Artigo de método

Estabelecimento de infecção Viral e análise da interação vírus-hospedeiro em Drosophila Melanogaster.

DOI:

10.3791/58845

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14 de março de 2019

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1The Joint Center for Infection and Immunity, Guangzhou Institute of Pediatrics, Guangzhou Women and Children's Medical Center, 2CAS Key Laboratory of Molecular Virology and Immunology, Institut Pasteur of Shanghai, Chinese Academy of Sciences, 3CAS Key Laboratory of Infection and Immunity (CASKLII), Institute of Biophysics, Chinese Academy of Sciences, 4Shanghai Institute of Biochemistry and Cell Biology, Chinese Academy of Sciences

* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

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Este protocolo descreve como estabelecer infecção viral na vivo em Drosophila melanogaster , usando o método de nano-injeção e técnicas básicas para analisar a interação vírus-hospedeiro.

Resumo

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Propagação do vírus é das principais causas de doenças epidêmicas. Assim, compreender a interação entre o vírus e o hospedeiro é muito importante para estender o nosso conhecimento de prevenção e tratamento da infecção viral. A mosca de fruta Drosophila melanogaster provou para ser um dos organismos modelo mais eficiente e produtiva de tela para fatores antivirais e investigar a interação vírus-hospedeiro, devido a ferramentas poderosas de genéticas e altamente conservada imune inata vias de sinalização. O procedimento descrito aqui demonstra um método de nano-injeção para estabelecer a infecção viral e induzir respostas antivirais sistêmicas em moscas adultas. O controle preciso da dose injeção viral neste método permite alta reprodutibilidade experimental. Os protocolos descritos neste estudo incluem a preparação de moscas e o vírus, o método de injeção, análise de taxa de sobrevivência, a medição de carga de vírus e uma avaliação do percurso antiviral. Os efeitos da influência da infecção viral pelo fundo dos moscas foram mencionados aqui. Este método de infecção é fácil de executar e quantitativamente repetíveis; pode ser aplicado para a tela para anfitrião/viral factores envolvidos na interação vírus-hospedeiro e dissecar o crosstalk entre imune inata de sinalização e outras vias biológicas em resposta à infecção viral.

Introdução

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Emergentes de infecções virais, especialmente por arbovírus, tais como o vírus de Chikungunya1, o vírus da Dengue, a febre amarela vírus2 e ovírusZika3, ter sido uma enorme ameaça para a saúde pública, causando pandemias 4. assim, uma melhor compreensão da interação vírus-hospedeiro tornou-se cada vez mais importante para o controle de epidemia e tratamento de doenças virais nos seres humanos. Para este objetivo, modelos mais apropriados e eficientes devem ser estabelecidos para investigar os mecanismos subjacentes a infecção pelo vírus.

Mosca da fruta, Drosophilamelanogaster (d. melanogaster), fornece um sistema poderoso para investigar de5,de interação vírus-hospedeiro6 e tem provado para ser um dos modelos mais eficientes para estudar doenças humanas virais7 , 8 , 9. antiviral altamente conservada, sinalização de caminhos e ferramentas de genéticas incomparáveis fazem voa um grande modelo para produzir resultados significativos com implicações reais para estudos antivirais humanos. Além disso, moscas são fáceis e baratas de manter no laboratório e são convenientes para triagem em larga escala de novos fatores regulatórios6,10 no vírus e o hospedeiro durante a infecção.

Quatro principais vias antivirais altamente conservadas (ex., o RNA de interferência (RNAi) via11, o JAK-STAT caminho12, via NF-κB e a caminho de autofagia13) são bem estudados em Drosophila nos últimos anos6. A via RNAi é um mecanismo antiviral amplo que pode suprimir a maioria dos tipos de vírus infecção6,14. Este caminho por mutações nos genes como Dicer-2 (Dcr-2) ou Argonaute 2 (AGO2) podem levar ao aumento de vírus título e host mortalidade15,16,17. O pathway JAK-STAT tem sido implicado no controle da infecção por um vírus da família Dicistroviridae e família Flaviviridae em insetos, por exemplo., vírus C drosófila (DCV) em moscas16 e vírus do Nilo Ocidental (WNV) e o vírus da Dengue em mosquitos18,19. O pedágio da drosófila (homólogo ao pathway NF-κB humana) e percursos de deficiência imunológica (IMD) (semelhantes ao humano pathway NF-κB e TNF) estão envolvidos na defesa de vírus invasão20,21, 22. autofagia é outro mecanismo conservado envolvidos na regulação da infecção viral, que é bem caracterizada em Drosophila23,24. Assim, a identificação de fatores regulatórios novela destas vias e dissecação crosstalk entre estes sinalização antiviral e outros caminhos biológicos, tais como metabolismo, envelhecimento, reação neural e assim por diante, podem ser facilmente configurados na drosófila sistema.

Embora modelos de infecciosos virais mais bem estabelecidos em drosófila são induzidos por vírus de RNA, infecção pelos invertebrados iridescente vírus 6I (IV-6) e vírus de Kallithea demonstraram o potencial para o estudo dos vírus de DNA em moscas25, 26. Além disso, o vírus também pode ser modificado para permitir a infecção de Drosophila, tais como o vírus da gripe9. Isto expandiu-se enormemente a aplicação da plataforma de triagem de Drosophila . Neste procedimento, usamos DCV como exemplo para descrever como desenvolver um sistema infeccioso viral em Drosophila. DCV é um positivo-sentido único encalhado RNA vírus de aproximadamente 9300 nucleotídeos, codificação de proteínas 927. Como um patógeno natural de d. melanogaster, DCV é considerado como um vírus adequado para estudar a resposta imune do hospedeiro fisiológicos, comportamentais e basal durante hospedeiro-vírus interação e co-evolução28. Além disso, sua taxa de mortalidade rápida após infecção em moscas do tipo selvagem torna DCV útil para triagem de genes resistentes ou suscetíveis no anfitrião29.

No entanto, há vários aspectos de preocupação quando estudar infecções virais em Drosophila. Por exemplo, bactérias simbióticas Wolbachia têm uma capacidade de inibir uma ampla espectros de proliferação de vírus de RNA em Drosophila e mosquito31,de30,32. Evidência recente mostra um possível mecanismo no qual Wolbachia blocos Sindbis vírus (SINV) infecção através o upregulation do methyltransferase Mt2 expressão no anfitrião33. Além disso, o fundo genético de insetos também é fundamental para a infecção viral. Por exemplo, o natural polimorfismo no gene, pastrel (pst), determina a suscetibilidade à infecção de DCV em Drosophila34,35, enquanto Locus E2H-Ubc e CG8492 estão envolvidos em vírus de paralisia de Cricket (CrPV) e infecção por vírus (FHV) rebanho casa, respectivamente,36.

Os modos particulares para estabelecer a interação vírus-hospedeiro em moscas, deve ser escolhido de acordo com fins de investigação, tais como uma tela de alta produtividade para componentes celulares do hospedeiro em Drosophila célula linhas37,38, oral infecção para estudar a resposta antiviral específico do intestino22,39,40, agulha picando41,42 ou nano-injeção, passando as barreiras epiteliais para estimular imune sistêmica respostas. Nano-injeção pode controlar com precisão a dose viral para induzir uma reação antiviral controlada e uma lesão fisiológica43, garantindo alta reprodutibilidade experimental44. Neste estudo, descrevemos um método de nano-injeção para estudar interações do vírus-anfitrião em Drosophila, destacando a importância dos efeitos de fundo dos moscas.

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Protocolo

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Nota: Antes de iniciar o experimento, as linhas celulares e voar estoques usados devem não ser contaminados por outros patógenos, especialmente para vírus como DCV, FHV, Drosophila X vírus (DXV) e nefrite aviária (ANV). Idealmente, a sequenciação do ARN ou uma simples identificação de PCR-baseados são usados para detectar a contaminação10,45. Se a contaminação ocorreu, as linhas celulares e estoques voar não devem ser usados mais, até que estejam completamente descontaminados46.

1. vírus e preparação de voar

  1. Recolha e propagação de vírus
    Nota: Drosófila S2 * células são utilizadas para a titulação e a propagação de DCV. A linha de celular S2 * é derivada de uma cultura primária de embriões de d. melanogaster estágio finais. Esta linha de celular tem sido bem descrito anteriormente47.
    1. Cresce S2 * células num meio de Drosophila Schneider em 25 ° C, sem adicionais de CO2, como um monolayer semi aderente, solto uma placa de cultura de célula 10 cm, com uma densidade de 1 x 107 células viáveis/mL. Meio completo de uso para S2 * células: drosófila médio da Schneider contendo 10% calor inativada FBS, 100 unidades/mL penicilina e estreptomicina de 100 μg/mL.
      Nota: As células saudáveis devem mostrar uma forma redonda e exibem tamanho homogêneo.
    2. Descongele rapidamente o estoque DCV de-80 ° C em banho de água de 25 ° C. Infectar células S2 * com DCV em MOI = 0,01 imediatamente, diretamente, adicionando 1 mL de solução de antivírus para os pratos de cultura celular (área de crescimento: 55cm2) com 10 mL de meio completo para S2 * células.
    3. Incube as células a 25 ° C durante 3 a 5 dias. Quando o vírus está pronto para a coleção, a morfologia celular é anormal (forma da célula parece borrão) e o meio de cultura é cheio de partículas pretas indicativas de detritos celulares.
    4. Recolher a cultura de células inteiras em um tubo de 15 mL pipetando para cima e para baixo e congelar a-80 ° C (por até um ano).
      Nota: DCV pode ser armazenada por períodos prolongados de tempo a-80 ° C, com mínima perda de infecciosidade, por até um ano.
    5. Descongelar a cultura de células em um banho de água de 25 ° C com agitação constante e centrifugar a 6.000 x g, durante 15 min a 4 ° C. Recolha o sobrenadante em um tubo estéril 15 mL e vortex. Alíquota até 200 μL de solução de vírus por tubo.
      Nota: Alíquotas de vírus podem ser armazenadas por períodos curtos de até 3 dias a 4 ° C e até 1 ano a-80 ° C. Ciclos repetidos de congelamento-descongelamento devem ser evitados. É sempre melhor usar alíquota todas de uma vez.
    6. Escolha 5 tubos contendo vírus aleatórios para determinar a dose infecciosa de cultura de tecidos de vírus média (TCID50) por um ensaio de efeito citopático (ECP) (1 unidade de TCID50= 0.7 placa formando unidade [PFU]).
      Nota: CPE refere-se a alterações estruturais em células hospedeiras causadas pela invasão viral. O vírus infectante causa lise da célula hospedeira, ou quando a célula morre sem lise devido a uma incapacidade de reproduzir48.
      1. No dia 1, colete preparado S2 * células pipetando. Conte o número de celular. Centrifugar as células para 300 x g, durante 4 min e descartar o sobrenadante. Dilua as células para a densidade de 1 x 106 células/mL com meio completo para S2 * células conforme descrito na etapa 1.1.1.
      2. Sementes de 1 x 105 S2 * (100 μL) de células por bem para o fundo plano 96--placa (~ 30% confluência).
      3. Realize diluições de 10 vezes em série da unidade populacional DCV com meio completo para S2 * células. Adicione 50 diluições µ l para o poço. Adicione 50 µ l de meio de cultura sem vírus ao poço classificado bem como controlo negativo.
        Nota: Para cada taxa de diluição, 8 poços foram usados. Como o rendimento típico de DCV é cerca de 108-109 PFU/mL, a diluição deve cobrir pelo menos ~ 10-5-10-10.
      4. No dia 4, observe o CPE, com um microscópio de campo claro com o objetivo de X 40 ou 20 X. Classifica um poço no qual as células olham embaçadas e o meio está cheio de fragmentos como um "Bem positivo" e um poço no qual a morfologia celular é normal como "bem negativo".
      5. Poços de positivo ou negativos de Mark CPE com + ou –, respectivamente. Calcule o vírus TCID50 pelo método de Reed e Muench49.
    7. Elimine todos os materiais contaminados e luvas na panela descontaminação. Se o vírus não pode alcançar o desejado TCID50, concentrar-se 100 mL de solução de vírus por centrifugação a 68.000 x g, durante 1 h a 4 ° C.
      Nota: dependendo do objetivo do experimento, uma gama de doses de 102 a 10 unidades de6 TCID50 pode ser usado para infecção por vírus. Normalmente, usamos 3 x 106 TCID50 unidades.
    8. Desprezar o sobrenadante e ressuspender em 1 mL de tampão Tris-HCl (10 mM, pH 7,2). Alíquota 20 μL de solução de vírus por tubo e loja a-80 ° C. Escolha 5 tubos aleatórios para determinar o vírus médio TCID50 novamente.
  2. Preparação para a infecção de voar
    Nota: Bactérias simbióticas Wolbachia podem suprimir muitos tipos de infecção de vírus de RNA em insetos30,31,32,33,41. Assim, é essencial para limpar Wolbachia do moscas antes de estudar o hospedeiro-vírus infecção na vivo33.
    1. Prepare-se voar alimentos contendo tetraciclina adicionando 400 μL de 50 tetraciclina µ g/mL (em etanol a 70%) para 4 g de farinha de milho fresco padrão mosca alimentos (1L de comida contém 77,7 g de farinha de milho, 32,19 g de levedura, 10,6 g de ágar-ágar, 0,726 g de CaCl2 31,62 g de sacarose, 63,3 g de glicose, 2 g de sorbato de potássio e 15 mL de 5% C8H8O3). Misture bem e coloque os alimentos a 4 ° C durante a noite para evaporar o álcool etílico.
      Nota: Uma alta dose de etanol pode afetar a fertilidade voar, então não omitir este passo.
    2. Aquecer o alimento à temperatura ambiente e coloque recém eclosed moscas adultas (20 fêmeas e 10 machos) no frasco. Reproduzem as moscas a 25 ° C, umidade de 60% em um ciclo normal de claro/escuro.
      Nota: Normalmente, demora de 3 a 4 dias para as moscas desovar o suficiente. Muitos ovos inibem o desenvolvimento de larvas e diminuem a eficiência de tetraciclina.
    3. Coletar recém eclosed moscas adultas (dentro de 3 ~ 5 dias) sob um fluxo de luz de CO2e repita a etapa ~ 1.2.1-1.2.2. Normalmente, pelo menos 3 gerações são necessárias para a eliminação de Wolbachiacompletamente.
    4. Depois de 3 gerações com tratamento de tetraciclina, colete 5 moscas em um fluxo de luz de CO2 para o teste de infecção Wolbachia . Moscas para 1 min com 250 μL de água bidestilada (ddH2O) e alguns grânulos 0.5 mm cerâmica estéril em um tubo de 1,5 mL usando um homogeneizador de moer. Adicionar outro 250 μL de 2x tampão A (0.2 M Tris-HCl, pH 9.0; EDTA 0,2 M; 2% SDS) para a amostra e o vórtice.
      Nota: Desde que o SDS impedirá o movimento do grânulo, 1 x A reserva não pode ser diretamente usado para moer moscas. Se as moscas têm olhos vermelhos, remova cabeças antes da trituração, como isso pode influenciar a cor do produto de DNA.
    5. Congele as amostras a-80 ° C (manter por até um ano). Rapidamente a descongelar a amostra de-80 ° C em banho de água de 25 ° C, até dissolver. Incube as amostras a 70 ° C por 30 min.
    6. Adicionar 190 μL de 5 M KOAc, vórtex e incubar no gelo por 15 min ou mais.
    7. Centrifugar as amostras a 13.000 x g durante 5 min à temperatura ambiente, recolher o sobrenadante e transferi-los para novos tubos.
    8. Repita a etapa 1.2.7 para obter DNA com melhor qualidade.
    9. Adicionar 750 μL de isopropanol para cada amostra e inverta suavemente várias vezes à mão. Incube a temperatura ambiente por 5 min.
    10. Centrifugar as amostras a 13.000 x g durante 5 min à temperatura ambiente e descartar o sobrenadante. O pellet de DNA genômico branco vai ficar no fundo do tubo.
    11. Adicione 1 mL de etanol a 70% nas pelotas, centrifugar 13.000 x g por 5 min e descartar o sobrenadante. Secar o DNA até que se torne transparente.
    12. Dissolver o DNA em 100 μL de DDQ2O, titula-se concentração de DNA por espectrofotometria de absorção UV-Vis e o DNA de 100 ng/μL.
    13. Uso 200 ng de DNA para a reação de PCR (em um sistema de 20 μL, consulte a Tabela de materiais). Realizar PCR pelo seguinte programa: 95 ° C por 15 min; ciclo de 36 de 95 ° C por 45 s, 50 ° C durante 45 segundos e 72 ° C por 1 min; e uma etapa final de extensão (72 ° C por 1 min) em um termociclador.
      Nota: A Wolbachia 16S rRNA, usam os seguintes primers: 5' TGAGGAAGATAATGACGG 3' (em frente) e 5' CCTCTATCCTCTTTCAACC 3' (reverso). Para wsp, os primers foram 5' CATTGGTGTTGGTGTTGGTG 3' (em frente) e 5' ACCGAAATAACGAGCTCCAG 3' (reverso).
    14. Analise os produtos de PCR com eletroforese em gel de agarose a 1%. O tamanho do produto do PCR de Wolbachia 16S rRNA e wsp é em torno de 200 bp e 600 bp, respectivamente.
    15. Traseira Wolbachia livre voar estoque na comida de mosca de fubá padrão. Coletar de 3 a 5 dias recém eclosed macho voa para a infecção.
      Nota: Tratamento de tetraciclina também pode afetar a composição da microbiota intestinal, que posteriormente influencia respostas antivirais no acolhimento. Recomendamos que todas as moscas devem receber os mesmos tratamentos de tetraciclina. Manter livre de Wolbachia moscas crescer sob condições normais de pelo menos 3 gerações restaurar a microbiota do intestino.
  3. Genotipagem de Pastrel
    Nota: A presença do alelo S ou R do gene pst no fundo genético foi relatada para afetar a infecção de DCV em Drosophila34,35. É necessário verificar o genótipo de pst , especialmente para a infecção de DCV. Existem alguns SNPs em pst que podem afetar a infecção pelo vírus, o SNP major é 512 C/T. O gradiente de temperatura do PCR é um método rápido para identificar o genótipo de pst .
    1. Extrato de voar DNA genômico como descrito acima (passo 1.2.4 - 1.2.15).
    2. Uso 100 ng de DNA como o modelo, o primer de 512C, 5' CAGCATGGTGTCCATGAAGTC 3' (em frente) e 5' ACGTGATCAATGCTGAAAGT 3' (reverso) para detectar o alelo R, o primer 512T, 5' CAGCATGGTGTCCATGAAGTT 3' (em frente) e 5' ACGTGATCAATGCTGAAAGT 3' (reverso) para detectar o Alelo S.
    3. Definir os gradientes de Tm (temperatura de fusão) da seguinte forma: 54 ° C, 54,7 ° C, 55,5 ° C, 58 ° C, 59,7 ° C, 62,2 ° C, 63,7 ° C e 64 ° C (45 s a cada temperatura).
      Nota: 30 ciclos de PCR reação em cadeia são recomendados (sistema de 20 μL).
    4. Visualize o produto do PCR 100-bp por eletroforese em gel de agarose 2%.

2. viral infecção em Drosophila

  1. Infectar moscas por nano-injeção e realizar ensaios de sobrevivência.
    1. Puxe os capilares para preparar as agulhas de injeção, costas-encha a injeção da agulha com óleo e montar o injector como descrito anteriormente50.
    2. Anestesiar moscas na almofada sob um fluxo de luz de CO2. Inocular moscas por injeção intra torácica44 de 50,6 nL de solução de antivírus (PFU 100, diluído em tampão Tris-HCl, pH 7,2). Injete pelo menos 3 frascos de moscas (20 moscas por frasco).
      Nota: A injeção é demoradas (geralmente 100 moscas por hora) e replicação de DCV é muito rápida, por isso é muito importante anotar a hora exata no tubo uma vez terminando cada frasco (20 moscas). Injeção única de buffer é definida como um controle de simulação. Geralmente, moscas adultas masculinas são preferidas, como os resultados são mais estável e reprodutível do que quando usando fêmeas desde que as variações hormonais durante o acasalamento e reprodução podem influenciar a leitura de fêmeas51.
    3. Crescem as moscas injetadas a 25 ° C, 60% de umidade sob um ciclo normal de claro/escuro. Fornecemos moscas com alimentos frescos diariamente e registrar o número de mortos flies.
    4. Realizar pelo menos 3 réplicas biológicas e traçar a curva de sobrevivência.
    5. Para a análise estatística dos dados de sobrevivência, gere curvas de sobrevivência de Kaplan-Meier pelo software estatístico. Execute teste de log-rank para calcular os valores de P. Na tabela de sobrevivência, insira informações para cada disciplina. O software então calcula a sobrevivência por cento a cada momento e traça um plano de sobrevivência de Kaplan-Meier.
      Nota: Não adicione o fermento adicional dentro do frasco. Comparado com controles simulados, moscas infectadas por DCV ocasionalmente têm ascite e desajeitadas, que torná-lo vulnerável para o fermento pegajoso. É melhor gravar mais tempo pontos no experimento preliminar para descobrir um período de tempo no qual a morte maciça acontecerá para moscas infectadas. Geralmente, as moscas infectadas raramente morrem nos primeiros dois dias, mesmo para as linhas mutantes Dcr-2 . Para a Wolbachia voar livre w1118 (Bloomington 5905) infectado com 100 PFU de DCV, esta janela de tempo é em torno de 3 a 5 dias pós infecção. As moscas de fruta que morrer em poucas horas de injeção 0,5 h post deve não serão contadas como uma fatalidade porque eles podem ser mortos por lesão de agulha não por infecção viral.
  2. DCV carga medida pelo ensaio CPE
    Nota: Carga Viral é medida da mesma forma para a titulação da unidade populacional de vírus (etapa 1.1.6) mas requer preparação da amostra adicional (passo 2.2.1-2.2.4).
    1. No dia 1, infectar moscas masculinas, conforme descrito no passo 2.1.1-2.1.2. Grupo de moscas injetadas em grupos de 20 e mantê-los a crescer em alimentos frescos de voar para o tempo desejado (normalmente por 24 horas ou 3 dias). Fornece moscas com alimentos frescos diariamente.
    2. No dia 2, semente drosófila S2 * células numa placa de cultura de células de 10cm para a densidade de aproximadamente 5 x106 a 1 x 107 células/mL conforme descrito na etapa 1.1.1.
    3. No dia 3, coletar 5 moscas (sob um fluxo de luz de CO2) e triturá-los em um tubo de centrífuga de 1,5 mL por 30 s com 200 µ l de tampão Tris e grânulos cerâmicos usando homogenizador. Armazenar as amostras a-80 ° C ou imediatamente prosseguir para a próxima etapa.
    4. Vórtice completamente a amostra. Use uma seringa de 1 mL e 0,22 μm para filtro o sobrenadante para um novo tubo de 1,5 mL. Prossiga com a titulação, conforme descrito em etapas 1.1.6.1-1.1.6.5.
  3. Carga DCV, medida por qRT-PCR
    1. No dia 1, infectar moscas como descrito acima. Grupo injetado macho voa (20 moscas/grupo) e crescer em alimentos frescos de voar para o tempo desejado, normalmente para 24h ou 3 dias. Fornece moscas com alimentos frescos diariamente.
    2. No dia 3, coletar 5 moscas em um fluxo de luz de CO2 em um tubo de 1,5 mL com 200 μL de tampão de Lise e 20 grânulos cerâmicos (diâmetro = 0,5 mm), moer as amostras por homogenizador com alta velocidade de 30 s. Adicionar 800 μL de tampão de Lise adicionais a cada tubo e armazenar o s práticas a-80 ° C ou imediatamente realizar a extração do RNA e qRT-PCR.
    3. Preparar dicas grátis de RNase, tubos e água deionizada, diethylpyrocarbonate (DEPC) tratada e água de filtro de membrana 0,22 µm. Adicionar 200 μL de clorofórmio (99.5%) para a amostra e vigorosamente agitar durante 15 s pela mão. Incube durante 5 min ou mais à temperatura ambiente até a fase da água e a fase orgânica são claramente separados.
      Nota: Clorofórmio é extremamente perigoso e deve ser manuseado com cuidado. Fazer não vórtice a amostra, o que aumentará o risco de contaminação de DNA.
    4. Centrifugar as amostras a 13.000 x g, durante 15 min a 4 ° C.
    5. Coletar 400 μL do sobrenadante e transferir o sobrenadante para tubos novos. Misture com o mesmo volume de isopropanol (≥ 99.5%), inverta suavemente as amostras para 20 vezes à mão e depois precipitar por 10 min ou mais à temperatura ambiente.
      Nota: Precipitação a-20 ° C irá aumentar o rendimento do RNA.
    6. Centrifugar as amostras a 13.000 x g durante 10 minutos a 4 ° C. RNA de branco pelotas são visíveis na parte inferior do tubo.
    7. Desprezar o sobrenadante e adicionar 1 mL de etanol a 70% (etanol em água DEPC) e inverter algumas vezes para lavar o RNA.
    8. Centrifugar as amostras a 13.000 x g por 5 min a 4 ° C. Descartar o sobrenadante e seco do RNA por 5-10 min; RNA deve tornar-se transparente.
    9. Adicione 50 μL de água DEPC para a amostra, pipeta para poucas vezes e vortex.
    10. Tome 3 μL de RNA para titulada a concentração de RNA. Quantificar o RNA em 260 nm. Normalmente, a concentração de RNA extraída por este protocolo é aproximadamente 100-500 μg/μL, que é apropriada para a síntese do cDNA.
    11. Uso 2 μg de RNA para a síntese do cDNA. Diluir a amostra com 100 μL com DDQ2O e loja a-20 ° C.
    12. Faça qRT-PCR de acordo com as instruções do fabricante e execute qRT-PCR.
      Nota: Para a síntese do cDNA de DCV, primers aleatórios funcionavam muito melhor do que o primer poli A em nossas mãos. Expressão de RNAm DCV é normalizado para proteína endógena ribosomal 49 (rp49) mRNA. As primeiras demão do oligonucleotide usadas nesta parte: rp49 5' AGATCGTGAAGAAGCGCACCAAG 3' (em frente) e 5' CACCAGGAACTTCTTGAATCCGG 3' (reverso); DCV, 5' TCATCGGTATGCACATTGCT 3' (em frente) e 5' CGCATAACCATGCTCTTCTG 3' (reverso); Vani, 5' TGCAACTCTGGGAGGATAGC 3' (em frente) e 5' AATTGCCCTGCGTCAGTTT 3' (reverso); vírus-induzida RNA 1 (vir-1) 5' GATCCCAATTTTCCCATCAA 3' (em frente) e 5' GATTACAGCTGGGTGCACAA 3' (reverso).

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Resultados

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Após a infecção de DCV de d. melanogaster, obtêm-se resultados desta seção. A Figura 1 mostra o fluxograma de infecção viral em Drosophila. Moscas são injetadas intra-thoracically, e em seguida as amostras são coletadas para a medição do viral TCID50 e o nível do genoma de RNA (Figura 1). Infecção por vírus pode induzir lise celular e CPE é observada em 3 dias pós infecção (Figura 2A). Em consonância com a carga de vírus, medida pelo ensaio d...

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Discussão

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Neste artigo, apresentamos um procedimento detalhado sobre como estabelecer um sistema viral infeccioso em adultos Drosophila melanogaster , usando nano-injeção. Os protocolos incluem a preparação de linhas apropriadas de voar e estoque de vírus, técnicas de infecção, a avaliação dos indicadores de infecciosas e a medição da resposta antiviral. Apesar de DCV é usado como um exemplo de um patógeno viral, dezenas de tipos diferentes de vírus foi bem sucedidas para estudo no sistema da drosófila. Além disso, foram ...

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Divulgações

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Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

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Gostaríamos de agradecer o laboratório Pan todo em IPS. CAS. Agradecemos o Dr. Lanfeng Wang (IPS, CAS) para assistência experimental e Dr. Gonalo Cordova Steger (natureza de Springer), Dr. Jessica VARGAS (IPS, Paris) e Dr. Seng Zhu (IPS, Paris) para comentários. Este trabalho foi apoiado por concessões do programa estratégico de pesquisa prioritárias da Academia Chinesa de Ciências L.P (XDA13010500) e h. t (XDB29030300), a Fundação ciência Natural nacional da China para L.P (31870887 e 31570897) e J.Y (31670909). L.P é um membro da Associação de promoção de inovação do CAS da juventude (2012083).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Filtro de 0,22umMilliporeSLGP033RS
Tubos de microcentrífuga de 1,5 mlMarca352070
Tubos de microcentrífuga sem RNase de 1,5 mlAxygenMCT-150-C
Placa de cultura de célulasSigmaCLS430167
100 Tubos de substituiçãoDrummond Scientific3-000-203-G/X
Tubo de 15 mlCorning352096
ABI 7500 qPCR sistemaABI7500qPCR
Incubadora de célulasSanyoMIR-553
CentrigugeEppendof5810R
CentrigugeEppendof5424R
ClorofórmioSigma151858Extração de RNA
DEPC águaSigma95284-100MLExtração de RNA
Drosophila IncubadoraPercivalI-41NLCriação Drosophila
FBSInvitrogen12657-029Cultura
células de fundo plano placa de 96 poçosSigmaCLS3922Microscópio
fluorescência OlympusDP73
Álcool isopropílicoSigmaTampãode extração de RNA
(extração de RNA)Thermo Fisher15596026TRIzol
(extração de RNA de amostra líquida)Thermo Fisher10296028TRIzol LS
InjetorCKX41
Nanoject IIDrummond Scientific3-000-204Nanoject II Volume Variável (2,3 a 69 nL) Injetor Automático com Capilares de Vidro (110V)
Filme Adesivo ÓpticoABI4360954qPCR
Penicilina-Estreptomicina, LíquidoInvitrogen15140-122Placa
qPCRABIA32811qPCR
Schneider' s Inseto MédioSigmaS9895Software
estatísticoGraphPad Prism 7
TransScript Fly First-Strand cDNA Synthesis SuperMixTransScriptAT301Extração de RNA
VortexIKAVORTEX 3Extração de RNA
Placa de cultura de células de de de lise I9516Tampão de lise de reagente Microscópio de reagente de nanolitro automático Olympus de cultura celular de cultura celular

Referências

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