O objetivo do presente protocolo é executar hibridação in situ em amostras de coral adultas que foram incorporadas em parafina e seccionadas em lâminas de vidro. Este é um método qualitativo usado para visualizar a expressão espacial de uma sonda de anti-sentido RNA em tecidos de parafina.
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Artigo de método
In Situ Técnicas de hibridização para amostras de Coral adultas parafina
Neste artigo
Resumo
Resumo
Os corais são invertebrados oceano importantes que são cruciais para a saúde geral do oceano, bem como a saúde humana. No entanto, devido a impactos humanos tais como o aumento das temperaturas do oceano e a acidificação dos oceanos, os corais são cada vez mais sob ameaça. Para enfrentar esses desafios, avanços na biologia celular e molecular provaram para ser crucial para o diagnóstico da saúde dos corais. Modificar algumas das técnicas usadas em medicina humana poderia melhorar consideravelmente a capacidade dos investigadores para tratar e salvar os corais. Para resolver isso, um protocolo para a hibridação in situ utilizada principalmente em medicina humana e biologia do desenvolvimento evolutiva foi adaptado para uso em adultos corais sob estresse.
A finalidade desse método é Visualizar a expressão espacial de uma sonda de RNA no tecido coral adulto que foi incorporado em parafina e seccionado em lâminas de vidro. Este método concentra-se na remoção da parafina e reidratação da amostra, pré-tratamento da amostra para garantir a permeabilidade da amostra, pré-hibridação de incubação, hibridização da sonda RNA e visualização da sonda RNA. Este é um método poderoso quando usando organismos não-modelo para descobrir onde genes específicos são expressos, e o protocolo pode ser facilmente adaptado para outros organismos não-modelo. No entanto, o método é limitado, em que é essencialmente qualitativa, porque a intensidade de expressão pode variar dependendo da quantidade de tempo utilizado durante a etapa de visualização e a concentração da sonda. Além disso, a paciência é necessária, como este protocolo pode levar até 5 dias (e em muitos casos, mais tempo) dependendo da sonda sendo usado. Finalmente, coloração de fundo específico é comum, mas essa limitação pode ser superada.
Introdução
Os corais são construtores de ecossistema crítico e importante para a biodiversidade no oceano e a saúde humana1,2,3. Eles estão sob ameaça devido à mudança climática e outros estressores antropogênicas, e muitas espécies de corais são considerados criticamente em perigo. Assim, há uma necessidade significativa de ferramentas celulares e moleculares diagnosticar os corais sob estresse. Além disso, lá é pouco compreendida sobre onde os genes são expressos dentro tecido coral adulto e, portanto, pouca compreensão das funções destes genes. Para resolver esse problema, nós adaptamos o protocolo hibridação (ISH) em situ , comumente usado em medicina humana e biologia do desenvolvimento evolutiva, para uso em amostras de tecido de parafina de corais adultos. Esta técnica é mais poderosa quando usado em corais adultos que foram submetidos a um evento estressante como a exposição ao stress de calor. No entanto, esta técnica pode ser usada em uma ampla gama de tecidos e estágios de vida em corais e não está limitada a apenas tensão térmica corais4,6,7. Além disso, esta técnica pode ser usada em tecidos ou células de qualquer metazoan enquanto há informações de sequência de cDNA disponível.
A finalidade desse método é a visualização de sondas de RNA dentro de tecido coral adulto que foi preservada e incorporado em parafina e seccionados em slides. Este método é uma poderosa ferramenta de diagnóstico que permite a visualização dos ácidos nucleicos dentro de tecido coral adulto. Este método foi desenvolvido inicialmente para o diagnóstico médico, e ele se tornou uma ferramenta popular em campos como a biologia do desenvolvimento e biologia evolutiva do desenvolvimento8,9,10. ISH é também um método crítico, particularmente em sistemas não-modelo, quando genômica e dados de sequência de transcriptomic estão disponíveis, mas padrões de expressão de gene espaciais são desconhecidos. Para o trabalho de diagnóstico em sistemas não-modelo, essa técnica é poderosa porque pode indicar quais as células e tecidos expressam um gene de interesse e podem levar a mais abordagens terapêuticas alvo8,9,10, 11,12. Por último, esta técnica é qualitativa e mais poderoso quando combinado com a expressão de gene quantitativa dados11.
A abordagem descrita neste documento será de interesse para os investigadores que já projetou uma Digoxigenina (DIG)-rotulado sonda RNA (tanto o sentido e antisentido sondas) e estão agora prontos para realizar a hibridação in situ das sondas para uma amostra. Para executar este método, duas seções seriais de um tecido de parafina coral serão necessários para cada sonda sendo testada. Uma seção será usada para a sonda de sentido e o outro para a sonda antisentida. A sonda de sentido será um controle para indicar a ligação não-específica. Se a coloração é observada na sonda de sentido, então, a sonda antisentida não é específica para o RNA de interesse. Sondas podem ser projetadas para qualquer gene expressada. Neste protocolo, são usados vários exemplos que anteriormente foram encontrados para ser expressa durante o stress de calor em corais: homólogo B (Fos-B), proteína ativador (AP1), do oncogene viral do osteossarcoma murino de Fernandes e fator de necrose tumoral receptor 41 (41 TNFR)11. ISH usando sondas de RNA escavar-etiquetadas é preferível usando sondas radioactivas porque sua manipulação é muito mais seguro,10. Além disso, esta técnica é altamente sensível e pode ser executada em uma ampla gama de tecidos e embriões além da tensão térmica corais adultos13,14,15,16.
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Protocolo
1. remoção da parafina
Atenção: Execute as seguintes etapas sob uma coifa.
- Dewax os slides fino-seccionado de parafina com xilol 100% sob o capô em potes de vidro Coplin por 10 min. Não use frascos plásticos de Coplin, xileno derrete o plástico. Esterilize os frascos de Coplin em autoclave antes de usar.
- Prepare-se quatro frascos de Coplin de vidro estéril com o seguinte: etanol 100%, 80% de etanol, etanol 70% e 60% de etanol. Dilua o etanol com água livre de RNase.
- Transferir os slides para a jarra de Coplin vidro estéril com 100% de etanol e embeba-os por 10 min. Depois de 10 min, esvaziar o copo de Coplin e substitua por nova 100% de etanol. Mergulhe os slides novamente por 10 min.
- Transferi os slides para a jarra de Coplin vidro estéril com 80% de etanol por 1 min.
- Transferi os slides para a jarra de Coplin vidro estéril com etanol a 70% por 1 min.
- Transferi os slides para a jarra de Coplin vidro estéril com etanol 60% por 1 min.
2. pré-tratamento de Slides para preparação de hibridização da sonda RNA
- Execute as lavagens seguintes à temperatura ambiente, a menos que especificado em contrário. Realize lavagens de temperatura em um agitador orbital a uma velocidade lenta. Use utentes slide estéril com espaço para até cinco slides para a lavagem dos slides.
- Transferi os slides para um mailer slide estéril com 18 mL de 1x salina tamponada fosfato (PBS). Lavagem por 5 min à temperatura ambiente.
- Despeje a PBS 1x e tratar imediatamente o tecido nos slides com proteinase K, para permitir a penetração da sonda do tecido. Adicionar aproximadamente 18 mL de solução de proteinase K ao mailer slide (ver tabela 1 para trabalhar a concentração da solução). Incube a 37 ° C por 15 min. Não agite.
- Enquanto os slides estão incubando, prepare o prehybridization buffer (Buffer de Prehybe). Coloque o Buffer de Prehybe em um banho de água fervente durante 10 minutos e, em seguida, deixe esfriar sobre um banho de gelo por 5 min. Para uma receita de Prehybe de Buffer, consulte tabela 1.
- Parar a digestão da reação de proteinase K derramando a solução de proteinase K e imediatamente adicionar 18 mL de solução de glicina-PBS de 0,2% para o mailer de slide. Deixe o mailer slide sentar-se à temperatura ambiente por 5 min.
- Deite fora a solução de glicina-PBS de 0,2% e adicionar 18 mL de solução de citrato de sódio salina (SSC) 2 x para mailer cada slide. Lave os slides no 2 x SSC por 10 min à temperatura ambiente, com agitação em 100-150 rpm.
3. prehybridization de Slides em preparação para a hibridização da sonda RNA
- Enquanto os slides estão sendo lavados com 2 x SSC, obter um novo mailer slide estéril e colocou o mailer slide aproximadamente 18 mL de tampão de Prehybe. Coloque o mailer slide no forno na temperatura de hibridização hibridização.
Nota: A temperatura de hibridização dependerá da sonda a ser usada, mas geralmente varia de 50-60 ° C. - Concluída a lavagem de 2 x SSC, despeje o 2x SSC e lugar os slides dentro o mailer slide no Buffer de Prehybe o forno de hibridização por 1h.
4. hibridização da sonda RNA
- Enquanto os slides estão incubando com o Buffer de Prehybe no forno da hibridação, prepare a solução de hibridação-sonda.
- Dilua cada sonda em tampão de hibridização (0,5 µ l de sonda com 24,5 µ l de tampão de Hibridização).
Nota: A receita para o tampão de hibridização encontra-se na tabela 1. Um exemplo de preparação de sonda e concentrações pode ser encontrado em Traylor-Knowles et al 11. - Coloque a sonda diluída em um bloco de calor de 86-90 ° C por 12 min e, em seguida, deixe esfriar por 1 min no gelo.
- Dilua cada sonda em tampão de hibridização (0,5 µ l de sonda com 24,5 µ l de tampão de Hibridização).
- Remover o mailer slide do forno de hibridização e retire slides individualmente o mailer de slide usando uma pinça estéril. Coloque os slides sobre uma toalha de papel e cuidadosamente Limpe o excesso de Prehybe de Buffer ao redor as amostras de tecido. Tenha cuidado para não tocar as amostras e trabalho rapidamente para impedir a secagem das amostras de tecido.
- Cercar o tecido com uma caneta PAP. Aplicar 25 µ l de solução diluída de sonda com uma pipeta e cobrir a amostra com uma lamela de plástico.
- Coloca as amostras na câmara de umidade de slide com 4 x SSC + solução de formamida 50% na parte inferior da câmara.
- Depois de sondas foram adicionadas a todos os slides, colocar a câmara de umidade de slide no forno hibridização pelo menos 24 h a uma temperatura de hibridação de 50-60 ° C. O tempo de incubação pode variar dependendo da concentração da sonda, mas deve ser por um período mínimo de 24 horas.
- Após a incubação durante a noite com as sondas diluídas, remova a câmara de umidade de slide do forno de hibridização.
- Remova as lamelas de cada um dos slides, tomando cuidado para não deslocar o tecido. Em uma pipeta de 1000 µ l, adicionar 1000 µ l de solução de x SSC 2 e delicadamente lave o slide.
- Coloque o slide em um mailer slide estéril com 18 mL de solução de x SSC 2 por 5 min à temperatura ambiente. Deite fora a solução e substituí-lo com 18 mL de fresco 2 x SSC. Repeti a incubação por 5 min à temperatura ambiente com agitação suave.
- Despeje a solução de x SSC a 2. Adicione 18 mL de 1 solução x SSC e lavagem por 5 min à temperatura ambiente. Deite fora a solução de x SSC 1 e substituí-lo com 18 mL de fresco 1 x SSC. Repita a incubação por 5 min à temperatura ambiente com agitação suave.
- Deite fora a 1 x SSC. Adicione 18 mL de 0.5 x SSC e lavagem por 10 min a 42 ° C sem tremer. Deite fora a 0,5 x SSC e substituir com 18 mL de 0.5 fresco x SSC. Lave novamente por 10 min a 42 ° C, sem agitação.
5. visualização da sonda RNA
Nota: Para visualizar a sonda, o roxo BM será usado durante o processo de desenvolvimento. No entanto, antes desta etapa, várias lavagens são necessárias para preparar as amostras para a coloração.
- Lave os slides com 18 mL de tampão de fosfatase alcalina (AP-tampão) sem MgCl2 por 1 min. Despeje o AP-Buffer sem MgCl2e adicionar 18 mL de tampão de bloqueio 1 x Boehringer Mannheim diluído com tampão de ácido maleico. Incube durante pelo menos 1 h à temperatura ambiente em um mailer slide com agitação suave.
Nota: Os buffers de bloqueio Boehringer Mannheim e ácido maleico utilizados foram premade e comprados na lavagem de escavação e bloco Buffer definido (disponível comercialmente).- Alternativamente, pode ser realizada a incubação durante a noite a 4 ° C. Um período mais bloqueio irá diminuir a aparência de ligação não-específica.
- Preparar os 20 mL diluídos fragmentos Fab anti-Digoxigenina-AP de escavação (anticorpo antiescavação = 2 µ l de anticorpo antiescavação + 20 mL 1 x tampão de bloqueio Boehringer Mannheim). Isto é suficiente para uso em 1 mailer corrediça plástica. Mais esta solução devem ser preparada se mais de um slide mailer é para ser usado.
- Adicione o anticorpo antiescavação para um mailer estéril slide novo e transferir os slides para o mailer slide com a solução de anticorpo antiescavação. Incube a temperatura ambiente por 3 h com agitação suave.
- Após a incubação, deite fora o anticorpo antiescavação e lavar as lâminas no mailer slide com 18 mL de AP-tampão sem MgCl2 por 5 min com agitação suave.
- Deite fora o AP-Buffer sem MgCl2 e adicionar 18 mL de AP-tampão. Lavagem por 5 min com agitação suave. Após a incubação de 5 min, deite fora o AP-Buffer, substituí-lo com 18 mL de AP-Buffer fresco e lavar por 5 min com agitação suave.
- No escuro, deite fora o AP-Buffer e adicionar 18ml de BM roxo ao mailer slide. A incubar à temperatura ambiente no escuro, à procura de desenvolvimento de cor roxa que cada ½ h. tempos de reação para visualização irá variar com base na sonda que está sendo desenvolvida.
Nota: Em vez de visualização BM roxo, solução de desenvolvimento pode ser feita usando 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-phosphate (BCIP) e nitro-azul de tetrazólio (NBT). Para obter instruções, consulte a tabela 1 . - Pare o desenvolvimento de cor pela transferência de slides para um mailer estéril slide novo com 18 mL de tampão Tris-EDTA (TE) por 5 min à temperatura ambiente, no escuro.
- Despeje o tampão TE e adicionar 18 mL de água livre de RNase para o slide mailer e lavagem por 1 min, no escuro.
- Retire as lâminas da água e seque-as ao redor das bordas do tecido. Adicionar o glicerol médio de montagem e coloque as lamelas. Armazene os slides a 4 ° C até fotos esteja prontas para ser levado.
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Resultados
Depois de completar este protocolo, identificação de células e tecidos que estão expressando a sonda RNA de interesse será alcançada. Os resultados representativos para este protocolo são para a AP-1, FosB e TNFR41. Estes resultados, publicados anteriormente por Traylor-Knowles et al 11, sondas de mostrar a expressão espacial do RNA em corais adultos que foram expostos ao stress de calor. Dois exemplos de diferentes tipos de coloração são apresentados na <...
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Discussão
O método descrito neste protocolo foi modificado do trabalho anterior em médicos e evolutiva do desenvolvimento pesquisa8,9,10,12,17. Este protocolo incide sobre as nuances de uma hibridação in situ com uma sonda de anti-sentido RNA escavar-etiquetadas em corais adultos, que foram preservados e incorporados em parafina. Esse método pode ser facilmente...
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Divulgações
Os autores não têm nada para divulgar.
Agradecimentos
Este trabalho foi financiado pelo prêmio nenhum. OCE-1323652 através da no.1012629 nacional Science Foundation oceano ciência Postdoctoral Fellowship e prêmio da Burroughs Wellcome fundo pós-doutorado programa de enriquecimento.
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Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Solução de Denhardt | Affymetrix | 70468 50 ML | |
| Bioworld Tampão de fosfatase alcalina | Fisher | 50-198-724 | |
| Envelopes de lâmina | Fisher | 12-587-17B | |
| Bioworld Tampão de fosfatase alcalina | Fisher | 50-198-724 | |
| 50 mL Tubos Falcon | Fisher | 14-959-49A | |
| Solução de DNA de esperma de salmão ultrapuro | Invitrogen | 15632-011 | |
| PBS - Solução salina tamponada com fosfato (10X) pH 7,4 | Invitrogen | AM9625 | |
| Água destilada sem DNase/RNase ultrapura, 10 x 500 mL | Invitrogen | 10977-023 | |
| Água destilada sem DNase/RNase ultrapura, 10 x 500 mL | Invitrogen | 10977-023 | |
| Solução de DNA de esperma de salmão ultrapuro | Invitrogen | 15632-011 | |
| Adesivo superior de ápice branco deslizante | Solução Leica Biosystems | 3800080 | |
| PBS, pH 7.4 | Life Technologies | 10010072 | |
| Proteinase K, Grau Molecular, 2 mL | England Biolabs | P8107S | |
| Bloqueador Líquido | Promega | 22309 | |
| DIG Anti-Digoxigenina-AP Fragmentos de fabricação | Roche | 11093274910 | |
| BM Purple, 100 mL | Roche | 11442074001 | |
| DIG Wash and Block Buffer Set | Roche | 11585762001 | |
| NBT/BCIP | Roche | 11681451001 | |
| Solução de formaldeído, tamanho 500 mL | Sigma-Aldrich | 252549-500ML | |
| SSC Buffer 20X concentração | Sigma-Aldrich | S6639-1L | |
| Anidrido Acético | Sigma-Aldrich | 320102-100ML | |
| Formamida | Sigma-Aldrich | 47670-250ML-F | |
| Trietanolamina | Sigma-Aldrich | 90279-100ML | |
| Sal de heparina sódica da mucosa intestinal suína | Sigma-Aldrich | H3149-10KU | |
| Xilenos, AR (ACS), para uso | histológicoVWR | MK866806 | |
| Etanol | VWR | EM-EX0276-4S | |
| Amortecedor TE | VWR | Forno de | |
| VWR | 97005-252, 97005-254 | ||
| Agitador orbital | VWR | 89032-088 |
Referências
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Reimpressões e permissões
