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Artigo de método

Engenharia genética de organóides intestinais do camundongo primário usando vetores virais de transdução de nanopartículas magnéticas para seccionamento congelado

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DOI:

10.3791/57040

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10 de maio de 2019

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Neste artigo

Resumo

Nós descrevemos instruções passo a passo para: 1) eficientemente projetar organóides intestinais usando nanopartículas magnéticas para Lenti-ou transdução retroviral, e, 2) gerar seções congeladas a partir de organóides projetados. Esta abordagem fornece uma poderosa ferramenta para alterar eficientemente a expressão gênica em organóides para investigação de efeitos a jusante.

Resumo

As culturas organoides intestinais proporcionam uma oportunidade única para investigar a biologia intestinal da célula-tronco e da cripta in vitro, embora abordagens eficientes para manipular a expressão gênica em organóides tenham feito progressos limitados nesta arena. Enquanto a tecnologia CRISPR/Cas9 permite a edição precisa do genoma das células para a geração de organoides, essa estratégia requer extensa seleção e triagem por análise de sequência, que é demorada e dispendiosa. Aqui, nós fornecemos um protocolo detalhado para a transdução viral eficiente de organoids intestinais. Essa abordagem é rápida e altamente eficiente, diminuindo assim o tempo e a despesa inerentes à tecnologia CRISPR/Cas9. Nós igualmente apresentamos um protocolo para gerar seções congeladas das culturas organoid intactas para uma análise mais adicional com mancha immunohistochemical ou Immunofluorescent, que pode ser usada para confirmar a expressão ou o silenciamento do gene. Após a transdução bem-sucedida de vetores virais para expressão gênica ou silenciamento é alcançada, a função de célula-tronco intestinal e cripta pode ser rapidamente avaliada. Embora a maioria dos estudos organoides empreguem ensaios in vitro, os organóides também podem ser entregues em camundongos para análises funcionais in vivo. Além disso, nossas abordagens são vantajosas para prever respostas terapêuticas às drogas porque as terapias atualmente disponíveis geralmente funcionam modulando a expressão gênica ou a função protéica em vez de alterar o genoma.

Introdução

A capacidade de cultura de rato ou células de criptas humanas como tridimensional (3D) organóides do intestino delgado ou cólon durante períodos prolongados de tempo proporcionou um grande avanço, porque estas culturas exibem características definidoras do epitélio intestinal in vivo 1. º , 2. º , 3. organóides derivados de criptas primárias são capazes de autorenovação e autoorganização, exibindo funções celulares semelhantes aos seus tecidos de origem. Na verdade, os organóides recapitulam não só a organização estrutural das criptas in vivo, mas também muitas característica....

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Protocolo

Este protocolo foi aprovado pelo Comitê de cuidados e uso de animais das instituições médicas Johns Hopkins (IACUC). Este protocolo é modificado a partir de um métodos publicados anteriormente10,11,12,13.

1. preparação de reagentes

  1. Prepare um meio fresco de 293T com várias horas de antecedência e aqueça a 37 ° c em um banho de água por pelo menos 10 min antes da utilização (tabela 1).
  2. Prepare DNA plasmídeo2,13

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Resultados

Aqui, nós descrevemos uma técnica rápida e altamente eficiente da transdução que chicotes nanopartículas magnéticas expor a um campo magnético para entregar o Lentivirus às pilhas do interesse. Com ferramentas prontamente disponíveis, aplicamos esta abordagem não só para transduce células criptárias recém-isoladas (Figura 1a), mas também para organóides (Figura 2) e outras células refratárias a abordagens de transdução mais rotin.......

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Discussão

A cultura preliminar do epitélio intestinal adulto como organóides fornece uma ferramenta poderosa para estudar os mecanismos moleculars envolvidos na função da pilha de haste, na homeostase epithelial intestinal, e na patologia1,2,3, a 4. Embora a tecnologia CRISPR/Cas9 possa ser usada para projetar geneticamente organóides9, ela é limitada pela necessidade de triagem e.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado por doações do Instituto Nacional de saúde (R01DK102943, R03CA182679, R03CA191621), o fundo de pesquisa de células-tronco de Maryland (2015-MSCRFE-1759, 2017-MSCRFD-3934), a associação americana de pulmão, a rede de saúde Allegheny-Johns Fundo de pesquisa Hopkins e as doenças digestivas Hopkins Centro núcleo de pesquisa básica.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
DMEMThermo Fisher Scientific11965092Meio de base para células 293T
DMEM/F12+Thermo Fisher Scientific12634010Meio de base para meio de cultura organoide e tampão de digestão de organoides
OPTI-MEMThermo Fisher Scientific11058021Vírus plasmídeos meio de transfecção
Soro bovino fetalCorning35-011-CVComponente do meio de coleta de vírus e meio 293T
Pen/StrepThermo Fisher Scientific15140122Componente do meio de cultura organoide e tampão de dissociação de cripta
PBS (sem Ca2+, Mg2+)Thermo Fisher Scientific10010049Um tampão de lavagem e componente de tampão de dissociação de cripta
Mem-NEAAThermo Fisher Scientific11140050Componente do meio de cultura organoide
GlutamaxIIThermo Fisher Scientific35050061Componente do meio de cultura organoide
HEPESThermo Fisher Scientific15630080Componente do meio de cultura organoide
EGFMillipore SigmaE9644Componente do meio de cultura organoide
NogginPeprotech250-38 BComponente do meio de cultura organoide
R-spondinR& D7150-RS-025/CFComponente do meio de cultura organoide
Insulina recombinante humanaMillipore SigmaI9278-5mlComponente do meio de cultura organoide
NicotinamidaMillipore SigmaN3376-100GComponente do meio de transdução
Wnt3AR& D5036-WN-010Componente do meio de transdução
Y27632Millipore SigmaY0503-1MGComponente do meio de transdução
0,5 M EDTAThermo Fisher Scientific15575020Componente do tampão de dissociação de criptas
DTT (ditiotreitol)Thermo Fisher ScientificR0861Componente do tampão de dissociação de criptas
Dispase IMillipore SigmaD4818-2MGComponente do tampão de digestão organoide
DNase IMillipore Sigma11284932001Componente da matriz de tampão de digestão organoide
(fator de crescimento reduzido)Corning356231Usado como matriz para incorporar organoides
Opti-MEMThermo Fisher Scientific31985070Medium para transfecção na produção viral
ViralMag R / LOz BiosiencesRL40200Partículas magnéticas de transdução viral
Placa magnéticaOz BiosiencesMF10000Placa magnética para facilitar a transdução viral
Lipofectamine 2000Thermo Fisher Scientific11668019Agente de transfecção na produção viral
Poli-D-LisinaMillipore SigmaA-003-ERevestimento para placas antes da semeadura de células 293T
Solução de Formaldeído a 4%BosterAR1068Solução para fixar organoides
O.C.T composto de incorporaçãoThermo Fisher Scientific4583SPara incorporação dos organoides
5 mL Tubos de poliestireno FalconCorning352054
50 mL Tubos FalconSarstedt62.547.100
Orbitron rotator II Rocker ShakerBoekel Scientific260250
Olympus Microscop invertido CK30OlympusCK30para escanear e contar criptas
Zeiss Axiovert 200 fluorescência invertidaNikonAxiovert 200para visualização de fluorescência nas criptas
Unidade de filtro centrífugo Amicon Ultra-15 com membrana Ultracel-100Milipore SigmaUFC910024Para concentrar vírus
pluriStrainer 20 µ m (Cell Strainer)pluriSelectSKU 43-50020Para preparar fragmentos de organoides
Falcon Cell StrainerFisher Scientific352340Para preparar cyrpts de tamanho semelhante após isolamento de cripta
Greiner CELLSTAR  placas de cultura multipoços 48 poços (TC tratado com tampa)Millipore SigmaM8937-100EAForD2:D37+D16:D37g fragmentos organoides Cepa
animal: C57BL/6JJackson Lab#000664Para cultura organoide

Referências

  1. Cheung, E. C., et al. TIGAR is required for efficient intestinal regeneration and tumorigenesis. Dev Cell. 25 (5), 463-477 (2013).
  2. Xian, L., et al. HMGA1 amplifies Wnt signalling and expands the intestinal stem cell compartment an....

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