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Artigo de método

Diferenciação neural eficiente usando a cultura unicelular de células-tronco embrionárias humanas

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DOI:

10.3791/60571

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18 de janeiro de 2020

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Neste artigo

Resumo

Apresentado aqui é um protocolo para a geração de uma cultura unicelular de células-tronco embrionárias humanas e sua diferenciação subseqüente em células progenitoras neurais. O protocolo é simples, robusto, escalável e adequado para rastreamento de medicamentos e aplicações de medicina regenerativa.

Resumo

A diferenciação in vitro das células-tronco embrionárias humanas (hESCs) transformou a capacidade de estudar o desenvolvimento humano em níveis biológicos e moleculares e forneceu células para uso em aplicações regenerativas. Abordagens padrão para a cultura hESC usando cultura do tipo colônia para manter hESCs indiferenciados e corpo embrionário (EB) e formação de roseta para diferenciação em diferentes camadas germinais são ineficientes e demorados. Apresentado aqui é um método de cultura unicelular usando hESCs em vez de uma cultura do tipo colônia. Este método permite a manutenção das características de hESCs indiferenciados, incluindo a expressão de marcadores hESC em níveis comparáveis aos hESCs tipo colônia. Além disso, o protocolo apresenta um método eficiente para a geração de células progenitoras neurais (NPC) de hESCs do tipo unicelular que produz NPCs dentro de 1 semana. Estas células expressam altamente vários genes marcador NPC e pode se diferenciar em vários tipos de células neurais, incluindo neurônios dopaminérgicos e astrócitos. Este sistema de cultura unicelular para hESCs será útil na investigação dos mecanismos moleculares desses processos, estudos de certas doenças e telas de descoberta de medicamentos.

Introdução

As células-tronco embrionárias humanas (hESCs) têm o potencial de se diferenciar em três camadas germinais primárias, que se diferenciam em várias linhagens celulares progenitoras multipotentes. Estas linhagens posteriormente dão origem a todos os tipos de células do corpo humano. Os sistemas de cultura in vitro hESC transformaram a capacidade de estudar o desenvolvimento embrionário humano e serviram como uma ferramenta valiosa para obter novos insights sobre como esses processos são regulados nos níveis biológico e molecular. Da mesma forma, estudos de células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs) gerados a partir da reprogramação de células somáticas isoladas de p....

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Protocolo

1. Preparação de placas revestidas de matriz de membrana de porão qualificadas por hESC

  1. Descongele lentamente a matriz de membrana de porão qualificada ao hESC (ver Tabela de Materiais)solução em 4 °C por pelo menos 2-3 h ou durante a noite para evitar a formação de um gel.
  2. Para preparar placas revestidas de matriz de membrana de porão, diluir matriz em DMEM/F12 a frio para uma concentração final de 2%. Misture bem e cubra cada poço de uma placa de 6 poços com 1 mL da solução de matriz diluída.
  3. Incubar as placas revestidas de matriz de membrana do porão à temperatura ambiente (RT) por pelo menos 3 h ou a 4 °C durante a no....

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Resultados

Apresentado aqui é um protocolo melhorado para a manutenção e expansão da cultura do tipo unicelular de hESCs e sua diferenciação eficiente em células progenitoras neurais, que posteriormente se diferencia em várias linhagens neurais a jusante, incluindo neurônios dopaminérgicos e astrócitos.

Imagens representativas de contraste de fase mostram morfologia celular em diferentes etapas durante a adaptação de hESCs tipo colônia para a cultura do tipounicelular( Figur.......

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Discussão

Métodos escaláveis e eficientes para a diferenciação de hESCs em várias linhagens e a geração de número suficiente de células diferenciadas são critérios importantes para o rastreamento de medicamentos e terapia com células-tronco. Vários métodos de passagem de células únicas foram publicados, nos quais as células são cultivadas na presença de inibidor de ROCHA ou outras pequenas moléculas para melhorar a sobrevivência, mas os produtos finais desses métodos de cultura são os hESCs tipo colônia17,<.......

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Divulgações

Os autores declaram nenhum conflito de interesses.

Agradecimentos

Agradecemos ao Dr. Carl D. Bortner (NIEHS) por sua ajuda na análise facs. Esta pesquisa contou com o apoio do Programa de Pesquisa Intramural do Instituto Nacional de Ciências da Saúde Ambiental, dos Institutos Nacionais de Saúde, Z01-ES-101585 à AMJ.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
35 mm m-pratosibidi81156Placa de cultura de células
Placas de 6 poçosCorning3516
AccutaseInnovative Cell TechnologiesAT104-500Solução de desprendimento de células
Activin AR& D sistema338-AC-050
Ácido AscórbicoSigma AldrichA4403
B27 suplementoThermo Fisher17504044
suplemento B27 (-Vit A)Thermo Fisher12587010
BDNFApplied Biological MaterialsZ100065
bFGFPeprotech100-18C
CentrifugadorDAMON/ICE428-6759
Incubadora de CO2Thermo Fisher4110
Corning hESC-qulified Matrix (Magrigel)Corning354277Matriz de membrana basal (usada para a maior parte do protocolo aqui)
Cryostor CS 10Stemcell Technologies7930Solução de congelamento de células
DispaseStemcell Technologies7923
DMEMThermo Fisher10569-010
DMEM/F12Thermo Fisher10565-018
DorsomorphinTocris3093
EGFPeprotechAF-100-16A
Soro Bovino FetalFisher ScientificSH3007003HI
FGF8Materiais Biológicos AplicadosZ101705
GDNFApplied Biological MaterialsZ101057
Geltrex matrixThermo FisherA1569601Matriz de membrana do porão
GlutaMaxThermo Fisher35050061Suplemento de glutamina,
linha de células-tronco embrionárias humanas 100X H9 (WA09)WiCellWA09
Heregulin b-1Peprotech100-3
IGFPeprotech100-11
Knockout DMEMThermo Fisher10829018
Knockout Serum ReplacementThermo Fisher10828028
Laminin SigmaAldrich L2020
mTeSR1Stemcell Technologies85850hESC meio de cultura
N2 suplemento ThermoFisher17502001
NEAAThermo Fisher11140050
NeurobasalThermo Fisher21103049
Poli-L-ornitinaSigma AldrichP3655
Inibidor de ROCKTocris1254
SB431542Tocris1614
SHHMateriais Biológicos AplicadosZ200617
Meio progenitor neural StemdiffStemcell Technologies5833Meio de expansão NPC

Referências

  1. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).
  2. Rosler, E. S., et al. Long-term culture of human embryonic stem cells in feeder-free conditions. Developmental Dynamics. 229....

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Reimpressões e permissões

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