Method Article

Um método de preparação de amostra eficiente para melhorar os sinais de íon carboidrato em espectrometria de massa de ionização/dessorção de Matrix-assisted Laser

DOI:

10.3791/57660

July 29th, 2018

In This Article

Summary

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Um protocolo para melhorar os sinais de íon de carboidrato em espectrometria de massa MALDI por reformas estruturas cristalinas durante os processos de preparação de amostra é demonstrado.

Abstract

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Preparação da amostra é um processo crítico na análise de espectrometria de massa (MS) de hidratos de carbono. Apesar de dessorção/ionização de laser assistida por matriz (MALDI) MS é o método de escolha na análise de hidrato de carbono, reprodutibilidade de dados e sinal pobre do íon de amostras de hidrato de carbono continuam a ser problemas graves. Para análise quantitativa de hidratos de carbono, um protocolo eficaz analítico, oferecendo qualidade superior dos dados é necessário. Este vídeo demonstra os protocolos de preparação de amostra para melhorar a intensidade do sinal e minimizar a variação de dados de carboidratos em MALDI-MS. Após a secagem e cristalização de gotas da amostra, a morfologia do cristal é reformada por metanol antes da análise de espectrometria de massa. A melhoria no sinal de hidrato de carbono é examinada com espectrometria de massa MALDI imagem (IMS). Resultados experimentais mostram que a reforma de cristal ajusta estruturas cristalinas e redistribui os analitos de hidrato de carbono. Em comparação com o método de preparação de gotas secas em convencional MALDI-MS, reforma morfologias de cristal de hidrato de carbono com metanol mostra significativamente melhor intensidade de sinal, distribuição de imagem de íon e estabilidade de dados. Desde os protocolos demonstrados neste documento não implicam mudanças na composição da amostra, eles são geralmente aplicáveis aos vários hidratos de carbono e matrizes.

Introduction

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Análise de carboidratos é um assunto importante e desafiador. Carboidratos e seus derivados desempenham importantes funções no vivendo organismos1,2,3. Estas moléculas têm complicado estruturas e são propensas a se decompor. Muitos deles não podem ser claramente caracterizados devido às dificuldades de separação e deteção. Apesar do laser assistida por matriz (MALDI) de dessorção/ionização espectrometria (MS) foi aplicada a análise de uma ampla gama de biomoléculas, devido à sua sensibilidade e resultados compreensíveis4, analisar carboidratos usando M....

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Protocol

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1. placa pré-condicionamento da amostra

  1. Limpeza da placa de amostra
    1. Use luvas de nitrilo para evitar a contaminação da placa da amostra durante a limpeza.
    2. Lave a placa da amostra com 100,0 mL de solução de detergente (1,0 mg/mL).
    3. Lave a placa da amostra com água destilada-deionizada (DDW).
    4. Enxague a superfície da placa de amostra com 30,0 mL de MeOH.
    5. Colocar a placa de amostra em um béquer de 600 mL e preenchimento com DDW até a placa da amostra está totalmente imerso em água.
    6. Coloque o copo em um ultra-som do banho (ver tabela de materiais) e....

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Results

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Imagens SEM representante de SLeA misturado com DHB preparado usando DD e métodos de recristalização são mostrados na Figura 1. Uma morfologia típica de DHB como preparado pelo método DD é grandes cristais em forma de agulha na borda e estruturas cristalinas bem no centro dos pontos de amostra. Os comprimentos típicos de tais cristais em forma de agulha são ~ 100 µm. Após a recristalização por MeOH, a amostra tem uma maior área coberta uniformement.......

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Discussion

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Heterogeneidade da amostra é que um problema crucial no DD MALDI-MS. é o mais usado método de preparação de amostra, mas os cristais resultantes são altamente heterogêneos. Tais exemplos mostram reprodutibilidade pobre sinal de tiro-ao-shot e amostra-para-amostra. Portanto, procurando por "sweet spots" em áreas de amostra durante a aquisição de dados é um procedimento comum em experimentos MALDI. Tais amostras heterogêneas são impróprias para quantificação em análises de rotina.

No estudo atua.......

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Disclosures

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Os autores não têm nada para divulgar.

Acknowledgements

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Os autores têm sem agradecimentos.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Reagente
Detergente em póAlconox242985
MetanolMerck106009
AcetonitrilaMerck100003
Ácido 2,5-di-hidroxibenzóico (DHB)Alfa AesarA11459
sialil-lewis A (SLeA)Sigma-AldrichS1782
MaltoheptaoseSigma-AldrichM7753
Mettler Toledo17005091
Tubo de microcentrífugaAxygenMCT-150-C
Equipamento
Milli-Q sistema de purificação de águaMilliporeZMQS6VFT1
Luvas de nitrilo sem póMicroflexSU-690
Copo de 600 mLDuran2110648
Limpador ultrassônicoDeltaDC300H
HigrômetroWisewind5330
Medidor de vazão de gás nitrogênioDwyerRMA-6-SSV
Termopares tipo KDigitron311-1670
Misturador de vórticeScientific Industries  SI-0236
Mini centrífugaSelect BioProductsForce Mini 
PipetaRaininpipet-lite XLS
EstereomicroscópioOlympusSZX16
Câmara de secagem com temperatura controlávelEste espectrômetro
Bruker Daltonics
MTP 384 placa alvo aço polido BCBruker Daltonics 8280781
Flexcontrol Versão 3.4Bruker DaltonicsSoftware de controle
Fleximaging Versão 2.1Bruker DaltonicsSoftware de imagem
Flexanalysis Versão 3.4Bruker DaltonicsSoftware de análise
Pontas de pipeta de massa Ultraflex II TOF/TOF de laboratório

References

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  1. Holme, D. J., Peck, H. Analytical Biochemistry. , 3rd edn, Addison Wesley Longman Limited. (1998).
  2. Costello, C. E. Time, life ... and mass spectrometry - New techniques to address biological questions. Biophysical Chemistry. 68 (1-3), 173-188 (1997).
  3. Caroff, M., Karibian, D.

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MALDI Mass SpectrometryCarbohydrate AnalysisSample PreparationCrystal ReformationMethanol TreatmentSignal EnhancementImaging Mass SpectrometryDried Droplet MethodUltrasonic BathMicroscope Examination

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