Este protocolo apresenta um modelo animal grande cirúrgico de isquemia crônica, o único navio que resulta em anormalidades regionais, mas não cria infarto, conhecido como miocárdio em hibernação. Após o estabelecimento da isquemia crônica, os animais são tratados com bomba LIMA-rapaz artéria coronária cirurgia de bypass para revascularize o tecido isquêmico.
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Artigo de método
Modelo de suíno cirúrgico da isquemia cardíaca crônica, tratado pela cirurgia de Bypass coronário de bomba
Neste artigo
Resumo
Resumo
Isquemia cardíaca crônica que prejudica a função cardíaca, mas não resulta em infarto, é denominada miocárdio em hibernação (HM). Um grande subconjunto clínico de (CAD) coronariopatas ter HM, que além de causar a função prejudicada, os coloca em maior risco de arritmia e futuros eventos cardíacos. O tratamento padrão para esta condição é a revascularização, mas isto foi mostrado para ser uma terapia imperfeita. A maioria de pesquisa pré-clínica cardíaca centra-se em modelos de infarto de isquemia cardíaca, deixando este subconjunto de pacientes de isquemia crônica largamente subatendidas. Para resolver esta lacuna na pesquisa, desenvolvemos um modelo bem caracterizado e altamente reprodutível do miocárdio em hibernação em suínos, como suína é os modelos de translação ideais para a doença de coração humano. Além de criar este modelo exclusivo da doença, otimizamos a um modelo de tratamento clinicamente relevantes da cirurgia de bypass da artéria coronária em suínos. Isso nos permite com precisão estudar os efeitos de uma cirurgia de bypass na doença cardíaca, bem como investigar terapias complementares ou alternativas. Esse modelo induz cirurgicamente estenose única nave implantando um constrictor na esquerda artéria descendente anterior (LAD) em um porco jovem. Como cresce o porco, a constrictor cria uma estenose gradual, resultando em isquemia crônica com insuficiência regional, mas preservando a viabilidade do tecido. Na sequência do estabelecimento do fenótipo miocárdio hibernando, realizamos a cirurgia de bypass coronário bomba para revascularize da região isquêmica, imitando o padrão-ouro de tratamento para pacientes na clínica.
Introdução
Doença cardíaca coronariana (CHD) afeta cerca de 15,5 milhões pessoas no Estados Unidos 1 e é uma das principais causas de morte globalmente. Enquanto a taxa de mortalidade associada com CHD diminuiu nos últimos anos, a incidência e a carga sobre o sistema de saúde e pacientes permanecem alta 1. Tratamento primário de CAD grave é a revascularização, que melhora a sobrevivência e reduz a angina,2,3,4. No entanto, muitas vezes função cardíaca permanece deprimida, especialmente sob carga de trabalho aumentada e pode progredir para insuficiência cardíaca5,6. Ensaios clínicos de cirurgia de bypass de artéria coronária (CABG) por isquemia crônica demonstram melhoria na sobrevivência e sintomas, mas a ejeção fração mostra melhorias apenas modesta de 8-10% 7,8. Nosso modelo inovador e bem caracterizadas suína de isquemia miocárdica crônica é um modelo de CAD clínica com estenose vascular progressiva. Temos demonstrado reduzida contratilidade miocárdica resultante da redução gradual no fluxo de sangue 9. O miocárdio é que não infarto e pode permanecer viável neste cenário. Recuperação é possível, embora os resultados são variáveis, mesmo com revascularização oportuna. Cronicamente caracterizou-se pela redução do fluxo sanguíneo miocárdio isquêmico que permanece viável e função em repouso com reserva contrátil retido foi denominada HM e tratamento requer CABG. Embora a revascularização de HM deve restaurar a função contrátil, observações experimentais e clínicas demonstram que a recuperação é incompleta8,10.
HM é caracterizada pela presença de viável ainda disfuncional miocárdio na presença de redução de fluxo de sangue regional11. Apesar de prejudicada contratilidade e atividade metabólica em repouso, HM é capaz de demonstrar a reserva funcional e metabólica sob estimulação inotrópica12. HM, é suspeito de a maioria dos pacientes com DAC e engloba um amplo espectro de doenças. Neste protocolo, demonstramos nosso modelo estabelecido suína de HM contornado com a artéria mamária interna esquerda (LIMA) a artéria de rapaz que imita o cenário clínico. Os suínos fornecem um excelente modelo de doença cardíaca sobre outros animais de grandes porte como eles não tem colaterais pontes Epicárdica. Isso permite que a estenose do menino sozinho para resultar em isquemia regional13.
Aqui, descrevemos o método cirúrgico de induzir miocárdio hibernando em suínos criando single-navio estenose na artéria do rapaz. Uma vez que a isquemia crônica foi estabelecida (8 semanas pós implante de constrictor rapaz), descrevemos o método para recriar o tratamento clínico para HM em nosso modelo de suínos: uma bomba revascularização enxerto. Estes métodos cirúrgicos podem ser usados para estudar não só um modelo clinicamente relevante de isquemia cardíaca crônica, mas também para investigar os efeitos de uma cirurgia de bypass na isquemia cardíaca, bem como testar potenciais terapias alternativas ou adjuvante para isquemia cardíaca.
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Protocolo
Todos os estudos em animais foram aprovados pelo cuidado de Animal institucional e comissões de utilização de a Minneapolis VA Medical Center e da Universidade de Minnesota. Siga orientações de institutos nacionais de saúde atuais para o uso e cuidados de animais de laboratório.
1. hibernação cirurgia
- Preparação de animais
- Para criar um modelo de miocárdio em hibernação, uso 5 - semana de idade, do sexo feminino, os porcos de Yorkshire, que pesam na faixa de 8-10 kg com 9,2 kg como o peso médio.
- Para monitoramento de integridade pré-cirúrgica, pese o animal dentro de 3 dias antes da cirurgia.
- O animal está rápido para 12 h antes de iniciar a anestesia. Certifique-se de que a água está disponível em todos os momentos para animais jejum.
- Dê SR Buprenorphine 0,18 mg/kg IM 24 h antes da cirurgia.
- Indução
- Sede o animal com 6,6 mg/kg de tiletamina-eficiente e xilazina cocktail dado por via intramuscular. 5-15 min para a droga permita cocktail sejam efetivadas.
- Prepare a veia da orelha assepticamente por três vezes a limpar com álcool isopropílico a 70% para colocação do cateter IV.
Nota: Se uma veia da orelha não é adequada, outra veia periférica pode ser usado (ou seja, cefálica). - Aplica a pomada oftálmica de ambos os olhos para evitar a secura da córnea.
- Se necessário, induzir anestesia através da administração de 1-2 mg/kg de propofol IV ou mascarados com 3 L/min de oxigênio e 3% de isoflurano, para permitir a intubação traqueal.
Nota: O animal é considerado devidamente anestesiado quando o piscar reflexo ou mandíbula Tom está ausente. - Entube o animal com um tubo endotraqueal de tamanho apropriado.
- Cirurgia
- Uma vez que o animal é anestesiado, raspe a região torácica esquerda para a cirurgia.
- Inicie a ventilação mecânica em 10-15 respirações por min. Set oxigênio em 1-4 L/min e isoflurano entre 1,0 e 3,0% conforme necessário para manter um plano cirúrgico da anestesia.
- Coloque os dispositivos de monitoramento do animal. Dispositivos de monitorização devem incluir ECG, pressão arterial, temperatura e oxímetro de pulso.
- Conectar o cateter IV para um gotejamento IV com solução salina normal 0,9% a uma taxa de 5-10 mL/kg/h.
- Prepare assepticamente o lateral esquerdo do peito com um esfoliante cirúrgico aprovado pela FDA.
- Avaliar a profundidade da anestesia a cada 5-15 min. gravar os sinais vitais de base (frequência cardíaca, ECG, SpO2, NIBP, ETCO2 e temperatura) cada 15 min.
Nota: O animal é considerado devidamente anestesiado quando o piscar reflexo ou mandíbula Tom está ausente. - Com o animal deitado no seu lado direito, lugar estéril cortinas do lado esquerdo do peito da medula espinhal para a escápula, centrando-o terceiro espaço de costela no campo estéril.
Nota: O campo estéril envolve ombro esquerdo dianteiro, incluindo a área axilar continuando cranialmente ao esterno ao espaço sexto costela. - Esfregue suavemente o campo com um método cirúrgico aprovado pela FDA como gluconato de clorexidina ou um esfoliante cirúrgica de iodo por 2 min, usando um padrão de alvo.
- Enxaguar a área com água e lave-o duas vezes mais com um método aprovado pela FDA como acima de 2 min. Enxágue com água entre as lavagens, o campo cirúrgico e, em seguida, seque com esponjas de gaze estéril toalha ou 4 x 4 cm.
- Pulverizar a área com uma solução de iodo e cubra o animal inteiro (exceto o campo cirúrgico) com cortinas estéril. Use esterilização por vapor ou gás para esterilizar os instrumentos, vestidos e cortinas para o procedimento.
- Administre um bloqueio do nervo intercostal usando 0,3 mL de bupivacaina 0,5% na 2ª, 3ª e 4ª costelas.
- Dar 125 mg de cefazolina IV antes de abrir o peito.
Nota: succinilcolina 1,5 mg/kg IV pode ser dada como um agente paralisante, para reduzir o movimento muscular por solicitação do cirurgião durante a abertura da cavidade torácica. - Expor o coração através de uma toracotomia esquerda. Antes da manipulação de coração, dar um 2 mg/kg em bolus IV de lidocaína para prevenir a arritmia. Faça o 3º lateral espaço toracotomia incisão com eletrocautério monopolar. A incisão deve se estender do aspecto cranial da escápula à área axilar para aproximadamente 10 cm. Use uma cauterização a incisão da pele e musculatura subjacente para permitir a entrada na cavidade do peito.
- Coloque um retractor de costela finochietto e aceder ao espaço pleural no terceiro espaço intercostal para retrair o pulmão.
- Agudamente incisão no pericárdio e retrair-se para o lado usando suturas de estadia de Poliglactina 2-0, expondo o rapaz artéria e veia. Retrai o apêndice atrial esquerdo com um retractor de espátula cobertas de gaze.
- Usando uma tesoura de íris, abra adventitia sobre o rapaz.
- Sem rodeios, dissecar um aproximadamente 0,25 cm parte o rapaz artéria aproximadamente 1 cm distal à junção da artéria circunflexa e rapaz. Use uma pinça de ângulo reto para cercar o rapaz.
- Coloque duas suturas de poliéster de 4-0, em torno da artéria sem colocar qualquer tensão.
- Coloque um constrictor plástico em forma de c, com diâmetro interno de 1,5 mm sobre o rapaz proximal a primeira diagonal sem oclusão do navio.
- Fixe-o com 4-duas 0 gravatas poliéster circundando o rapaz.
- Vagamente feche o pericárdio usando sutura de Poliglactina 2-0 em um padrão simples interrompido.
- Execute uma preensão de respiração para retirar o ar do peito, enquanto a camada de músculo intercostal é fechada. Monitore cuidadosamente o manómetro de pressão de vias aéreas sobre a máquina de anestesia para manter a pressão em um intervalo adequado de 20-30 cm de água e solte quando completa.
Nota: Isto elimina a necessidade de um tubo torácico no período pós-operatório. - Feche as camadas de músculo e pele na moda padrão usando sutura absorvível 2-0 e 3-0.
- Use adesivo de pele sobre a incisão para fechamento da pele.
- Administre uma dose total de bupivacaína 1 mg/kg por via intramuscular em vários locais ao longo do comprimento da incisão no final do procedimento. Administrar meloxicam 0,2 mg/kg SQ antes do transporte para a área de recuperação.
- Desmame o animal fora do ventilador como a camada de pele é fechada.
- Deixe o animal ligado à máquina anestesia até poder respirar espontaneamente e protetoras reflexos começam a retornar.
- Não remova o tubo endotraqueal até que o animal pode engolir para proteger suas vias aéreas.
- Aplique um curativo estéril, não aderente com pomada de antibiótico triplo sobre a incisão.
- Pós-operatório
- Gravar o ritmo cardíaco, taxa de respiração, temperatura corporal e mucosas de cor cada 15 min até que o animal pode ter uma posição esternal sem ajuda.
- Não abandone o animal até que ele pode levantar e segurar sua cabeça para cima e pode ficar sem assistência.
- Dê o meloxicam (0,2 mg/kg) por via subcutânea.
- Administre a liberação sustentada buprenorfina 6 h após a dose inicial pré-cirúrgica.
- Deixe o curativo na incisão por até 3 dias, se ele permanece limpo e seco. Substitua o molho se ficar sujo.
- Monitore o nível de dor, bem-estar geral e a condição da incisão para 5 dias após o procedimento.
Nota: Escala de careta Leitão está agora disponível para avaliar o nível de dor nesses animais post-operatively14. Use meia dose de meloxicam conforme necessário, uma vez por dia para a dor de avanço. - Single-casa do animal durante o período de recuperação de 5 dias para limitar a atividade e permitir que a ferida curar.
- Permita a 8 semanas para se desenvolver plenamente o fenótipo de miocárdio em hibernação.
2. revascularização ou do bomba Bypass
- Preparação de animais
- Pese o animal dentro de 3 dias antes da cirurgia.
- O animal está rápido para 12 h antes da cirurgia. Certifique-se de que a água está disponível em todos os momentos para animais jejum.
- Dar liberação sustentada buprenorfina 0,18 mg/kg por via intramuscular, 24 h antes da cirurgia.
- Indução
- Sede o animal com cocktail de tiletamina-eficiente/xilazina 6,6 mg/kg por via intramuscular. 5-15 min após a sedação, preparar a veia da orelha assepticamente para colocação do cateter.
Nota: Se uma veia da orelha não é adequada, outra veia periférica pode ser usado (ou seja, cefálica). - Aplica a pomada oftálmica de ambos os olhos.
- Induzi a anestesia com 1-2 mg/kg de propofol IV.
- Entube o animal com um tubo endotraqueal de tamanho apropriado.
- Sede o animal com cocktail de tiletamina-eficiente/xilazina 6,6 mg/kg por via intramuscular. 5-15 min após a sedação, preparar a veia da orelha assepticamente para colocação do cateter.
- Cirurgia
- Raspe do animal esterno, lateral esquerdo do peito e triângulos femorais para a cirurgia.
- Conjunto de ventilação mecânica para 10-15 respirações por minuto, oxigênio em 1-4 L/min e isoflurano em 1.0-3.0% conforme necessário para manter um plano cirúrgico da anestesia.
- Posicionar os equipamentos de monitoramento (frequência cardíaca, ECG, SpO2, diretos de pressão arterial, temperatura e ETCO2 ) do animal.
- Conecte o cateter IV um gotejamento IV com solução salina normal ou LRS.
- Assepticamente, prepare a pele com esfoliante de iodo povidona ou outro método aprovado pela FDA.
- Avalie o animal para a profundidade da anestesia.
Nota: O animal é considerado anestesiados profundamente quando o olho ou mandíbula reflexo é ausente. - Posicionar o animal dorsalmente, prepare a pele como descrita anteriormente e cubra o animal com toalhas estéreis.
- Execute um corte até a artéria femoral e canulação. Use o eletrocautério monopolar para criar uma incisão de pele a aproximadamente 3 cm sobre a artéria femoral para expô-la para canulação.
- Execute um bloqueio do nervo femoral após a incisão é feita, para permitir uma colocação precisa de drogas. Conecte a cânula femoral a um transdutor para monitorar a pressão arterial durante a cirurgia.
- Use o electro-cauterização para entalhar do manúbrio ao processo xifoide, bem como para entalhar o muscular, adiposo e tecido conjuntivo ao nível do esterno.
- Divida o esterno com uma serra oscilatória.
Nota: Usar uma oscilação viu, ao invés de uma padrão Serra de esterno evita potencial lesão miocárdica de aderências pericárdicas como resultado a toracotomia para colocação de constrictor sobre o rapaz. - Administre lidocaína (dose de carregamento de 2 mg/kg IV, 50 µ g/kg/min em infusão IV contínua) para evitar arritmias. Dilua a lidocaína em um saco de 500 mL de solução salina em uma concentração de 1 mg/mL.
- Divida a placa esternal posterior com tesoura de Mayo reta.
- Use um afastador de peito para expor a cavidade torácica.
- Derrube as aderências com electro-cauterização monopolar.
- Usando o mesmo retractor, com suave elevação da borda esternal esquerda por um assistente, disse a artéria mamária interna esquerda livre da parede torácica.
- Controle os ramos arteriais com hemoclips.
- Heparinize o animal com 100-300 unidades/kg de heparina IV.
- Depois de 3 min, dividir a artéria com extremidade distal mais costurados. Prepare a extremidade proximal para enxertia.
- Abra e retire o pericárdio. Confirme que o comprimento da LIMA é adequado para alcançar anastomótico apropriado sobre o rapaz.
- Executar a LIMA para anastomose rapaz com sutura de polipropileno de 7-0 usando uma bomba de fora técnica com um estabilizador cardíaco, mola de forma e tamanho adequado intraluminal dispositivos.
- Coloque um tubo torácico entre as costelas no peito lateral esquerdo, exteriorizado e anexado a vácuo para remover o ar da cavidade torácica por 15-30 min.
- Aproxima o esterno com suturas de poliéster #5 usando um padrão de número oito.
- Feche o músculo, camadas da pele e subcutâneas da forma usual como descrito na cirurgia hibernação. Remova o tubo torácico durante a execução de uma manobra de Valsalva para remover todo o ar residual da cavidade torácica e fechar a incisão com sutura de uma pele.
- Aplique o adesivo de pele sobre a pele para proteger a incisão esternal. Delicadamente, retire o cateter femoral e reparar a artéria usando sutura de polipropileno de 7-0 em um padrão de sequência de caracteres de bolsa. Feche a pele usando sutura de Poliglactina 2-0 em um padrão subcuticular.
- Administre uma dose total de bupivacaína 1 mg/kg por via intramuscular em vários locais ao longo do comprimento da incisão no final do procedimento.
- Administrar meloxicam 0,2 mg/kg por via subcutânea antes do transporte para a área de recuperação.
- Siga o protocolo pós-operatório no processo de hibernação.
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Resultados
Após a cirurgia inicial de hibernação, estenose superior a 70% deve ser capaz de ser observada por clínicas técnicas de imagem como a angiografia ou cardíaco MRI (Figura 1A). 8 semanas após a aplicação cirúrgica de constrictor rapaz, análise da função regional por eco ou ressonância magnética cardíaca revela função reduzida sob maior carga de trabalho (Figura 2). Isso pode ser testado, estimulando o coração com d...
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Discussão
Aqui, nós mostramos que nosso modelo suíno de HM imita a experiência clínica de pacientes com doença de nave única com precisão e função ventricular esquerda preservada. Antes da revascularização, animais com único navio HM exibem comprometimento mínimo na função global, medido pela fração de ejeção, mas mostrar redução significativa no espessamento da parede regional. Após a revascularização, imagem latente da CMR em um ou três meses de recuperação demonstra preservada patência viabilidade e enxerto mas persistente disf...
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Divulgações
Os autores não têm nada para divulgar.
Agradecimentos
Este trabalho foi apoiado do VA Merit Review #I01 BX000760 (RFK) dos Estados Unidos (US) Departamento de veteranos assuntos BLR & D. O conteúdo deste trabalho não representam as opiniões dos E.U. departamento de assuntos de veteranos do governo dos Estados Unidos.
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Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Bair Hugger | 3M | Modelo 505 | Sistema de aquecimento do paciente |
| SR Buprenorfina 10 mg/mL | Abbott Labs | NADA 141-434 | analgésico pós-operatório |
| Applied | Medical | A1801 | Extremidade da braçadeira de LIMA após a remoção |
| Kit de linha arterial | Seta | ASK-04510-HF | Cateter femoral para monitoramento da pressão arterial |
| 1000mL Cloreto de sódio 0,9% | Baxter | 2B1324X | IV fluido de substituição |
| 250 mL 0,9% salina | Baxter | UE1322D | Fluido IV de Substituição |
| 500mL 0,9% de cloreto de sódio | Baxter | 2B1323Q | Drug delivery, Fornecer névoa para Blower Mister |
| Flo-thru 1.0 | Baxter | FT-12100 | usado para anastomos LIMA para L |
| Flo-thru 1.25 | Baxter | FT-12125 | |
| Flo-thru 1.5 | Baxter | FT-12150 | |
| Flo-thru 2.0 | Baxter | FT-12200 | |
| Cloroprep | Becton Dickenson | 260815 | Preparação cirúrgica da pele |
| Meloxicam | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | 0010-6013-01 | AINE para analgesia |
| Hypafix | BSN Medical | 4210 | Curativo seguro e cateteres IV |
| Tubulação IV para soprador Mister | Carefusion | 42493E | Adapta-se a fluidos IV para soprador/Mister |
| Bovie Cautery peça de mão | Covidien | E2516 | Hemostasia |
| Tubo Torácico | Covidien | 8888561043 | Evacua o ar da cavidade torácica |
| Cauterização Monopolar | Covidien | Valleylab FT10 | Hemostasia |
| Telpha pad | Covidien | 2132 | Curativo estéril para feridas |
| 4-0 Tevdek II Strands | Deknatel | 7-922 | Sutura para fixar o constritor ao redor da LAD |
| Propofol | Diprivan | 269-29 | Agente de indução |
| lâmina longa para laringoscópio | DRE | 12521 | Permite a visualização da traqueia para intubação |
| Almofadas de ECG | DRE | 1496 | Monitor de ritmo cardíaco |
| laringoscópio | DRE | 12515 | |
| Máquina de Anestesia + ventilador | DRE Drager- Fabius Tiro | DRE0603FT | Fornecer Oxigênio e inalante ao paciente |
| 5 Ethibond | Sutura Ethicon | MG46G | |
| 0 Vicryl | Ethicon | J208H | Sutura |
| 2-0 Vicryl | Ethicon | J317H | Sutura |
| 3-0 Vicryl | Ethicon | VCP824G | Sutura |
| 7-0 Prolene | Ethicon | M8702 | Sutura |
| Dermabond | Ethicon | DNX12 | Adesivo de pele |
| Ligaclips | Ethicon | MSC20 | para remoção de LIMA |
| Solução salina estéril 20 mL | Fisher Scientific | 20T700220 | Flush para cateteres intravenosos |
| Telazol 100 mg / mL | Fort Dodge | 01L60030 | Pomada antibiótica tripla sedativa pré-operatória |
| Johnson & Johnson | 23734 | Tubo endotraqueal tópico sobre ferida | |
| de 6,0 mm de diâmetro interno | Mallinckrodt | 86049 | Estabelecer via aérea para Revasc, ressonância magnética e terminação |
| Fita médica de 1" | Medline | MMM15271Z | Curativo seguro e cateteres intravenosos |
| Tubo endotraqueal de 4,0 mm de diâmetro interno | Medline | DYND43040 | Estabelecer via aérea para hibernação |
| Tubo endotraqueal de 4,5 mm de diâmetro interno | Medline | DYND43045 | Estabelecer via aérea para hibernação |
| Tubo endotraqueal de 5,0 mm ID | Medline | DYND43050 | Estabelecer via aérea para hibernação |
| Tubo endotraqueal de 6,5 mm ID | Medline | DYND43065 | Estabelecer via aérea para Revasc, ressonância magnética e terminação |
| Tubo endotraqueal de 7,0 mm ID | Medline | DYND43070 | Estabelecer via aérea para Revasc, ressonância magnética e terminação |
| Manta Bair Hugger - Tamanho grande, parte inferior da carroceria | Medline | AUG55501 | Sistema de aquecimento do paciente |
| Pacote básico | Medline | DYNJP1000 | Cortinas estéreis e capa de mesa |
| Cera | Medline | ETHW31G | Hemostasia de osso cortado |
| Tubo de sucção | Medline | DYND50223 | |
| Recipiente de sucção | Medline | DYNDCL03000 | |
| Seringa de 1 mL | Medtronic/Covidien | 1188100777 | Administrar agentes injetáveis |
| Seringa de 12 mL | Medtronic/Covidien | 8881512878 | Administrar agentes injetáveis |
| 20 mL Seringa | Medtronic/Covidien | 8881520657 | Administrar agentes injetáveis |
| 3 mL Seringa | Medtronic/Covidien | 1180300555 | Administrar agentes injetáveis |
| 6 mL Seringa | Medtronic/Covidien | 1180600777 | Administrar agentes injetáveis |
| 60 mL Seringa | Medtronic/Covidien | 8881560125 | Administrar agentes injetáveis |
| Kit de Soprador Kit de Soprador | Medtronic/Covidien | 22120 | Limpa o campo cirúrgico para anastomose |
| de vasos Roncurônio | Mylan | 67457-228-05 | Agente bloqueador neuromuscular |
| # 40 lâmina de corte | Oster | 078919-016-701 | Remover cabelo de locais de cirurgia |
| Máquina de cortar cabelo | Oster | 078566-011-002 | Remover cabelo de locais de cirurgia |
| Bupivicaína | Pfizer | 00409-1161-01 | Anestésico local |
| Cephazolin | Pfizer | 00409-0805-01 | Heparina antibiótica |
| Pfizer | 0409-2720-03 | anticoaggulante | |
| Lidocaína 2% | Pfizer | 00409-4277-01 | Anestésico local/ antiarrítmico |
| Succinilcolina 20 mg/mL | Pfizer | 00409-6629-02 | Agente bloqueador neuromuscular |
| Monitor de anestesia | Phillips Intellivue | MP70 | Suporta ventilação com inalante |
| Lágrimas Artificiais | Rugby | 0536-1086-91 | Lubrifique os olhos para evitar o ressecamento da córnea |
| Buprenorfina 0,3 mg/mL | Sigma Aldrich | B9275 | Analgésico pré-operatório para procedimentos de sobrevivência |
| Isoflurano | Sigma Aldrich | CDS019936 | Anestésico Geral- Inalante |
| 36" Tubulação de monitoramento de pressão | Smith' s Medical | MX563 | Connect art. Linha para transdutor |
| 48" Tubulação de monitoramento de pressão | Smith' s Medical | MX564 | Connect art. Linha para transdutor |
| Jelco 18 ga IV catheter | Smiths medical | 4054 | IV acesso em Revasc, MRI e Term |
| Jelco 20 ga IV catheter | Smiths medical | 4059 | IV access na MRI |
| Jelco 22 ga Cateter IV | Smiths medical | 4050 | Acesso IV em Procedimento de Hibernação |
| OPVAC Synergy II | Terumo Sistema Cardiovascular | 401-230 | Posicionador e Estabilizador de Coração |
| Serra Esternal/ Serra de Necropsia | Thermo Fisher | 812822 | Usado para abrir a cavidade torácica |
| Delrin Constrictor | U de MN | Feito sob medida | Cria estenose do cilindro E do tanque de |
| oxigênio | vários | vários | Usado para o soprador Mister se a máquina de anestesia não tiver medidor de fluxo auxiliar |
| Transdutor de pressão | vários | Deve se adaptar ao monitor de anestesia | Monitorar pressões arteriais diretas |
| Xylazine 100 mg/mL | Vedco | 468RX | Pré-operatório Sedativo/analgésico |
Referências
- Mozaffarian, D., et al. Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 350(2015).
- Di Carli, M. F., et al. Value of metabolic imaging with positron emission tomography for evaluating prognosis in patients with coronary artery disease and left ventricular dysfunction. Am J Cardiol. 73 (8), 527-533 (1994).
- Gerber, B. L., et al. Prognostic value of myocardial viability by delayed-enhanced magnetic resonance in patients with coronary artery disease and low ejection fraction: impact of revascularization therapy. J Am Coll Cardiol. 59 (9), 825-835 (2012).
- McFalls, E., et al. Regional glucose uptake within hypoperfused swine myocardium as measured by positron emission tomography. Am J Physiol-Heart C. 272 (1), 343-349 (1997).
- Velazquez, E. J., et al. Coronary-artery bypass surgery in patients with left ventricular dysfunction. New Engl J Med. 364 (17), 1607-1616 (2011).
- Canty, J. M., Fallavollita, J. A. Hibernating myocardium. J Nucl Cardiol. 12 (1), 104-119 (2005).
- Joyce, D., et al. Revascularization and ventricular restoration in patients with ischemic heart failure: the STICH trial. Curr Opin Cardiol. 18 (6), 454-457 (2003).
- Shah, B. N., Khattar, R. S., Senior, R. The hibernating myocardium: current concepts, diagnostic dilemmas, and clinical challenges in the post-STICH era. Eur Heart J. 34 (18), 1323-1336 (2013).
- Stone, L. L. H., et al. Magnetic resonance imaging assessment of cardiac function in a swine model of hibernating myocardium 3 months following bypass surgery. J Thorac Cardiov Sur. , (2016).
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