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Plataforma lab-on-a-CD para geração de esferóides tridimensionais multicelulares

DOI:

10.3791/60399

November 7th, 2019

In This Article

Summary

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Apresentamos um dispositivo microfluídico centrífuga movido a motor que pode cultivar esferóides celulares. Usando este dispositivo, esferóides de tipos de células únicas ou múltiplas podem ser facilmente coculturados condições de alta gravidade.

Abstract

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Uma cultura tridimensional de células esferóides pode obter resultados mais úteis em experimentos celulares porque pode simular melhor microambientes celulares do corpo vivo do que a cultura celular bidimensional. Neste estudo, fabricamos uma plataforma elétrica de laboratório em um CD (disco compacto), chamada de sistema de cultura esferóide de base microfluídica (CMS), para criar esferóides de células tridimensionais (3D) implementando força centrífuga alta. Este dispositivo pode variar velocidades de rotação para gerar condições de gravidade de 1 x g a 521 x g. O sistema CMS tem 6 cm de diâmetro, tem cem 400 microwells μm, e é feito moldando com polidimetilsiloxano em um molde de policarbonato pré-feito por uma máquina de controle numérica de computador. Uma parede de barreira na entrada do canal do sistema CMS usa força centrífuga para espalhar as células uniformemente dentro do chip. No final do canal, há uma região de deslizamento que permite que as células entrem nos micropoços. Como demonstração, os esferóides foram gerados pela monocultura e pela cocultura de células-tronco derivadas do adiposo humano e dos fibroblastos pulmonares humanos em condições de alta gravidade usando o sistema. O sistema CMS usou um esquema de operação simples para produzir esferóides de cocultura de várias estruturas de concêntricos, Janus e sanduíche. O sistema CMS será útil em biologia celular e estudos de engenharia de tecidos que exigem esferóides e cultura organóide de tipos de células únicas ou múltiplas.

Introduction

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É mais fácil simular microambientes in vivo biológicos com cultura celular esferóide tridimensional (3D) do que com cultura celular bidimensional (2D) (por exemplo, cultura celular convencional da placa de Petri) produzir experimental fisiologicamente mais realista resultados1. Os métodos de formação esferóide atualmente disponíveis incluem a técnica de queda suspensa2,a técnica de sobreposição líquida3,a técnica de celulose carboxtil4,a técnica microfluídica baseada em força magnética5,e o uso de biorreatores6. Embora cada mé....

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Protocol

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1. Fabricação de chips de cultura microfluídica (CMS) de base microfluídica (CMS)

  1. Faça moldes de PC para as camadas superior e inferior do chip de cultura CMS por usinagem CNC. Dimensões detalhadas do chip são dadas na Figura 1.
  2. Misture a base pdms e pdms agente de cura em uma proporção de 10:1 (w/ w) para 5 min e coloque em um desidratador para 1 h para remover bolhas de ar.
  3. Depois de derramar a mistura PDMS nos moldes do chip de cultura CMS, retire as bolhas de ar para mais de 1 h e cure em uma câmara de calor a 80 °C por 2 h.
  4. Coloque-os no aspirador de plasma aspirado com as superfícies a serem l....

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Results

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O chip de cultura CMS de 6 cm de diâmetro (Figura 2)foi feito com sucesso seguindo o protocolo acima. Primeiro, o chip foi feito separadamente de uma camada superior e uma camada inferior e, em seguida, ligado si por ligação plasmática. Esferóides resultantes podem ser facilmente reunidos, desanexando o chip. O canal do chip de cultura CMS compreende uma porta de inseto e regiões centrais, slide, e microwell (Figura 3). As soluções celular, média e plurônica são.......

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Discussion

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O CMS é um sistema fechado em que todas as células injetadas entram no micropoço sem resíduos, tornando-o mais eficiente e econômico do que os métodos convencionais de geração esferóide à base de microwell. No sistema CMS, a mídia é substituída a cada 12-24 h através de um buraco de sucção projetado para remover a mídia no chip (Figura 3A). Durante o processo de sucção da mídia, quase nenhuma mídia escapa de dentro do micropoço devido à tensão superficial entre a mídia e a parede do microwel.......

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Disclosures

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Os autores não têm nada a divulgar.

Acknowledgements

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Esta pesquisa foi apoiada pelo Basic Science Research Program (2016R1D1A1B03934418) e pelo Programa de Desenvolvimento de Biotecnologia e Tecnologia Médica (2018M3A9H1023141) da NRF e financiado pelo governo coreano, MSIT.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Impressora 3DCubicon3DP-210F
Células-tronco mesenquimais derivadas do tecido adiposo (hASC)ATCCPCS-500-011
Antibiótico-AntimicóticoGibco15240-062Continha 1% do meio e tampão concluídos
CellTracker Verde CMFDAThermo Fisher ScientificC292510 mM
CellTracker Vermelho CMTPXThermo Fisher ScientificC3455210 mM
Controle numérico computadorizado (CNC) gravador rotativoRoland DGAEGX-350
DC motorNurielectricity Inc.MB-4385E
Dimetilsulfóxido (DMSO)Sigma AldrichD2650
Meio de Dulbecco modificado (DMEM)ATCC30-2002
Solução salina tamponada com fosfato de Dulbecco (D-PBS)ATCC30-2200
Soro fetal bovinoATCC30-2020Continha 10% de
fibroblastos pulmonares humanos médios completos (MRC-5)ATCCCCL-171
Inventor 2019Autodesk3D programa de design auxiliado por computador
Placa de Petri Φ 150 mmJetBiofillCAD010150tratado com superfície
Harrick PlasmaPDC-32G
Pluronic F-127Sigma Aldrich11/6/9003Diluir com solução salina tamponada com fosfato a 4% (p / v)
Policarbonato (PC)AcrylmallAC15PC200 x 200 x 15 mm
Polidimetilsiloxano (PDMS)DowcorningSylgard 184
TripsinaGibco12604021
Limpador de plasma

References

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  1. Ravi, M., Paramesh, V., Kaviya, S. R., Anuradha, E., Paul Solomon, F. D. 3D cell culture systems: Advantages and applications. Journal of Cellular Physiology. 230 (1), 16-26 (2015).
  2. Tung, Y. C., et al. High-throughput 3D spheroid culture and drug testing usi....

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Lab on a CD PlatformCentrifugal Microfluidic System3D Cell SpheroidsHuman Adipose Stem CellsHuman Lung FibroblastsPDMS MoldingCNC MachiningPlasma BondingCentrifugal Force DepositionMicrowell Array Culture

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