1. Instale um carregador cinzento no local apropriado com as mãos enluvadas.
    2. Inicialize o instrumento de sequenciamento com a solução de lavagem (fornecido no kit), a solução de ajuste de pH (contendo 350 µ l de hidróxido de sódio de 100 mM) e a solução padrão de pH (fornecido no kit).
  8. Adicione 20 µ l de dATP, dGTP, dCTP e dTTP nucleotídeos (fornecida no kit) em tubos de 50 mL (fornecidos no kit) com uma pipeta de 100 µ l.
    1. Instale um carregador cinzento no local apropriado com as mãos enluvadas.
    2. Carrega o tubo de 50 mL e o parafuso do instrumento de sequenciamento.
    3. Toque o [próximo] na tela para começar a etapa de inicialização, que leva cerca de 25 min.
  9. Depois de concluir a etapa de inicialização:
    1. Toque em [executar] na tela e selecione o instrumento de preparação de biblioteca apropriada.
    2. Digitalize o código de barras bidimensional do chip.
    3. Inserir o chip de sequenciamento na posição apropriada.
    4. Feche a porta de grampo e instrumento de chip.
    5. Touch [seleção de Chip], [seguinte] e [Okey] na tela para começar a correr de sequenciamento.
  10. Após a reação de sequenciamento, transferir os dados e executar o pipeline de análise de dados sobre o servidor de sequenciamento13,17.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

A Figura 1 mostra todo o processo de preparar espécimes TIC para extração de DNA. Notavelmente, o procedimento leva apenas dois dias para obter o DNA genômico de amostras TIC. Nós avaliamos quaisquer efeitos do armazenamento do tumor antes do processamento do slide. Nós achamos que as células tumorais foram anexadas a lâmina de vidro quando as amostras de tecido foram tocadas imediatamente para o slide, e quando os tecidos foram mantidos em salina umedecido-g...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

Neste estudo, apresentamos um método alternativo para obtenção de tumor DNA de amostras clínicas patológicas, usando TIC. Preparação de TIC é muito simples e precisa de menos tempo em comparação com métodos FFPE, sem a exigência de instrumentos especiais10. Todos os procedimentos de preparação da TIC para extração de DNA podem ser concluídos dentro de dois dias (Figura 1). Esse método, portanto, encurta o tempo de retorno para a realização de testes genéticos. Notavel...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Agradecemos a todo o pessoal médico e auxiliar do hospital e os pacientes para consentir a participar. Agradecemos a Gabrielle White Wolf, PhD, do grupo de Emilia (www.edanzediting.com/ac) para a edição de um projecto deste relatório. Este estudo foi suportado por um subsídio para o projeto de pesquisa do genoma da província de Yamanashi (YH e modus operandi) e uma subvenção da Fundação médica de The YASUDA (YH).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
FINE FROST white20 micro slide de vidroMatsunami Glass ind, LtdSFF-011
Arcturus PEN Membrana Lâminas de VidroThermo Fisher ScientificLCM0522
Cyto Quick A soluçãoMuto Pure Chemicals20571
Cyto Quick B soluçãoMuto Pure Chemicals20581
May-Grunwald SolutionMuto Pure Chemicals15053
Giemsa soluçãoMuto Pure Chemicals15002
QIAamp DNA FFPE kit de tecidoQiagen56404
TaqMan Fast Advanced Master MixThermo Fisher Scientific4444557
TaqMan RNase P Kit de Reagentesde Detecção Thermo Fisher Scientific4316831
TaqMan Ensaio de FFPE DNA QC v2Placa
MicroAmpThermo Fisher Scientific4346907
MicroAmp Filme Adesivo ÓpticoThermo Fisher Scientific4311971
MicroMixer E36TITEC0027765-000
ViiA 7 Sistema de PCR em Tempo RealThermo Fisher ScientificVIIA7-03
Himac CF16RXIIHitachi-kokiCF16RII
Ion Library TaqMan Quantitation KitThermo Fisher Scientific4468802
Ion AmpliSeq v2Thermo Fisher Scientific4475346
Ion AmpliSeq 2.0Thermo Fisher
Scientific 1-16 Kitde Sequenciamento Thermo Fisher Scientific4471250
Ion PGM Hi-Q View (base 200)Thermo Fisher ScientificA30044
Ion Chef SystemThermo Fisher Scientific4484177
Veriti Termociclador de 96 poçosThermo Fisher ScientificVeriti200
Ion 318 Chip Kit v2 BCThermo Fisher Scientific4488150
Ion PGM SystemThermo Fisher ScientificPGM11-001
Ion PGM Wash 2 Bottle kitThermo Fisher ScientificA25591
Agencourt™ AMPure™ Kit XPBeckman CoulterA63881
Suporte Magnético de 16 posiçõesThermo Fisher Scientific4457858
Antiaderente, Tubos Microfuge sem RNase, 1.5 mL (Tubo de baixa ligação)Thermo Fisher ScientificAM12450
Água livre de nucleaseThermo Fisher ScientificAM9938
MicroAmp™ Placas de Reação Ópticas de 96 poçosThermo Fisher Scientific4306737
MicroAmp™ Filme Adesivo TransparenteThermo Fisher Scientific4306311
Agencourt™ AMPure™ Kit XPBeckman CoulterA63881
Etanol(99.5)Nacalai Tesque08948-25
Hidróxido de sódio (10M)Sigma72068
DTU-NeoTAITEC0063286-000
E-36TAITEC0027765-000
ECLIPSE Ci-LNikon704354
Pipet-Lite LTS Pipeta L-2XLS+METTLER TOLEDO17014393
Pipeta Pipet-Lite LTS L-10XLS+METTLER TOLEDO17014388
Pipeta Pipet-Lite LTS L-20XLS+METTLER TOLEDO17014392
Pipet-Lite LTS Pipeta L-100XLS+METTLER TOLEDO17014384
Pipet-Lite LTS Pipeta L-200XLS+METTLER TOLEDO17014391
Pipeta Pipet-Lite LTS L-1000XLS+METTLER TOLEDO17014382
petit-changeWAKENMODEL8864Mini centrífuga
petit-incubadoraWAKENWKN-2290Incubadora de ar
SensiCare Luvas de exame de nitrilo sem póMEDLINESEM486802
Gaze estérilOsaki11138
Geladeira MediCoolSANYOMPR-312DCN-PJ
FEATHER TRIMMING BLADFEATHERNo.130
FEATHER TRIMMING BLADFEATHERNo.260
FEATHER SFEATHERFA-10
Vortex Genius 3IKA41-0458Misturador de vórtice
PincetteNATSUMEA-5
microtubo de 1,5 mLBIOBIKRC-0150
de Reação Óptica Rápida de 96 Poços Thermo Fisher Scientific 4324034 Painel de Hotspot de Câncer Kit de Biblioteca Adaptadores de Código de Barras Ion Xpress 4480442

Referências

  1. Vogelstein, B., Kinzler, K. W. The Path to Cancer - Three Strikes and You're Out. N Engl J Med. 373 (20), 1895-1898 (2015).
  2. Weinstein, J. N., et al. The cancer genome atlas pan-cancer analysis project. Nat. Genet. 45 (10), 1113-1120 (2013).
  3. Nagasaki, M., et al. Rare variant discovery by deep whole-genome sequencing of 1,070 Japanese individuals. Nat Commun. 6 (8018), (2015).
  4. Vogelstein, B., et al. Cancer genome landscapes. Science. 339 (6127), 1546-1558 (2013).
  5. Zehir, A., et al. Mutational landscape of metastatic cancer revealed from prospective clinical sequencing of 10,000 patients. Nat Med. 23 (6), 703-713 (2017).
  6. Garraway, L. A., Lander, E. S. Lessons from the cancer genome. Cell. 53 (1), 17-37 (2013).
  7. Chalkley, R., Hunter, C. Histone-histone propinquity by aldehyde fixation of chromatin. Proc Natl Acad Sci U S A. 72 (4), 1304-1308 (1975).
  8. Ben-Ezra, J., Johnson, D. A., Rossi, J., Cook, N., Wu, A. Effect of fixation on the amplification of nucleic acids from paraffin-embedded material by the polymerase chain reaction. J Histochem Cytochem. 39 (3), 351-354 (1991).
  9. Srinivasan, M., Sedmak, D., Jewell, S. Effect of fixatives and tissue processing on the content and integrity of nucleic acids. Am.J.Pathol. 161 (6), 1961-1971 (2002).
  10. Adhya, A. K., Mohanty, R. Utility of touch imprint cytology in the preoperative diagnosis of malignancy in low resource setting. Diagn Cytopathol. 45 (6), 507-512 (2017).
  11. Lumachi, F., Marino, F., Zanella, S., Chiara, G. B., Basso, S. M. Touch Imprint Cytology and Frozen-section Analysis for Intraoperative Evaluation of Sentinel Nodes in Early Breast Cancer. Anticancer Research. 32 (8), 3523-3526 (2012).
  12. Sumiyoshi, K., et al. Usefulness of intraoperative touch smear cytology in breast-conserving surgery. Exp Ther Med. 1 (4), 641-645 (2012).
  13. Amemiya, K., et al. Touch imprint cytology with massively parallel sequencing (TIC-seq): a simple and rapid method to snapshot genetic alterations in tumors. Cancer Med. 5 (12), 3426-3436 (2016).
  14. Goto, T., et al. Mutational analysis of multiple lung cancers: Discrimination between primary and metastatic lung cancers by genomic profile. Oncotarget. 8 (19), 31133-31143 (2017).
  15. Goto, T., et al. Detection of tumor-derived DNA dispersed in the airway improves the diagnostic accuracy of bronchoscopy for lung cancer. Oncotarget. 8 (45), 79404-79413 (2017).
  16. Hirotsu, Y., et al. Targeted and exome sequencing identified somatic mutations in hepatocellular carcinoma. Hepatol Res. 46 (11), 1145-1151 (2016).
  17. Hirotsu, Y., et al. Comparison between two amplicon-based sequencing panels of different scales in the detection of somatic mutations associated with gastric cancer. BMC Genomics. 17 (1), 833(2016).
  18. Hirotsu, Y., et al. Intrinsic HER2 V777L mutation mediates resistance to trastuzumab in a breast cancer patient. Med Oncol. 34 (1), 3(2017).
  19. Hirotsu, Y., et al. Detection of BRCA1 and BRCA2 germline mutations in Japanese population using next-generation sequencing. Mol Genet Genomic Med. 3 (2), 121-129 (2015).
  20. Hirotsu, Y., et al. Multigene panel analysis identified germline mutations of DNA repair genes in breast and ovarian cancer. Mol Genet Genomic Med. 3 (5), 459-466 (2015).
  21. Lièvre, A., et al. KRAS mutation status is predictive of response to cetuximab therapy in colorectal cancer. Cancer Res. 66 (8), 3992-3995 (2006).
  22. Mok, T. S., et al. Osimertinib or Platinum-Pemetrexed in EGFR T790M-Positive Lung Cancer. N Engl J Med. 376 (7), 629-640 (2017).
  23. Wong, S. Q., et al. Targeted-capture massively-parallel sequencing enables robust detection of clinically informative mutations from formalin-fixed tumours. Sci rep. 13 (3), 3493(2013).
  24. Wong, S. Q., et al. Sequence artefacts in a prospective series of formalin-fixed tumours tested for mutations in hotspot regions by massively parallel sequencing. BMC Med Genomics. 13 (7), 23(2014).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Etiquetas

Extração de DNA TumoralComparação de DNA de FFPELâmina de Membrana PENAvaliação da Qualidade do DNASequenciamento de Nova GeraçãoPCR DigitalPCR Quantitativa em Tempo RealDetecção de Mutação SomáticaSequenciamento Automatizado
Método simples e rápido para obter alta qualidade Tumor DNA de espécimes clínico-patológica usando toque citologia de impressão
Fale conosco
Recomendar à biblioteca

Privacidade

Termos de Uso

Políticas

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Todos os direitos reservados.