Este estudo segue as políticas e diretrizes do programa de proteção de pesquisa humana do Conselho de revisão institucional da Universidade de Indiana.
1. seleção de localização
- Selecione o número de sites (n) com base em diferentes níveis de natureza.
Nota: escolhemos três sites para o nosso trabalho. Usando um continuum baseado em níveis de "naturalidade", o site A foi considerado o mais natural e é composto por cerca de 1.200 hectares de cumes arborizadas que fazem fronteira com um lago e situado dentro de uma floresta decídua. As atividades mais comuns incluem caminhadas e observação da vida selvagem. O site B foi um parque municipal de 33 hectares com caminhos pedestres, lugares para encontros, playgrounds e espaço aberto para atividades recreativas. O local C era uma instalação urbana, interna do exercício com o mais baixo nível de naturalidade. Todos os três locais estão na proximidade relativamente próxima a uma cidade de tamanho médio (população estimada de 46.000 pessoas) no centro-oeste dos Estados Unidos.
2. triagem e preparação dos participantes
- Recrutamento participante completo antes que os sujeitos participem de experiências recreativas.
Nota: para os sites A e B, os sujeitos foram abordados pelo pesquisador no estacionamento da entrada do parque. Para o site C, os assuntos foram abordados na recepção da instalação de exercício indoor. Para controlar as diferenças no tipo de atividade, os assuntos recrutados para ambos os sites A e B foram predominantemente caminhadas, enquanto que para o site C a atividade principal estava em execução ou andando na pista indoor.
- Durante o recrutamento, lembre os sujeitos a cumprirem as diretrizes relacionadas à coleta de amostras de cortisol salivar. Eles não devem comer ou beber 10 min antes de fornecer amostras de saliva.
Nota: deve-se notar que, neste caso, as amostras de saliva não foram normalizadas para volume ou diluição (concentração)-ou seja, se os participantes foram adequadamente hidratados e/ou fizeram mudança de hidratação entre as coletas amostrais.
- Dê braçadeiras vermelhas (ou vestuário equivalentemente perceptível) para cada participante para permitir a identificação fácil quando emergir no final de seus engajamentos.
- Atribua uma alocação de tempo de 30-40 min para que todos os assuntos entre os três sites passem um período de tempo semelhante em cada site. Exclua assuntos que gastam substancialmente mais ou menos tempo do que o restante da amostra.
- Mantenha o tipo de atividade engajado consistente.
Nota: neste caso, a actividade "Medium" foi caminhar ou fazer caminhadas. Foram excluídos da amostra indivíduos que exerçam atividades substancialmente diferentes de caminhada ou caminhada. Por exemplo, os indivíduos que estavam pescando, picnicking, ou levantamento de peso não foram incluídos nas amostras respectivas.
3. condições e desenho experimental
- Use um projeto Quasi-experimental do pre-teste/borne-teste.
- Depois de identificar os sujeitos e ao concordar em participar, peça a cada sujeito que leia e assine um formulário do IRB explicando a natureza voluntária, o propósito e os procedimentos do estudo.
- Após este processo, dar aos sujeitos uma peça de roupa (por exemplo, braçadeira vermelha) para a identificação futura e obter medidas fisiológicas e psicológicas dos níveis de stress (ou seja, PSQ, 1-2 ml de saliva que é cuspir ou babou em um tubo de ensaio). Colete amostras do final da tarde para o início da noite.
Nota: estes dados foram coletados por pesquisadores ambos 1) pouco antes de os sujeitos entraram no site e 2) imediatamente após o término da visitação para o site.
4. amostras de saliva
- Para evitar a diluição da amostra, peça aos sujeitos que não comam, bebam ou enxaguem as bocas 10 min antes de fornecer amostras de saliva.
- Peça aos sujeitos que forneçam amostras de saliva de 1-2 mL (excluindo espuma) pouco antes da experiência recreativa e imediatamente após a conclusão da experiência.
- Colete amostras de saliva usando um método de babar passivo:
- Forneça aos indivíduos um 2 na palha bebendo plástica para babar em um CryoVial de 2 ml (veja a tabela de materiais).
- Instruir os sujeitos a permitir que a saliva para a piscina em suas bocas, em seguida, Baba para baixo a palha e no CryoVial. De acordo com a coleta de saliva e conselhos de manuseio (2011), 1 mL (excluindo espuma) é adequado para a maioria dos testes.
- As amostras de rótulos com um número de identificação de 3 dígitos atribuído (ou seja, 001) e uma letra para indicar o tempo de coleta de dados (ou seja, A representa o pré-teste, B representa o pós-teste; onde 001A representa a amostra de saliva fornecida pelo participante 001 antes de conduzir o experiência recreativa).
- Depois que a amostra é recolhida e etiquetada, deve então ser armazenada congelada temporariamente em uma caixa esteróide da espuma completamente do gelo seco para não mais do que 2 h.
- Transportar as amostras marcadas para um laboratório e armazenar a-80 ° c até ser analisado.
5. quantificação da α-amilase
Nota: neste ensaio, α-amilase hidrolisa 2-chloro-p-Nitrophenyl-α-d-maltotrioside para 2-chloro-nitrophenol e formas de glicose, 2-chloro-p-Nitrophenyl-α-d-maltoside, maltotriose, e glicose. A reação é monitorada em uma absorbância de 405 nm, o que corresponde à atividade da α-amilase na amostra. Este ensaio demonstra linearidade entre 0 e 2000 U/L.
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Materiais
- Utilizou um conjunto de reagentes de amilase líquida (ver tabela de materiais) para quantificar a α-amilase em amostras de saliva. Todos os reagentes são fornecidos como líquidos prontos para uso e armazenados a 0-4 ° c.
- Utilize um leitor de vários modos (ver tabela de materiais) capaz de ler uma densidade óptica a 405 nm com uma temperatura controlada para 37 ° c durante o ensaio.
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Análise
- Descongele as amostras no gelo antes da análise.
- Diluir amostras 1:10 com 1X PBS (10 μL de saliva + 90 μL de PBS).
- Analise cada amostra em duplicado.
- Equilibrar o reagente de amilase a 20-25 ° c durante pelo menos 30 min.
- Adicionar 0,1 mL de reagente de amilase a uma microplaca de poço de 96 para cada amostra.
- Pré-incubar a microplaca a 37 ° c durante um mínimo de 5 min.
- Adicionar 2,5 μL da amostra ao reagente de amilase.
- Faça uma leitura inicial após 60 s.
- Continue as leituras a cada 60 s por um adicional de 2 min.
- Calcule a diferença média de absorbância por minuto (Δabs/min).
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Cálculo
- Para calcular a atividade da amilase, use a seguinte fórmula:

Onde ΔABS/min = alterações na diferença de absorvância por minuto; TV = volume total do ensaio (0,1025 ml); * 1000 = conversão de U/mL para U/L; MMA = absorptividade milimolar de 2-cloro-p-nitrofenol = 12,9; SV = volume amostral (0, 25 ml); e LP = caminho de luz (1 cm). Substituindo dá:

Portanto, multiplicar o Δabs/min por 3178x o fator de diluição (10) para obter amilase em U/L.
- Para amostras acima de 2000 U/L (linearidade do ensaio) diluir ainda mais (pelo menos 2x usando PBS) e re-ensaio, em seguida, multiplicar o resultado da α-amilase pelo fator de diluição adicional.
6. quantificação do cortisol
Nota: neste ensaio, o cortisol livre é quantificado na saliva usando uma curva padrão de cortisol. Os padrões e as amostras diluídas são adicionados a uma placa do de microtitulação que seja pre-Coated com um anticorpo. Um conjugado da cortisol-peroxidase é adicionado aos poços, seguido pela adição de um anticorpo monoclonal ao cortisol. A quantidade de ligação de cortisol/peroxidase conjugada diminui à medida que a concentração de cortisol na amostra aumenta.
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Materiais
- Use um kit de imunoensaio de enzima cortisol (ver tabela de materiais) para quantificar o cortisol em amostras de saliva. Todos os reagentes necessários para realizar este ensaio estão incluídos no kit. Todos os componentes do kit são armazenados a 0-4 ° c antes de chegarem à data de expiração.
- Use um espectrofotômetro capaz de ler uma densidade óptica (OD) em 450 nm (ver tabela de materiais), bem como software capaz de usar gravações od do leitor de placa para executar quatro parâmetros de curva logística (4 PLC) encaixe.
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Preparação do reagente
- Permitir que todos os reagentes equilibrem a 20-25 ° c durante um mínimo de 30 min.
- Diluir o tampão de ensaio de cortisol 1:5 utilizando água desionizada.
- Diluir o tampão de lavagem 1:20 utilizando água desionizada.
Nota: os tampões do ensaio e da lavagem são estáveis por 3 meses quando armazenados em 0-4 ° c.
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Preparação da amostra
- Descongele as amostras no gelo antes da análise.
- Diluir amostras 1:10 com tampão de ensaio de cortisol (20 μL de saliva + 180 μL de tampão) e utilizar dentro de 2 h de preparação.
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Elaboração de normas
- Tubos de ensaio de vidro da etiqueta #1-#7.
- Pipet 225 μL de tampão de ensaio no tubo #1 e 125 μL de tampão em tubos #2-#7.
- Adicione 25 μL da solução do estoque do cortisol ao tubo #1 e ao vortex.
- Remover 125 μL de tampão do tubo #1 e adicioná-lo ao tubo #2, em seguida, vortex.
- Repita as diluições seriais para tubos #3-#7.
Nota: as concentrações finais de cortisol de cada norma são mostradas na tabela 1.
- As normas devem ser utilizadas dentro de 2 h de preparação.
| Padrão | #1 | #2 | #3 | #4 | #5 | #6 | #7 |
| Volume do tampão do ensaio (μL) | 225 | 125 | 125 | 125 | 125 | 125 | 125 |
| Adição | Estoque STD | #1 | #2 | #3 | #4 | #5 | #6 |
| Volume de adição (μL) | 25 | 125 | 125 | 125 | 125 | 125 | 125 |
| Concentração final (pg/mL) | 3200 | 1600 | 800 | 400 | 200 | 100 | 50 |
Tabela 1: tabela de preparação da curva padrão.
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Análise
- Use o layout da placa abaixo na Figura 1 como um guia para configurar a microplaca.
- Recomenda-se a utilização de uma pipeta multicanal para adição de reagentes.
- Adicionar 50 μL de amostras ou normas no número adequado de poços na chapa. Amostras e padrões devem ser executados em duplicado.
- Adicione o buffer de ensaio (75 μL) nos poços de ligação não específica (NSB).
- Adicione o tampão de ensaio (50 μL) nos poços de ligação máxima (B0) e nos poços padrão zero (em branco).
- Adicionar 25 μL do conjugado de cortisol a cada poço.
- Adicione 25 μL do anticorpo do cortisol a cada poço, à exceção dos poços de NSB.
- Bata suavemente o lado da placa para misturar os reagentes.
- Cubra com o aferidor da placa e agitar à temperatura ambiente (RT) a 20-25 ° c por 1 h.
- Retire o conteúdo do poço e enxague cada um bem 4x com tampão de lavagem (300 μL). Bata a placa para secar em toalhas absorventes entre laves.
- Adicione o substrato TMB a cada poço (100 μL).
- Incubar a placa a 20-25 ° c durante 30 min sem agitação.
- Adicione a solução de paragem a cada poço (50 μL).
- Leia a densidade óptica em cada poço da microplaca em 450 nm.
- Média das densidades ópticas para cada padrão, em seguida, amostra e subtrair a densidade óptica média para os poços NSB.
- Calcule o% Bound (B/B0) para todas as amostras usando controles de ligação máxima (B0).
- Crie uma curva padrão usando software capaz de ajuste de curva de regressão logística de quatro parâmetros, calculado a partir da curva% B/B0.
- Multiplicar o resultado pelo fator de diluição (10) para obter valores de cortisol em pg/mL.
- As amostras com densidades ópticas que caem acima do padrão o mais elevado devem mais ser diluídas com amortecedor do ensaio e re-analisado, a seguir o resultado deve ser multiplicado pelo fator adicional da diluição.

Figura 1 : Layout da placa de exemplo. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
7. medição psicológica (questionário de stress percebido)
- Medir os níveis psicológicos dos sujeitos que utilizam o PSQ publicado por Fliege et al.13, que inclui quatro fatores (preocupação, tensão, tensão, alegria) e utiliza 20 itens.
- Peça ao sujeito que preencha o PSQ pouco antes de sua experiência recreativa e imediatamente após a conclusão da experiência.
- Marque questionários com um número de identificação de 3 dígitos idêntico ao nível de estresse biophysiológico de cada sujeito.