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Artigo de método

Produzindo a deleção do Gene na Escherichia coli por transdução P1 com fitas de resistência aos antibióticos sujeitos

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DOI:

10.3791/58267

1 de setembro de 2018

Neste artigo

Resumo

Aqui nós apresentamos um protocolo para o uso de construções de exclusão de resistência aos antibióticos-gaveta pré-existente, como uma base para a tomada de mutantes de exclusão em outras estirpes de Escherichia coli . Tais mutações de exclusão podem ser mobilizadas e inseridas o locus correspondente de uma estirpe de destinatário usando transdução de bacteriófago P1.

Resumo

Uma primeira abordagem para estudar a função de um gene desconhecido em bactérias é criar um knock-out deste gene. Aqui, descrevemos um protocolo robusto e rápido para transferência de mutações do gene exclusão de uma estirpe de Escherichia coli para outro usando transdução generalizada com o bacteriófago P1. Este método requer que a mutação seja selecionável (por exemplo, baseado em interrupções de gene usando inserções de gaveta antibiótico). Tais fitas antibióticas podem ser mobilizadas a partir de uma estirpe de doador e introduziram uma destinatário estirpe de interesse para rapidamente e facilmente geram um mutante de apagamento do gene. A gaveta antibiótica pode ser projetada para incluir sites de reconhecimento de flipase que permitem que a excisão da fita por um site-specific recombinase para produzir um nocaute limpo com apenas uma sequência de ~ 100-base-par-longa cicatriz no genoma. Demonstramos o protocolo ao nocautear o gene de tamA codifica um fator de montagem envolvido na biogênese de autotransporter e testar o efeito desse nocaute sobre a biogênese e a função de dois autotransporter trimeric adesinas. Embora a supressão do gene por transdução P1 tem suas limitações, a facilidade e rapidez de sua implementação seja uma alternativa atraente para outros métodos de apagamento do gene.

Introdução

Uma primeira abordagem comum para estudar a função de um gene é executar o mutagenesis de mata-mata e observar o fenótipo resultante. Isto também é denominado genética reversa. A bactéria e. coli tem sido o carro-chefe da biologia molecular nos últimos 70 anos, ou então, devido à facilidade do seu cultivo e sua acessibilidade para manipulação genética1. Vários métodos foram desenvolvidos para produzir exclusões de gene em e. coli, incluindo troca de marcador a mutagênese2,3 e, mais recentemente, recombineering usando o λ vermelho ou Rac ET sistemas4

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Protocolo

1. cepas e plasmídeos

  1. Estirpes bacterianas
    1. Use a e. coli as estirpes BW251135, JW4179 (BW25113 tamA::kan)7, BL21(DE3)20e BL21ΔABCF21. Consulte Tabela de materiais para mais informações.
  2. Bacteriófagos
    1. Use o fago P1vir para a transdução geral. Armazenar a Praga como um estoque líquido com algumas gotas de clorofórmio (consulte a etapa 2.2). Para obter mais informações, consulte Tabela de materiais.

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Resultados

Geração de um tamA Knock-out de BL21ΔABCF:

A estratégia acima descrita anteriormente foi usada para produzir uma tensão derivada de BL21(DE3), uma estirpe de laboratório padrão usada para a produção de proteína, que é otimizada para a produção de proteínas de membrana exterior e chamada BL21ΔABCF21. Esta tensão não possui quatro genes que codificam para proteínas de membrana externa abundante e, con.......

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Discussão

Transdução de P1 é um método rápido, robusto e confiável para a geração de exclusões de gene em e. coli. Isso é demonstrado aqui pelo transducing um mutante de exclusão de tamA de uma estirpe de doador de Keio para um destinatário BL21-derivado. As grandes etapas do processo de transdução são a produção do transducing lisada, a transdução em si, a excisão da fita Kan resistência e a verificação do knock-out pelo PCR. No total, o processo leva cerca de 1 semana e requer sem métodos de biologia molecular .......

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Cepas de coleção de Keio foram obtidas a partir do projeto nacional de BioResource (NIG, Japão): Escherichia coli. Agradecemos seu apoio contínuo Dirk Linke (departamento de Biociências, Universidade de Oslo). Este trabalho foi financiado pelo Conselho de pesquisa da Noruega jovem pesquisador grant 249793 (Jack C. Leo).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Strains
E. coli BW25113NIGME6092Cepa selvagem da coleção Keio
E. coli BL21(DE3)Merck69450-3Cepa de expressão
E. coli BL21DABCFAddgene102270Derivado de BL21(DE3)
< em>E. coli JW4179NIGJW4179-KCtamA mutante de deleção
P1 virNIGHR16Geralmente transdução de bacteriófagos
Plasmídeos
pCP20CGSC14177plasmídeo replicante condicional com FLP
pASK-IBA2IBA GmbH2-1301-000vetor de expressão
pEibD10N/AN/Apara produção de EibD; plasmídeo disponível a pedido
pET22b+Merck69744-3vetor de expressão
pIBA2-YadAN/AN/Apara produção de YadA; plasmídeo disponível a pedido
Produtos químicos
ácidoacéticoThermoFisher33209
ÁgarBD Bacto214010
AgaroseLonza50004
AmpicilinaApplichemA0839
AnhidrotetraciclinaAbcamab145350
anticorpo anticolágeno tipo I COL-1SigmaC2456
Colágeno bovino tipo ISigmaC9791
Cloreto de cálcioMerck102382
ClorofórmioMerck102445
Hidrogenofosfato dissódicoVWR28029
Corante de DNAThermoS33102
Marcador de tamanho molecular de DNANew England BioLabsN3232S
DNase ISigmaDN25
Mistura dNTPNew England BiolabsN0447
ECL HRP substratoAdvanstaK-12045
EDTAApplichemA2937
GlicerolVWR24388
cabra anti-rato IgG-HRPSanta Cruzsc-2005
cabra anti-coelho IgG-HRPAgriseraAS10668
HEPESVWR30487
Isopropil tiogalactosídeoVWR43714
KanamicinaApplichemA1493
LisozimaApplichemA4972
Cloreto de magnésioVWR25108
Cloreto de manganêsSigma221279
N- lauroil sarcosinaSigmaL9150
Leite em pó desnatadoSigma70166
Cloreto de sódioVWR27808
tamA primário diretoInvitrogenN/ASequência 5'-GAAAAAAGG
ATATTCAGGAGAAAATGTG-3'
tamA primário inversoInvitrogenN/ASequência 5'-TCATAATT
CTGGCCCCAGACC-3'Taq
DNA polimeraseNew England BiolabsM0267
Citrato trissódicoMerck106448
TriptonaVWR84610
Tween20SigmaP1379
Extrato de leveduraMerck103753
Equipment eletroforese em gel strong>
AgaroseHoeferSUB13
Batedor de contasThermoFP120A-115
Câmera CCDKodak4000R
Cubetas de eletroporaçãoBio-Rad165-2089
Unidade de eletroporaçãoBio-Rad1652100
Gerador de imagens em gelNippon GeneticsGP-03LED
Agitador de incubaçãoInfors HTMinitron
IncubadoraVWR390-0482
MicrocentrífugaEppendorf5415D
Forno de microondasSamsungCM1099A
Máquina de PCRBiometraTpersonal
Tiras dePCRAxygenPCR-0208-CP-C
medidor de pHHanna InstrumentsHI2211-01
membrana PVDFThermoFisher88518
Câmara de eletroforese SDS-PAGThermoFisherA25977
Centrífuga de mesaBeckman CoulterB06322
Misturador de vórticeScientific IndustriesSI-0236
Banho-mariaGFLD3006
Unidade de transferência úmidaHoeferTE22

Referências

  1. Blount, Z. D. The unexhausted potential of E. coli. eLife. 4, e05826(2015).
  2. Hamilton, C. M., Aldea, M., Washburn, B. K., Babitzke, P., Kushner, S. R. New method for generating deletions and gene replacements in Escherichia coli. Journal of Bacteriology. 171 (9), 4617-46....

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

Deleção GênicaCassete de AntibióticoFlippase RecombinasePCR de ColôniaSDS-PAGEEletroporaçãoSeleção por KanamicinaGene TamA