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Artigo de método

Extração de hemócitos de larvas de Drosophila melanogaster para infecção microbiana e análise

11.8K vistas

DOI:

10.3791/57077

24 de maio de 2018

Neste artigo

Resumo

Este método demonstra como visualizar a invasão do patógeno em células de inseto com modelos tridimensionais (3D). Hemócitos de larvas de Drosophila foram infectados com patógenos virais ou bacterianos, ou ex vivo ou no vivo. Hemócitos infectados foram, em seguida, fixa e manchados para a imagem latente com um microscópio confocal e subsequente reconstrução celular 3D.

Resumo

Durante a infecção patogênica de Drosophila melanogaster, hemócitos desempenham um papel importante na resposta imune durante a infecção. Assim, o objetivo do presente protocolo é desenvolver um método para visualizar a invasão do patógeno em um compartimento específico imune de moscas, nomeadamente hemócitos. Usando o método apresentado aqui, até de 3 × 106 hemócitos ao vivo podem ser obtidos 200 drosófila 3rd ínstar larvas em 30 min para infecção ex vivo . Como alternativa, hemócitos podem ser infectado na vivo através da injeção de 3rd ínstar larvas acompanhados por extração hematócito a pós-infecção 24 h. Estas células primárias infectadas foram fixadas, manchado e fotografada usando microscopia confocal. Em seguida, representações 3D foram geradas a partir das imagens para mostrar definitivamente a invasão do patógeno. Além disso, o RNA de alta qualidade para qRT-PCR pode ser obtido para a deteção do seguinte de mRNA do patógeno infecção e proteína suficiente podem ser extraídas destas células para análise ocidental do borrão. Tomados em conjunto, apresentamos um método para a reconciliação definitiva de invasão do patógeno e confirmação de infecção usando tipos de patógenos bacterianos e virais e um método eficiente para extração hematócito para obter suficiente ao vivo hemócitos de Drosophila larvas para experimentos de infecção ex vivo e na vivo .

Introdução

Drosophila melanogaster é um organismo modelo bem estabelecida para o estudo da imunidade inata1. Durante a resposta imune inata, hemócitos desempenham um papel importante na resposta ao desafio do patógeno. Hemócitos são críticos para encapsular parasitas, bem como tendo uma função importante na luta contra o patógeno através de ação fagocitária durante infecção fúngica, bacteriana e viral,2,3.

A fim de melhor compreender a resposta imune inata do hospedeiro à infecção microbiana patogénica, é importante Visualizar como o patógeno invade células hos....

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Protocolo

1. infecção ex vivo

  1. Médio e equipamentos
    1. Sob condições estéreis, preparar fresco Drosophila hematócito isolando médio (DHIM) contendo 75% Schneider Drosophila médio com 25% de soro Fetal bovino (FBS) e filtro sterilize.
    2. Camada 2-3 pedaços de película de parafina de 10 x 10 cm sob um estereomicroscópio.
    3. Prepare o capilar de vidro. Defina o aquecedor extrator capilar a 55% do máximo. Puxe o tubo capilar para um ponto afiado de aproximadamente 10 µm.
    4. Aterramento do capilar com óleo mineral.
    5. Montar o tubo capilar cheio para o nanoinjector (Figura 1

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Resultados

Para recolher jus hemócitos para infecção ex vivo , a 3 × 106 hemócitos foram extraídos de 200 drosófila 3rd ínstar larvas. Para desenvolver o nosso método, um número de diferentes técnicas foram tentado. Dissecação de larva individual levaria até 1,5 h, e uma média de ~ 8000 células foram obtidos usando este método18, a maioria dos quais não estava viva até o final da coleção. Em seguida, nós tentamos extrair a hemolinfa, qu.......

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Discussão

Para entender melhor como células hospedeiras tornar-se infectado, é importante esclarecer a localização do patógeno nas células, especialmente quando a fazer experiências com o patógeno previamente testado e de combinações de tipo de célula4. Enquanto estuda a cascata de resposta celular após infecção pode indicar invasão do patógeno produtiva, a combinação dos dados de resposta celular e imagem é essencial para demonstrar a infecção e invasão do patógeno. Enquanto relatórios mostrando imagens 2D.......

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Divulgações

Os autores declaram que eles têm não tem interesses financeiro concorrente.

Agradecimentos

Nós estamos gratos ao Dr. Robert Heinzen para fornecimento de estoques de mCherry-expressando Coxiella burnetii. Agradecemos o Dr. Luis Teixeira para fornecer invertebrados iridescente vírus 6 e o centro de estoque de Bloomington para fornecer estoques voar. Este projeto foi financiado em parte pelo NIH grant R00 AI106963 (para A.G.G.) e Universidade de estado de Washington.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Drosophila Medium da Schneider Thermo Fisher Scientific (Gibco)217200241.1.1), 2.1.2)
Soro Fetal BovinoGE Healthcare Life Sciences  (HyClone)SH30070.03HI1.1.1), 2.1.2)
Filtro (0.22 µ L)RESTEK261581.1.1)
Filtro (100 µ m)Greiner bio-one5420001.2.1), 2)
Microscópio estéreoAmscopeSM-1BSZ-L6W1.2), 2)
Capilar de vidroFisher Scientific21-171-41.1), 1.2), 2)
Extrator capilarNarishige International USA, Inc.PC-101.1.3)
Óleo mineralSnow River Products1.1.4)
NanoinjetorDrummond Scientific Company3-000-2041.1), 1.2), 2.2)
FórcepsVWR82027-4021.1.5), 1.2), 2), 3.1.7)
CO2 delivery aparelhoGenesee Scientific59-122BC1.2), 2)
Trypan BlueThermo Fisher Scientific (Gibco)152500611.3)
HemocitômetroHausser Scientific31001.3)
Placa de 24 poçosGreiner bio-one6621601.4), 2.2)
Coxiella burnetii - mCherryDr. Heinzen, R.1.4), 2.2)
Drosophila< / em> placas de suco de frutasCold Spring Harbor2.1)
BiorreagentesAgarBP1423-5002.1.1.1)
Metil parabenoAmresco0572-500G2.1.1.2)
Etanol absolutoFisher BioreagentsBP2818-5002.1.1.2)
Concentrado congelado de suco de uva 100% Welch's, 340 mLde AmazonB0025UJVGM2.1.1.3)
Placas de Petri, 10 x 35 mmFisher Scientific08-757-100A2.1.1.4)
Vidro de cobertura do microscópioFisher Scientific12-545-801.4.4), 2.2.2)
Fermento, padeiros secos MP Biomedicals ativos02101400012.1) Adicione 2 partes de água a 1 parte de levedura (v/v)
Agulha de tungstênioFine Science Tools10130-202.1)
Pinça de retençãoVWRHS83132.1)
ParaformaldeídoFisher ScientificFLO4042-5003.1.3)
Triton X-100Fisher ScientificBP151-5003.1.3)
Albumina de soro bovinoFisher ScientificBP9706-1003.1.3)
4',6-diamidino-2-fenilindolThermo Fisher Scientific622473.1.4)
Meio de montagem antidesvanecimentoThermo Fisher ScientificP369303.1.6)
Microsope confocalLeicaTCS SP8-X Microscópio de varredura a laser confocal de luz branca3.2)
Software de reconstrução de imagens 3DLeicaLASX com módulode visualização 3D3.3)
Lâminas de microscópioFisher Scientific12-552-33.1.6)
Vírus iridescente de invertebrados 6 (IIV6)Dr. Teixeria, L.4) PLoS Biol, 6 (12), 2753-2763, doi: 10.1371/journal.pbio.1000002, (2008)
Listeria monocytogenesATCCcepa: 10403S4) Listeria monocytogenes cepa 10403S (Bishop e Hinrichs, 1987) foi cultivada em caldo de infusão cérebro-coração (BHI) Difco (BD Biosciences) contendo 50 µ g/ml de estreptomicina a 30 °C.
DNase IThermo Fisher Scientific(Invitrogen)18068015
kit de síntese de cDNABio-Rad1708891síntese de cDNA
IIV6_193R_FIDTqRT-PCR, 5'- TCT TGT TTT CAG AAC CCC ATT -3'IIV6_193R_R
IDTqRT-PCR, 5'- CAC GAA GAA TGA CCA CAA GG -3'RpII_qRTPCR_fwd
SIGMA-ALDRICHqRT-PCR, 5'- GAA GCG TTT CTC CAA ACG -AG
SIGMA-ALDRICHqRT-PCR, 5'- TTG AGC GTA AGC ATC ACC -TG
SYBR Reagente qRT-PCR verdeThermo Fisher ScientificK0251, K0252, K0253qRT-PCR
Sistema de PCR em tempo realThermo Fisher Scientific4351107, 7500 Software v2.0qRT-PCR
Anticorpo anti-Listeria monocytogenesabcamab35132Anticorpo anti-actina Western blot
produzido em coelhoSIGMA-ALDRICHA2066Western blot
Anti-Rabbit IgG (H + L), HRP ConjugadoPromegaW4011Western blot
Protocolos de http://cshprotocols.cshlp.org/content/2007/9/pdb.rec11113.full Fisher de degradação de gDNA RpII_qRTPCR_rev

Referências

  1. Hoffmann, J. A. The immune response of Drosophila. Nature. 426 (6962), 33-38 (2003).
  2. Regan, J. C., et al. Steroid hormone signaling is essential to regulate innate immune cells and fight bacterial infection in Drosophila. PLoS Pathog. 9 (....

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Reimpressões e permissões

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