Method Article

Administração simples e eficaz e visualização de micropartículas no sistema circulatório de peixes pequenos usando injeção de rim

DOI:

10.3791/57491

June 17th, 2018

In This Article

Summary

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Este artigo demonstra os princípios de uma injeção rápida, minimamente invasiva de micropartículas fluorescentes para a circulatory system de peixes pequenos e a visualização na vivo das micropartículas em sangue de peixe.

Abstract

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A administração sistémica de tamanho micro partículas em um organismo vivo pode ser aplicada para a visualização da vasculatura, drogas e entrega de vacina, implantação de células transgénicas e pequenos sensores ópticos. No entanto, microinjeções intravenosas em animais de pequenos porte, que são principalmente usados em laboratórios biológicos e veterinários, são muito difíceis e exigem pessoal treinado. Aqui, vamos demonstrar um método robusto e eficiente para a introdução de micropartículas no sistema circulatório do adulto peixe-zebra (Danio rerio) por injeção para o rim de peixe. Para visualizar as micropartículas introduzidas na vasculatura, propomos uma técnica simples de intravital imagem em guelras de peixe. In vivo , monitoramento do zebrafish pH sangue foi realizada utilizando um fluorescente microencapsulado injetado sonda, SNARF-1, para demonstrar uma das possíveis aplicações da técnica descrita. Este artigo fornece uma descrição detalhada do encapsulamento do corante sensíveis ao pH e demonstra os princípios da injeção rápida e visualização das microcápsulas obtidas para in vivo de gravação do sinal fluorescente. O método proposto de injeção é caracterizado por uma taxa de mortalidade baixa (0-20%) e alta eficiência (70-90% de sucesso) e é fácil de instituir utilizando equipamentos comumente disponíveis. Todos os procedimentos descritos podem ser executados em outras espécies de peixes pequenos, tais como guppies e medaka.

Introduction

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A administração de microtamanho de partículas em um organismo animal é uma tarefa importante em áreas como a droga e vacina entrega1, vasculatura visualização2, implantação de célula transgénicos3e implantação minúsculo sensor óptico 4 , 5. no entanto, o procedimento de implantação para microescala partículas dentro do sistema vascular dos animais de laboratório pequeno é difícil, especialmente para os organismos aquáticos delicados. Para amostras de pesquisa populares como zebrafish, aconselha-se que estes procedimentos ser esclarecido us....

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Protocol

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Todos os procedimentos experimentais foram realizados em conformidade com a directiva da União Europeia 2010/63/UE para experiências em animais e foram aprovados do Animal temas pesquisa Comissão do Instituto de biologia na Universidade Estatal de Irkutsk.

1. fabricação de microcápsulas

Nota: Microcápsulas carregando uma tintura fluorescente são preparadas usando um conjunto de camada por camada de polieletrolitos oposta carregado7,8. Todos os procedimentos foram realizados em temperatura ambiente.

  1. Para sintetizar porosa CaCO3 microco....

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Results

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Os resultados obtidos vêm de um dos três principais categorias do protocolo apresentado: a formação de micropartículas fluorescentes por encapsulamento de um corante fluorescente (Figura 1), a injeção de rim de microcápsulas com mais visualização no Gill capilares (Figura 2 e 3) e, finalmente, na vivo espectral gravação de fluorescência SNARF-1 para monitorar níveis de pH (

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Discussion

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Para demonstrar a injeção de micropartículas no rim zebrafish, usamos semi-permeável microcápsulas carregadas com um corante indicador. Assim, o protocolo contém instruções para a preparação das microcápsulas usando o assembly de camada por camada de polieletrolitos oposta carregado7,8,15,16,17 ,18 (figu.......

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Disclosures

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Os autores não têm nada para divulgar.

Acknowledgements

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Autores grandemente reconhecem a ajuda de Bogdan Osadchiy e Evgenii Protasov (Universidade Estatal de Irkutsk, Rússia) em preparação do protocolo de vídeo. Esta pesquisa foi apoiada pela Fundação de ciência russo (#15-14-10008) e a Fundação russo de pesquisa básica (#15-29-01003).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
SNARF-1-dextran, 70000 MWThermo Fisher ScientificD3304Sonda fluorescente. Qualquer outro corante fluorescente ligado a polímero apropriado pode ser usado como enchimento de microcápsula
Conjugado de isotiocianato de albumina-fluoresceína (FITC-BSA)SIGMAA9771Sonda fluorescente
Isotiocianato de rodamina B-Dextrano (RITC-dextrano)SIGMAR9379Sonda fluorescente
Cloreto de cálcioSIGMAC1016CaCO3 formação
de modelosCarbonato de sódioSIGMAS7795CaCO3 formação de modelos
Poli(cloridrato de alilamina), MW 50000 (PAH)SIGMA283215Polímero catiônico
Poli(4-estirenossulfonato de sódio), MW 70000 (PSS)SIGMA243051Polímero aniônico
Poli-L-lisina [20 kDa] enxertado com polietilenoglicol [5 kDa], g = 3,0 a 4,5 (PLL-g-PEG)SuSoSPLL(20)- g[3.5]-PEG(5)Polímero final para aumentar a biocompatibilidade de microcápsulas Cloreto de
sódioSIGMAS8776Para dissolver polímeros aplicados
Sistema de Purificação de ÁguaMilliporeSIMSV0000Para preparar água deionizada
Agitador magnéticoSteglerPara formação
de modelos de CaCO3Eppendorf  Pesquisa  mais pipeta, 1000 µ LEppendorfSoluções de dosagem
Eppendorf  Pesquisa  mais pipeta, 10 µ LEppendorfSoluções de dosagem Ponteiras de
pipeta, faixa de volume de 200 a 1000 µ LF.L. Medical28093Soluções de dosagem
Pontas de pipeta, faixa de volume 0.1-10  μ LEppendorfZ640069Soluções de dosagem
Mini-centrífuga Microspin 12,BioSanPara procedimento de centrifugação-lavagem de microcápsulas
Tubos de microcentrífuga, 2 mLEppendorfZ666513Síntese e armazenamento de microcápsulas
Agitador Intelli-mixer RM-1LELMY Ltd.Para reduzir a agregação de microcápsulas
ultrassônicaPara reduzir a agregação de microcápsulas
Fones de ouvido Para proteger os ouvidos do ultrassom
Ácido etilenodiaminotetracéticoSIGMAEDSPara dissolver os modelos de CaCO3
Fosfato monossódicoSIGMAS9638Preparação de tampões de pH
Fosfato dissódicoSIGMAS9390Preparação de tampões de pH
Hidróxido de sódioSIGMAS8045Para ajustar o pH da solução de EDTA e tampões
Câmara do termostatoPara secar microcápsulas em lâmina de vidro
Hemocitômetro câmaraPara investigar a distribuição de tamanho e concentração das microcápsulas preparadas
Microscópio fluorescente Mikmed 2LOMOVisualização in vivo de microcápsulas em sangue
de peixeConjunto de filtros fluorescentes para SNARF-1 (deve ser escolhido dependendo do modelo do microscópio; o exemplo é fornecido)Chroma79010Visualização de microcápsulas com sondas fluorescentes
Espectrômetro de fibra QE ProOcean OpticsCalibração de microcápsulas sob microscópio
Fibra óptica QP400-2-VIS NIR, 400 μ m, 2 mOceânicaPara conectar o espectrômetro com a porta do microscópio
Colimador F280SMA-AThorlabsPara conectar o espectrômetro com a porta do microscópio
sob microscópio
Microcapilares de vidro Intra MARK, 10 µ LBlaubrandBR708709Para coletar sangue de peixe
Óleo de cravoSIGMAC8392Anestesia de peixe
Lanceta nº 11Apexmed international B.V.P00588Para cortar a cauda do peixe e soltar a agulha de aço da ponta do autoinjetor de insulina
Heparina, 5000 U/mLCalbiochemL6510-BCPara tratar todas as superfícies que entram em contato com o sangue de peixe durante a coleta de sangue de peixe
Seven 2 Go Pro pH-meter com um microeletrodoMettler ToledoPara determinar o pH do sangue de peixe
Agulhas de caneta de insulina Micro-Fine Plus, 0,25 x 5 mmBecton, Dickinson and CompanyPara procedimento de injeção. Qualquer agulha fina (Ø 0,33 mm ou menos) é apropriada
Capilares de vidro, 1 x 75 mmHirschmann Laborgerä te GmbH & Co9201075Para procedimento de injeção
Tochade gás Para soldar agulha de aço ao capilar de vidro
Microinjetor IM-9BNARISHIGEPara dosagem precisa de microcápsulas suspensão Placas de
Petri, 60 mm x 15 mm, poliestirenoSIGMAP5481Para manipulações com peixes sob anestesia
Colherde plásticoPara manipulações com peixes sob anestesia
EsponjaPara manipulações com peixes sob anestesia
Tesoura de dissecçãoThermo Scientific31212Para remover a cobertura branquial da cabeça do peixe
Pipeta Pasteur, 3,5 mLMARCAZ331767Para umedecer as guelras dos peixes
de alta velocidade Limpeza de contagem de células sanguíneas Óptica Lâmina de microscópio de vidro Fisherbrand 12-550-A3 Calibração de microcápsulas sob microscópio Lamínulas, 22 x 22 mm Pérola MS-SLIDCV Calibração de microcápsulas úmida

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Rivas-Aravena, A., Sandino, A. M., Spencer, E. Nanoparticles and microparticles of polymers and polysaccharides to administer fish vaccines. Biol. Res. 46 (4), 407-419 (2013).
  2. Yashchenok, A. M., Jose, J., Trochet, P., Sukhorukov, G. B., Gorin, D. A.

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Microparticle InjectionFish KidneyIntravital ImagingMicrocapsule PreparationFluorescent ProbeBlood pH MonitoringZebrafish Circulatory SystemLayer by Layer EncapsulationGill VisualizationSpectral Analysis

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