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A microfluídica permite o controle de fluidos em pequenas escalas, com volumes que variam de microlitros (1 x 10-6 L) a picolitros (1 x 10-12 L). Este controle foi possível em parte devido à aplicação de técnicas de microfabricação emprestadas da indústria de microprocessadores1. O uso de redes microdimensionadas de canais e câmaras permite ao usuário aproveitar os fenômenos físicos distintos característicos das pequenas dimensões. Por exemplo, na escala do micrômetro, os fluidos podem ser manipulados usando o fluxo laminar, onde as forças viscosas dominam as forças inerciais. Como resultado, o transporte difusivo torna-se a característica proeminente da microfluídica, e pode ser estudado quantitativa e experimentalmente. Estes sistemas podem ser devidamente compreendidos usando as leis de Fick, teoria do movimento browniano, a equação de calor, e / ou as equações De Navier-Stokes, que são derivações importantes nos campos da mecânica de fluidos e fenômenos de transporte2.
Como muitos grupos nas ciências biológicas estudam sistemas complexos no nível microscópico, pensou-se originalmente que os dispositivos microfluídicos teriam um impacto imediato e significativo nas aplicações de pesquisa na biologia2,3. Isto é devido à difusão que é dominante no transporte de moléculas pequenas através das membranas ou dentro de uma pilha, e as dimensões das pilhas e dos micro-organismos são um fósforo ideal para sistemas e dispositivos do sub-milímetro. Portanto, havia um potencial significativo para melhorar a forma como a experimentação celular e molecular é conduzida. No entanto, a ampla adoção de tecnologias microfluídicas por biólogos ficou para trás as expectativas4. Uma razão simples para a falta de transferência de tecnologia pode ser os limites disciplinares que separam engenheiros e biólogos. O projeto e a fabricação personalizados do dispositivo permaneceram apenas fora das capacidades da maioria de grupos de pesquisa biológicos, fazendo os dependentes da perícia e das facilidades externas. A falta de familiaridade com potenciais aplicações, custos e o tempo necessário para a iteração de design também são barreiras significativas para os novos adotantes. É provável que estas barreiras tenham tido o efeito de perturbar a inovação e prevenir a aplicação generalizada de microfluídicos para enfrentar os desafios nas ciências biológicas.
Um caso em questão: Desde o final da década de 1990, a fotolitografia suave tem sido o método de escolha para a fabricação de dispositivos microfluídicos. PDMS (polidimetilsiloxano, um polímero orgânico à base de silicone) é um material amplamente utilizado por causa de suas propriedades físicas, como transparência, deformabilidade e biocompatibilidade5. A técnica tem tido grande sucesso, com dispositivos lab-on-a-chip e organ-on-a-chip continuamente sendo desenvolvidos nesta plataforma6. A maioria dos grupos que trabalham nestas tecnologias, entretanto, é encontrada em departamentos da engenharia ou tem laços fortes a eles4. A litografia geralmente requer salas limpas para a fabricação de moldes e equipamentos de ligação especializados. Para muitos grupos, isso torna os dispositivos PDMS padrão menos do que o ideal devido aos seus custos de capital e tempo de espera, especialmente quando há uma necessidade de fazer modificações de design repetidas. Além disso, a tecnologia é, em sua maioria, inacessível ao biólogo médio e aos alunos sem acesso a laboratórios especializados de engenharia. Tem sido proposto que para que os dispositivos microfluídicos sejam amplamente adotados, eles devem imitar algumas das qualidades dos materiais comumente usados pelos biólogos. Por exemplo, o poliestireno usado para cultura celular e bioensaios é barato, descartável e passível de produção em massa. Em contraste, a fabricação industrial de microfluídicos à base de PDMS nunca foi realizada por causa de sua maciez mecânica, instabilidade no tratamento da superfície e permeabilidade de gás5. Por causa dessas limitações, e com o objetivo de resolver desafios técnicos usando dispositivos personalizados construídos "internamente", descrevemos um método alternativo que utiliza xurografia7,8,9 protocolos e laminação térmica. Este método pode ser adotado com pouco capital e investimento em tempo.
Petls são fabricados usando polietileno tereftalato (PET) filme, revestido com o acetato termoadhesivo etileno-vinil (EVA). Ambos os materiais são amplamente utilizados em produtos de consumo, são biocompatíveis e estão prontamente disponíveis a um custo mínimo10. Pet / EVA filme pode ser obtido a forma de laminação de bolsas ou rolos. Usando um cortador de artesanato controlado por computador comumente encontrado em lojas amadores ou artesanais, os canais são cortados de uma única folha de filme para definir a arquitetura do dispositivo11. Os canais são então selados através da aplicação de camadas de filmes (ou vidro) adicionais que são ligados através de um laminador térmico (office) (Figura 1A). Os amortecedores perforated, auto-adesivos do vinil são adicionados para facilitar o acesso às canaletas. Os tempos de fabricação variam de 5 a 15 min, o que permite a iteração rápida do projeto. Todos os equipamentos e materiais usados para fazer PETLs são comercialmente acessíveis e acessíveis (<350 USD custo inicial, em comparação com milhares de USDs para litografia). Portanto, os PETLs fornecem uma nova solução para dois problemas principais colocados pela microfluídica convencional: acessibilidade e eficácia do tempo (Ver Comparação PDMS/PETL nas Tabelas Suplementares 1, 2).
Além de proporcionar aos pesquisadores a oportunidade de projetar e fabricar seus próprios dispositivos, os PETLs podem ser facilmente adotados em sala de aula porque são simples e intuitivos de usar. Petls podem ser incluídos no ensino médio e currículos universitários8, onde eles são usados para ajudar os alunos a entender melhor os conceitos físicos, químicos e biológicos, como difusão, fluxo laminar, micromixing, síntese de nanopartículas, formação gradiente e quimiotáxis.
Neste trabalho, ilustramos o fluxo de trabalho global para a fabricação de chips PETLs modelo com diferentes níveis de complexidade. O primeiro dispositivo é usado para facilitar a imagem latente das pilhas e dos micro-órgãos em uma câmara pequena. O segundo dispositivo, mais complexo consiste em diversas camadas e materiais, e é usado para a pesquisa no mechanobiology9. Por fim, construímos um dispositivo que exibe vários conceitos de dinâmica de fluidos (foco hidrodinâmico, fluxo laminar, transporte difusivo e micromixagem) para fins educacionais. O fluxo de trabalho e os projetos de dispositivos apresentados aqui podem ser facilmente adaptados para uma grande variedade de fins em ambas as configurações de pesquisa e sala de aula.