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Visualização da migração celular tangencial no desenvolvimento Tectum óptica de Chick

DOI:

10.3791/58506

October 24th, 2018

In This Article

Summary

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Descrevemos os métodos para a rotulagem fluorescente de tangencialmente migração células por eletroporação e para a imagem latente de lapso de tempo do movimento de célula rotulada em uma cultura de montagem plana a fim de visualizar a migração celular comportamento no tectum óptica do pintinho em desenvolvimento .

Abstract

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Imagem de lapso de tempo é um método poderoso para analisar o comportamento de migração celular. Após a célula fluorescente rotulagem, o movimento das células em cultura etiquetados pode ser gravado sob microscopia de vídeo. Para a análise de migração celular no cérebro em desenvolvimento, fatia cultura comumente é usada para observar a migração celular paralela à seção de fatia, tais como migração celular radial. No entanto, informação limitada pode ser obtida o método de cultura de fatia para analisar a migração celular perpendicular à seção de fatia, tais como migração celular tangencial. Aqui, apresentamos os protocolos para Time-Lapse de imagens para visualizar a migração celular tangencial no tectum óptica do pintinho em desenvolvimento. Uma combinação de célula rotulagem por eletroporação no ovo e uma cultura de montagem plana subsequente na inserção da cultura de célula permite a detecção de movimento de células migratórias no plano horizontal. Além disso, nosso método proporciona detecção de comportamento de célula individual e a ação coletiva de um grupo de células a longo prazo. Potencialmente, este método pode ser aplicado para detectar a alteração sequencial da fluorescente-etiquetadas microestrutura, incluindo o alongamento axonal no deslocamento de tecidos ou células neural nos tecidos não-neurais.

Introduction

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O estudo da migração celular tem sido progredindo com a técnica de avançada de imagem ao vivo. Após a célula fluorescente rotulagem, o movimento temporal de pilhas etiquetadas em um prato de cultura ou na vivo pode ser gravado sob microscopia de vídeo. No estudo do desenvolvimento neural, foram analisadas as mudanças morfológicas da migração de células ou alongando axônios utilizando imagens de lapso de tempo. Para a imagem latente eficaz, é essencial para aplicar um método adequado para a preparação de rotulagem e tecido fluorescente célula, baseado sobre a finalidade do experimento e análise. Para analisar a migração celular no cérebro em desenvolvimento, f....

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Protocol

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1. Electroporation no Ovo

  1. Prepare o plasmídeo de expressão para a rotulagem fluorescente em alta concentração. Isole o DNA de 200 mL de cultura bacteriana pelo método de Lise alcalina, utilizando colunas permutadora de acordo com o protocolo do fabricante (Tabela de materiais). Mix pCAGGS-EGFP e pCAGGS-mCherryNuc em uma concentração final de 4 µ g / µ l cada.
    Nota: A purificação de DNA de plasmídeo livre de endotoxinas pode ser preferencial para eletroporação.
  2. Incube ovos férteis de galinha horizontalmente a 38 ° C, em 70% de humidade relativa.
  3. Após 2,5 dias, eliminar 5 mL de albumina (clara de ovo) do lado po....

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Results

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A Figura 2 mostra a migração tangencial superficial visualizada em uma cultura de plano de montagem em um tempo decorrido (0, 9, 18, 27 h) após o início da gravação. Filme 1 é um filme lapso de tempo de 10 min-intervalos durante um período de 28 h e 50 min. O quadro está selecionado para enfocando as células migrando do canto inferior esquerdo etiquetado do quadro para o espaço sem rótulo (Figura 3A

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Discussion

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O protocolo descrito acima é otimizado para a detecção de migração celular em camadas superficiais6,8. É aplicável para a detecção de camada média migração córregos (filme 5),6,7, só pelo momento da eletroporação (5.5 a e 4.5) e o início da cultura de movimento e imagem (E7.0 a E6.0).

O procedimento apresentado é composto de células rotulagem .......

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Disclosures

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Os autores declaram que eles têm não tem interesses financeiro concorrente.

Acknowledgements

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Este trabalho foi financiado pelo número de concessão de KAKENHI JSPS 15K 06740 para Y.W.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Materials
NucleoBond Xtra Midi Plus EFMACHEREY-NAGEL740422.5kit de purificação de DNA de plasmídeo livre de endotoxinas
Seringa de 20 mlTERUMOSS-20ESZ
Agulha de calibre 18TERUMONN-1838R
Fast GreenWako061-00031
100x penicilina e estreptomicinaGibco15140-122
tubo capilar de vidroNarishigeG-1
inserção de cultura de célulasMillipore MillicellCM-ORG
LamininaSIGMAL2020revestimento de inserção de cultura
poli-L-LisinaPeptídeo Instituto3075revestimento de inserção de cultura
prato de fundo de vidroMatsunamiD11130H
Opti-MEMGibco31985-070meio de cultura
F12Gibco11765-054meio de cultura
fetal soro bovinoGibco12483meio de cultura
soro de pintinhoGibco16110082meio de cultura
10xHBSSGibco14065-056
faca microcirúrgicaCooperação de especialidades cirúrgicas72-1501
NomeEmpresa<strong>Número de catálogoComentários
Equipamento >
fortecurvaAS ONENo.11
processador de micropipetasSUTTER INSTRUMENTP97/IVF
com eléctrodo tipo pinçaBEXLF646P3x3
gerador de impulsosBEXCUY21EXmicroscópio
estereoscópico de fluorescência de fluorescênciaLeicaMZ16F
microscópio de fluorescência invertidaControlador
Controlador de temperatura TokkenMIGM/OL-2
Unidade confocal a laser
de gás Olympus IX81 Tokai Hit MI-IBC Olympus FV300

References

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  1. Marín, O., Rubenstein, J. L. R. Cell migration in the forebrain. Annual Reviews of Neuroscience. 26, 441-483 (2003).
  2. Nadarajah, B., Alifragis, P., Wong, R. O. L., Parnavelas, J. G. Neuronal migration in the developing cerebral cortex: Observations based on real-time ima....

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Tangential Cell MigrationChick Optic TectumTime lapse ImagingIn Ovo ElectroporationFlat mount CultureConfocal MicroscopyCell Culture InsertFluorescent LabelingNeuronal Cell MigrationParticle Tracking

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