Method Article

Fratura aparelhos Design e otimização de protocolo para fraturas fechadas-estabilizado em roedores

DOI:

10.3791/58186

⸱

August 14th, 2018

 ,  ,  , 
1College of Osteopathic Medicine, Michigan State University, 2Department of Orthopaedic Surgery, University of Michigan Medical School, 3Lymann Briggs College, Michigan State University, 4College of Engineering, Michigan State University

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

O objetivo do protocolo é otimizar os parâmetros de geração de fratura para produzir fraturas consistentes. Este protocolo é responsável para as variações no tamanho do osso e morfologia que possam existir entre os animais. Além disso, um aparelho de fratura cost-effective, ajustável é descrito.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

A geração confiável de fraturas estabilizadas consistentes em modelos animais é essencial para compreender a biologia de regeneração óssea e desenvolvimento de terapêuticas e dispositivos. No entanto, modelos de lesão disponíveis são atormentados por inconsistência, resultando em desperdício de animais e recursos e dados imperfeitos. Para resolver este problema da heterogeneidade de fratura, o objetivo do método aqui descrito é otimizar a geração de fratura parâmetros específicos para cada animal e produzir uma fratura consistente localização e padrão. Este protocolo é responsável por variações no tamanho do osso e morfologia que possam existir entre estirpes de rato e pode ser adaptado para gerar fraturas consistentes em outras espécies, como o rato. Além disso, um aparelho de fratura cost-effective, ajustável é descrito. Em comparação com as técnicas atuais de fratura estabilizada, o protocolo de otimização e novos aparelhos de fratura demonstram maior consistência nos padrões de fratura estabilizada e locais. Usando otimizado parâmetros específicos para o tipo de amostra, o protocolo descrito aumenta a precisão dos traumas induzidos, minimizando a heterogeneidade de fratura normalmente observada nos processos de geração de fratura fechada.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pesquisa sobre a consolidação da fratura é necessária para resolver um grande problema clínico e económico. Cada ano mais 12 milhões de fraturas são tratadas no Estados Unidos1, custando US $ 80 bilhões por ano2. A probabilidade de um macho ou fêmea a sofrer uma fratura ao longo da vida é de 25% e 44%, respectivamente3. Problemas associados com a consolidação da fratura são esperados para aumentar com comorbidades mais que a população envelhece. Para estudar e resolver este problema, modelos sólidos de geração da fratura e estabilização são necessários. Modelos de roedores são ideais para essa finalidade. Eles fornecem a relevância clínica e podem ser modificados para as condições específicas do endereço(ou seja, múltiplas lesões, fracturas abertas, fechadas, isquêmicas e infectadas). Além de replicar cenários clínicos, modelos animais de fratura são importantes para a compreensão da biologia óssea e em desenvolvimento de terapêuticas e dispositivos. No entanto, as tentativas para estudar as diferenças entre as intervenções podem ser complicadas pela variabilidade introduzida pela geração de fratura inconsistente. Assim, gerar fraturas reproduzíveis e consistentemente fechadas em modelos animais é essencial para o campo de pesquisa músculo-esquelética.

Apesar de controlar corretamente para potenciais heterogeneidade do assunto, garantindo o fundo genético apropriado, sexo, idade e condições ambientais, a produção de lesões ósseas consistentes clinicamente relevante é uma variável significativa que afectam reprodutibilidade que deve ser controlada. Comparações estatísticas usando inconsistentes fraturas são atormentadas com ruído experimental e uma alta variabilidade4; Além disso, a variabilidade de fratura pode resultar em morte desnecessária de animais devido à necessidade de aumentar o tamanho da amostra ou a necessidade de eutanásia em animais com fraturas cominutivas ou malpositioned. O objetivo do método aqui descrito é otimizar os parâmetros de geração de fratura que são específicos para o tipo de amostra e produzir uma fratura consistente localização e padrão.

Modelos atuais de geração de fratura caem em duas categorias amplas, cada um com suas próprias forças e fraquezas. Modelos de aberto-fratura (osteotomia) se submeter à cirurgia para expor o osso, após o qual uma fratura é induzida pela corte do osso ou enfraquecimento isso e depois quebrá-lo manualmente5,6,7,8. Os benefícios deste método são a visualização directa do local da fratura e um local de fratura mais consistente e padrão. No entanto, a relevância clínica e fisiológica da abordagem e mecanismo de lesão são limitadas. Além disso, o open métodos de geração de fratura requerem uma abordagem cirúrgica e encerramento com períodos prolongados, durante o qual os roedores estão expostos a um risco aumentado de contaminação.

Técnicas fechadas abordar muitas das limitações da técnica aberta. Fechado técnicas produzem fraturas usando um aplicados externamente um traumatismo que provoca lesão no osso e tecidos circundantes, mais semelhantes aos observados em lesões clínicas humanas. O método mais comum foi descrito por Bonnarens e Einhorn em 19849. Eles descreveram uma guilhotina ponderada, sendo usada para transmitir um trauma para quebrar o osso, sem causar quaisquer feridas de pele externa. Este método tem sido amplamente adotado para estudar o efeito da genética10,11, terapia farmacológica12,13,14,15, mecânica16, 17e fisiologia18,19,20 na consolidação óssea em camundongos e ratos. Enquanto o benefício de métodos fechados é fisiologicamente relevantes fraturas, rigor e reprodutibilidade experimental são limitados pela heterogeneidade de fratura. A geração de fratura inconsistente resulta em uma diferenciação entre grupos limitada, espécimes perdidos e um aumento em animais necessários para alcançar significância estatística.

Controlar a variabilidade na geração de fratura e estabilização é essencial para produzir resultados significativos. A fim de estudar adequadamente a biologia do reparo de fratura, é necessário um modelo de fratura simples, porém robusta. O modelo deve ser traduzível para roedores, tipos de osso (fêmur ou tíbias, por exemplo) e através de origens genéticas do mouse variável e induzidas mutações. Além disso, o procedimento ideal deve ser tecnicamente simples e produzir resultados consistentes. A heterogeneidade de fratura de endereço, o método descrito neste documento é a construção de um dispositivo de fratura bem controlados que pode ser usado para otimizar parâmetros e gerar fraturas consistentemente fechadas, independentemente da idade, sexo ou genótipo.

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Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este protocolo foi desenvolvido para garantir que os animais não são utilizados desnecessariamente e são poupados toda dor desnecessária e aflição; adere a todas as leis federais, estaduais, locais e institucionais e as diretrizes que regem a pesquisa animal. O protocolo foi desenvolvido sob a orientação de um laboratório universitária, programa de medicina Animal dirigido por veterinários especializado em medicina de animais de laboratório. O protocolo foi revisado e aprovado pelo cuidado institucional do Animal e Comissão de utilização (IACUC).

1. fratura torre construção

Nota: Todas as peças estão listadas na seção de materiais (Tabela de materiais). Desenhos técnicos detalhados são fornecidos para as peças usinadas e 3D-impresso em complementar figuras 1-12. Os desenhos técnicos de submontagem incluem detalhes de fixação para todas as partes montadas (complementar as figuras 1, 2, 7 e 9).

  1. Subconjunto de suporte
    Nota: Para um desenho técnico do subconjunto de suporte, consulte complementar Figura 1.
    1. Anexe o Feixe de suporte — seção de mandíbula , no ponto médio do Feixe de suporte — secção Horizontal.
    2. Anexe o Feixe de suporte — Vertical 1 a superfície superior do Feixe de suporte — seção de mandíbula, 2 no Feixe de suporte — secção Horizontal.
    3. Anexe o Feixe de suporte — Vertical 2 a superfície superior do Feixe de suporte — secção Horizontal no ponto médio (7 da extremidade).
    4. Anexe o feixe, suporte..--placa de montagem à extremidade da Viga suporte — Vertical 1 e Viga suporte — Vertical 2. O fim do suporte da placa deve ser nivelado com as costas da Viga de suporte..--Vertical 2.
  2. Subconjunto de RAM
    Nota: Para um desenho técnico do subconjunto de memória ram, consulte complementar Figura 2.
    1. Máquina do bloco de parar e o bloco guia complementar Figura 3; o Rod Ram (complementar a Figura 4); o alinhamento de parafuso (complementar a Figura 5); e a placa de montagem (complementar a Figura 6).
    2. Fixe a Placa de montagem para a Viga suporte..--placa de montagem do subconjunto de suporte.
    3. Na seguinte ordem, deslize o primeiro Rolamento Linear de manga; o Guia de bloco; a segunda Manga Linear do rolamento; e o bloco parar na Ram Rod. Anexe as guias e os blocos para a Placa de montagem.
    4. Anexe três ⅜-em porcas à porção roscada da Haste de Ram. Um deve ser nivelado com a ponta da vara para se envolver com o eletroímã. Os outros 2 será usado para ajustar a profundidade de fratura.
    5. Alinhe o grove na Rod Ram virado para a frente e insira o Parafuso de alinhamento do furo roscado do Bloco guia.
  3. Subconjunto de ímã
    Nota: Para um desenho técnico do subconjunto do ímã, consulte complementar a Figura 7.
    1. O eletroímã leva ao fio de solda (polaridade não é um fator para a operação do eletroímã). Permita comprimento suficiente alcançar o chão, onde será posicionado o dispositivo de fratura. Uso de braçadeiras ou outra forma de apego ao estresse aliviar o fio.
    2. Tira a Alimentaçãodo fim e conectá-lo com o Pé no Pedal. Finalmente, ligar o fio do Pedal do pé em uma configuração de "fora" (normalmente aberto). Teste o circuito para garantir que o eletroímã é sobre quando o Interruptor de pé não é pressionado. Isto irá realizar a ram-se antes da fratura.
    3. Imprimir o Mount Magnet (complementar figuras 8A e 8B) usando um dispositivo de fabricação aditiva, ou a parte de alumínio da máquina.
    4. Anexe o eletroímã para o Mount Magnet.
    5. Anexe 2 suportes de canto para o feixe de suporte — ímã.
    6. Na seguinte ordem, enfie a Barra magnética através do top Suporte de canto e adicionar um ¼-na porca; o Ímã de montagem; ¼-em duas porcas; e a parte inferior do Suporte de canto. Fixe o conjunto com duas porcas ¼-em cada extremidade.
  4. Conjunto completo
    Nota: Para um desenho técnico da Assembleia completa, consulte complementar Figura 9.
    1. Anexe o Subconjunto de ímã para a superfície superior da viga, suporte..--placa de montagem.
    2. Ajuste o alinhamento do Feixe de suporte — ímã para que o íman se envolve com a haste, Ram.
      Nota: Se a haste não versão quando o pedal é pressionado, reduza a área de contato entre o eletroímã e a haste, movendo o Feixe de suporte — ímã.
    3. Máquina de colchetes perna maxilar (complementar a Figura 10).
    4. Anexe os dois Colchetes perna maxilar para o Feixe de suporte — seção de mandíbula. Quando caiu, a ponta da ram deve estar a uma distância igual de cada maxilar.
    5. Coloque a Plataforma fratura (complementar figuras 11A e 11B) acima as mandíbulas.
    6. Imprimir o Gabarito de posicionamento fratura (figuras complementares 12A e 12B) e o Gabarito pino bitola (figuras complementares 13A e 13B) usando um dispositivo de fabricação aditiva, ou da máquina a peças de alumínio.
      Nota: As dimensões dos gabaritos serão calculadas nas etapas de otimização detalhadas no passo 2.
    7. Anexe o Jig posicionamento fratura da fratura de plataforma.
    8. Confirme que a profundidade do impacto pode ser ajustada usando as porcas de dois parar na Ram Rod.
    9. Confirme que a velocidade do impacto pode ser ajustada movendo o Ímã monte acima e para baixo.
    10. Confirme que a largura da fratura pode ser ajustada movendo Colchetes perna maxilar mais perto ou mais longe da Ram Rod.

2. fratura otimização

  1. Localização de fratura
    1. Obter radiografias do membro (fêmur ou tíbia) a ser fraturado em uma amostra representativa de 5 animais sacrificados.
      Nota: A amostra deve ser correspondida para os espécimes, que serão usados no protocolo experimental baseado na idade, genótipo e sexo. Mesmo que o protocolo final chama-se para apenas um membro fraturado, ambos os membros da amostra serão usados.
    2. Posição do membro tangencial ao feixe de raios-x para adquirir vistas verdadeiro-lateral e anterior/posterior até o osso. Coloque um objeto de dimensão conhecida no plano da imagem latente para fornecer uma escala para análise.
    3. Nota: Se fêmures de imagem, certifique-se do que membro está em extensão completa, onde o fêmur está no mesmo plano axial como a tíbia.
    4. Marcar o desejado localização da fratura na radiografia do membro a ser fraturado (Figura 1A - linha tracejada). Medir a partir da articulação calcâneo-tibial ao nível da fratura (Figura 1A) marcado. Calcule o comprimento médio de fratura (FL) para todas as amostras de ensaio. Medida do notch intercondilar para fraturas de fêmur.
  2. Gabarito de posicionamento de fratura
    1. Medir a distância entre a superfície exterior do uma suporte bigorna para o centro do impacto guilhotina (CGI) (Figura 2). Subtrai o CGI do FL, descrito na etapa 2.1.4, para calcular a profundidade do gabarito de posicionamento de fratura (JD). Máquina ou impressão 3D um canal em forma de U, com uma altura e uma largura igual a bigorna e uma profundidade igual ao JD (Figura 3). Um desenho técnico de amostra e o arquivo CAD estão incluídos no complementar figuras 12A e 12B.
      Nota: Quando o membro é colocado no gabarito, o dorso do pé deve mentir contra a superfície mais afastada do impacto de guilhotina. Modifica o canal em forma de U se autorização adicional é necessária para o ramo.
    2. Coloque a amostra no aparelho de fratura de bruços para fraturas de fêmur ou na posição supina para fraturas da tíbia (Figura 4). Pressione o dorso do pé contra o fim do gabarito de posicionamento de fratura. Aperte manualmente a guilhotina até as fraturas dos membros. Obter uma radiografia do membro fraturado para confirmar a localização de tamanho e fratura do gabarito (Figura 2B).
    3. Aumentar JD se o local da fratura é também distal do osso, ou diminuir JD se o local da fratura é demasiado proximal do osso.
  3. Estabilização dos parâmetros pin
    1. Comprimento do pino: Usando as radiografias obtidas no passo 2.1, medir o comprimento de membro (LL) do planalto tibial ao nível do maléolo posterior para fraturas da tíbia, ou o entalhe intercondilar para o trocânter maior para fraturas de fêmur. Multiplique o comprimento do osso por 0,9 para calcular o comprimento do pino (PL) (Figuras 1A e 3B).
    2. Pino largura: Usando as radiografias obtidas no passo 2.1, medir o diâmetro mínimo medular (MD) no membro fraturado (Figura 1A). Selecione uma agulha com um calibre de aproximadamente equivalente a um comprimento e o diâmetro medular mais de 1,5 x PL.
      Nota: Um tamanho aproximado de pin para um rato de C57BL/6J de 14 semanas de idade é 22 G, 1½ em e 27G, 1¼ no fêmur e tíbia, respectivamente.
  4. Pino indicador de corte
    1. 2.4.1. máquina ou impressão 3D um calibre com um comprimento igual a PL menos o comprimento da agulha (CGL) (Figura 3B; Complementar figuras 13A e 13B). Uma extremidade deve ter uma saliência para descansar contra o centro da agulha e o outro deve indicar onde o pino deve ser cortado. Um desenho técnico de amostra e o arquivo CAD estão incluídos no complementar figuras 13A e 13B.
  5. Estabilização de fratura de Pino intramedular
    1. Usando os espécimes de julgamento não fraturado da etapa 2.1, remova pelos com uma tosquiadeira elétrica ou creme depilatório de tíbia mid para meados do fêmur, expondo a articulação do joelho.
    2. Fixação de Tibia: inserir a agulha percutânea lateral ao ligamento patelar. Retrair o ligamento patelar medialmente e alinhe a ponta da agulha ao eixo da tíbia. Com um movimento de alargamento, delicadamente violação da tíbia e guiar a agulha para baixo da cavidade medular.
    3. Fixação do fêmur: inserir a agulha percutânea lateral ao ligamento patelar. Retrair o ligamento patelar medialmente e alinhe a ponta da agulha para o eixo do fêmur no entalhe intercondilar. Com um movimento de alargamento, delicadamente romper a superfície articular do entalhe intercondilar e guiar a agulha para baixo da cavidade medular.
    4. Usando o calibre fabricado na etapa 2.4, resma até que a agulha exposta é igual ao comprimento de calibre. Retire a agulha para proporcionar espaço suficiente (~ 3 mm) para cortar a agulha no nível indicado pelo medidor.
      Nota: Certifique-se de extremidade proximal (plástica) da agulha durante os cortes, então, não se torne um projétil perigoso.
    5. Friso 0,3 mm da extremidade distal do pino usando um cortador de pin e em seguida, corte o pino no nível da bitola. Afunde o pino à superfície articular, utilizando uma haste com um diâmetro de 1,5 x maior que o diâmetro da agulha.
      Nota: Friso impede a rotação da agulha e migração, aumentando o contato osso-agulha.
    6. Obter radiografias para confirmar a agulha estende o comprimento do canal medular do membro e não se projeta da extremidade proximal ou distal (Figura 1C).
  6. Profundidade do impacto
    1. Usando as radiografias obtidas no passo 2.1, medir o diâmetro do córtex ao nível da fratura desejado (Figura 1A). Calcule o diâmetro médio cortical (CD) para todas as amostras de ensaio.
    2. Posicione um espécime de julgamento fixado da etapa 2.5 no dispositivo de fratura com o gabarito de posicionamento de fratura fabricado no passo 2.2. Descanse a ram de impacto no membro ferido.
      Nota: Não permita que a ram a cair; o osso deve permanecer intacto durante esta etapa de otimização.
    3. Aplica força suficiente para baixo sobre o carneiro para comprimir o tecido mole, mas não fraturar o osso. Ajuste a profundidade do impacto (ID) de 0,75 x CD (Figura 2).
      Nota: A profundidade do impacto ideal é 0.5 x CD quando fraturar um osso sem qualquer tecido mole. Usando contas de 0,75 para a compressão de tecidos moles adicional.
  7. Largura de bigorna
    1. Defina a largura de bigorna (AW) a 0,4 cm para a tíbia do rato ou do fêmur (Figura 2).
      Nota: Recomenda-se uma maior largura para amostras maiores tais como ratos.
  8. Peso de RAM
    1. Recomenda-se um peso mínimo de 250g para espécimes murino.
      Nota: Peso adicional pode ser rosqueado para a memória ram para amostras maiores (Figura 2).
  9. Velocidade de impacto
    1. Defina a altura de queda (DH) de 2 cm (Figura 2). Posicione a ram na sua posição inicial, conectando-a para o eletroímã ativado.
    2. Posicione um membro experimental no aparato de fratura. Pressione o dorso do pé contra o gabarito de posicionamento de fratura fabricado no passo 2.2. Brevemente, pressione o pedal para liberar a memória ram e em seguida, redefini-lo para sua posição inicial.
    3. Radiografia no membro julgamento impactado. Analise o membro para qualquer evidência de uma fratura (Figura 1D).
      Nota: Isto pode ser sutil ao usar velocidades baixas com uma profundidade de impacto controlado.
    4. Se nenhuma fratura é gerada, repita os passos 2.9.1 - 2.9.3 e aumentar a altura de queda de 2 cm.
    5. Se uma fratura é gerada, registre a altura de queda e multiplique por 1,1. Este é o novo DH.
    6. Usando o DH da etapa 2.9.5, fratura no membro próximo julgamento.
    7. Se nenhuma fratura é gerada, repita as etapas 2.9.1 - 2.9.6 e aumentar a altura de queda por 2 cm.
    8. Se uma fratura é geradas, repita as etapas 2.9.6 - 2.9.7 até que todas as amostras de teste são utilizados. Grave o final DH e todos os parâmetros (FL, CGI, JD, PL, MD, PS, computação gráfica, CD, ID, AWe RW) de otimização. Registar-se idade, sexo, genótipo e peso dos espécimes experimentais.

3. geração de fratura fechado-estabilizada

  1. Set-up
    1. Esterilize todos os equipamentos e instrumentos através de autoclave, imersão quente do grânulo ou seu equivalente.
    2. Coloque um elemento de aquecimento na mesa cirúrgica e configurá-lo para a temperatura ideal. Cobrir o elemento com um pano cirúrgico. Prepare-se 3 x 3 em2 de cortina cirúrgica com 0,75-em círculo cortado no meio.
    3. Confirme o ajuste da torre de fratura antes de cada ensaio (Figura 2). Definir o ID, AW, RW, e DH aos valores derivado do protocolo de otimização específico para o sexo, idade e genótipo para o espécime a ser estudado.
    4. Pesar e registrar o peso do animal.
  2. Cirurgia
    1. Sedar adequadamente o mouse usar inalantes anestésicos (isoflurano: 4-5% para a indução; 1-2% para manutenção) ou outro estabelecido protocolo de anestesia do laboratório. A taxa respiratória deve ser 55-100 respirações por minuto. O animal não deve ser sensível a uma pitada de membro posterior dedo do pé.
    2. Administrar a primeira dose de buprenorfina a analgesia pós-operatória (0,1 mg/kg por via subcutânea).
    3. Aplica lubrificação ocular para evitar a secura da córnea.
    4. Remova o cabelo do animal com uma tosquiadeira elétrica de tíbia mid para meados do fêmur, expondo a articulação do joelho. Limpe o local do excesso de pelos usando fita não-reativo. Prepare o local de fixação com um cotonete molhado umedecido com 70% EtOH. Repita conforme necessário para remover todos os pelos da área de incisão.
    5. Preparar e limpar a área de fixação com cotonetes alternativos de iodo-povidona e 70% EtOH. Use duas sequências alternativas cotonete para garantir a esterilidade.
    6. Uma cortina é então colocada em torno do local cirúrgico, depois que a pele tenha sido devidamente desinfectada.
    7. Pino do membro a ser fraturado usando o protocolo descrito na etapa 2.5. Adquira as radiografias para confirmar o pino estende o comprimento do canal medular, mas não se projeta da extremidade proximal ou distal.
    8. Ativar o eletroímã e conectar a ram de impacto para posicioná-la na posição inicial.
    9. Posicione a amostra no aparelho de fratura, colocando-o em posição para fraturas de fêmur ou em posição supina para fraturas da tíbia. O membro fixado deve ser colocado entre os batentes e o gabarito de posicionamento de fratura com o dorso do pé pressionado contra a parte externa do gabarito.
    10. Enquanto pressionando o pé com uma mão e garantindo que apenas o membro está no impacto de ram área alvo, brevemente, pressione o pedal para liberar a memória ram. Substitua a ram na posição inicial.
    11. Adquirir as radiografias e confirmar o local da fratura e tipo.
  3. Pós-operatórios
    1. Monitorar o animal a cada 15 minutos durante a sua recuperação da anestesia até o animal está consciente, pode manter a prostração esternal e é ambulatorial. Confirme que o animal é capaz de deambular durante um período de 72 h.
    2. Casa do animal individualmente até que ela se recuperou completamente.
    3. Manter analgesia durante um período de 48 h com buprenorfina (0,1 mg/kg por via subcutânea) administrada a cada 12 h.
    4. Monitorar e registrar o estado de saúde do animal diariamente por 7 a 10 d ou até eutanásia.
  4. Análise pós-fratura
    1. Medida FL, PL, CD, MD e o padrão de fratura. Registre as medições em um arquivo de dados mestre.

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Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

A guilhotina usada anteriormente em nosso laboratório foi desenvolvida em 2004 e foi baseada em modelos publicados por Einhorn21. O design não permitia ajustes para explicar adequadamente quaisquer diferenças na morfologia do osso e não permitiam um posicionamento reprodutível do membro. Além disso, o aparelho anterior necessárias duas pessoas para operá-lo. Portanto, nós concebido, projetado e construído um novo aparelho de fratura. O objetivo principal do projeto...

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Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este protocolo de otimização e geração de fratura fornece a pesquisadores com um método eficiente para derivar parâmetros de fratura e realizar um procedimento minimamente invasivo, que produz fraturas transversais, precisas e reproduzíveis. Além disso, o presente protocolo estabelece um conjunto de parâmetros de geração de fratura, que promove a consistência do método entre os investigadores. Esses parâmetros permitirá a criação de um banco de dados comum da fratura para estabelecer padrões de fratura com base em uma va...

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Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Os autores não têm nada para divulgar.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

A pesquisa reportada nesta publicação foi apoiada pelo Instituto Nacional de artrite e osteomuscular e doenças de pele do institutos nacionais da saúde sob concessão número F30AR071201 e R01AR066028.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Submontagem de SuporteFigura Suplementar 1
Viga, Suporte--Seção de Mandíbula 80/201003 x 9.00c/ #7042 em A, C, em Viga Esquerda
Final, Suporte--Seção Horizontal80/201002 x 14.00
Feixe, Suporte--Vertical 180/201050 x 10.50 w / # 7042 em A na extremidade esquerda e em A na extremidade direita
Feixe, Suporte--Vertical 280/201010 x 10.50 w / # 7042 em D, B na extremidade esquerda e em A na extremidade direita
Feixe, Suporte--Montagem em Placa80/201030 x 8.00 com # 7036 na extremidade esquerda
Feixe, Suporte--Ímã80/201010 x 13.50 com # 7042 em A, C, na extremidade direita
Âncoras (3)80/203392
Âncora Dupla (3)80/203091
Conjunto de Parafusos (6)80/2033861/4-20 x 3/8"
Parafuso de Cabeça de Botão (6)80/2036041/4-20 x 3/4"
Ram SubassemblySupplementary Figure 2
Block, StopFigura 3 Suplementar
Bloco, GuiaFigura SuplementarPersonalizada
Haste, AríeteFigura SuplementarPersonalizada
Parafuso de AlinhamentoFigura 5 SuplementarPersonalizada
Figura 6Personalizada
Rolamento de Luva Linear (2)McMaster-CarrPorca Hexagonal 8649T2
(3)McMaster-Carr92673A1253/8-16 UNC
Parafuso de Soquete (8)McMaster-Carr92196A1084/40 x 3/8"
Parafuso de Soquete (6)McMaster-Carr92196A0324/40 x 1 1/8"
Parafuso de Soquete (1)McMaster-Carr92196A267 10/32 3/8 "
Magnet SubassemblySupplementary Figure 7
Mount, MagnetCustom Supplementary Figure 8
Fonte de AlimentaçãoMcMaster-Carr70235K23
PedalMcMaster-Carr7376k2
EletroímãMcMaster-Carr5698k111
Fio - 10 pésHaste McMaster-Carr9936k12
, ÍmãMcMaster-Carr95412A566Haste Roscada de 1/4" x Suporte de Canto de 7
(6)80/204108
Parafuso de Tampa de Soquete (1)McMaster-Carr92196A70510/32 1 1/4"
Porca Hexagonal (4)McMaster-Carr92673A1131/4-20 UNC
Complete AssemblyFigura Suplementar
Suporte, Mandíbula da Perna (2)PersonalizadaFigura 10
Plataforma, FraturaPersonalizadaFigura 11
Jig, Posicionamento-FraturaFigura Suplementar Personalizada
Outros
Pin CutterSuprimentos e Equipamentos Médicos150S Agulhas
SigmaZ192430, Z192376 23g x 1,5" - fêmur do mouse, 27g x 1,25" - tíbia do mouse
Personalizada 3 4 Placa de MontagemSuplementar " 9 Figura Suplementar Figura Suplementar 12

References

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