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Visualizando o cérebro em desenvolvimento em zebrafish vivo usando Brainbow e Imagem Confocal de lapso de tempo

DOI:

10.3791/60593

March 23rd, 2020

In This Article

Summary

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A imagem in vivo é uma ferramenta poderosa que pode ser usada para investigar os mecanismos celulares subjacentes ao desenvolvimento do sistema nervoso. Aqui descrevemos uma técnica para usar microscopia confocal de lapso de tempo para visualizar um grande número de células multicoloridas com rótulo barco-íris em tempo real dentro do sistema nervoso zebrafish em desenvolvimento.

Abstract

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O desenvolvimento do sistema nervoso vertebrado requer uma coordenação precisa de comportamentos e interações celulares complexos. O uso de técnicas de imagem in vivo de alta resolução pode fornecer uma janela clara para esses processos no organismo vivo. Por exemplo, a divisão de células e sua descendência pode ser seguida em tempo real à medida que o sistema nervoso se forma. Nos últimos anos, os avanços técnicos em técnicas multicoloridas têm ampliado os tipos de questões que podem ser investigadas. A abordagem multicolor Brainbow pode ser usada não apenas para distinguir entre células semelhantes, mas também para codificar vários clones diferentes de células relacionadas que cada um deriva de uma célula progenitora. Isso permite uma análise de linhagem multiplex de muitos clones diferentes e seus comportamentos simultaneamente durante o desenvolvimento. Aqui descrevemos uma técnica para usar microscopia confocal de lapso de tempo para visualizar um grande número de células multicoloridas com rótulo sarco-íris ao longo do tempo real dentro do sistema nervoso zebrafish em desenvolvimento. Isso é particularmente útil para acompanhar interações celulares entre células como células, que são difíceis de rotular diferencialmente usando cores tradicionais orientadas por promotores. Nossa abordagem pode ser usada para rastrear relações de linhagem entre vários clones diferentes simultaneamente. Os grandes conjuntos de dados gerados com essa técnica fornecem informações ricas que podem ser comparadas quantitativamente entre manipulações genéticas ou farmacológicas. Em última análise, os resultados gerados podem ajudar a responder perguntas sistemáticas sobre como o sistema nervoso se desenvolve.

Introduction

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Nas fases iniciais do desenvolvimento, grupos de células progenitoras especializadas se dividem repetidamente em zonas proliferativas, produzindo diversos conjuntos de células filhas. As células nascidas durante esse período de desenvolvimento se diferenciarão e viajarão para formar os órgãos nascentes. No sistema nervoso, progenitores como glia radial dão origem a neurônios imaturos em zonas ventriculares. À medida que os neurônios migram para longe dos ventrículos e amadurecem, o tecido em expansão eventualmente forma as estruturas altamente complexas do cérebro11,2,,3....

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Protocol

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Os procedimentos envolvendo animais foram aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC) da Faculdade Lewis & Clark.

1. Microinjeção de Embriões de Zebrafish

  1. Configurar tipo selvagem, zebrafish adulto em tanques de acasalamento segregados por sexo na tarde anterior à realização de microinjeções39,40.
  2. Prepare a solução de DNA na manhã das microinjeções. Diluir hsp:Zebrabow11 DNA plasmático para uma concentração de ~10 ng/μL em 0,1 mM KCl, juntamente com 2,5% de vermelho fenol e 3,75U Cre recombinação enzim....

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Results

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Esta seção ilustra exemplos de resultados que podem ser obtidos usando a abordagem de imagem de lapso de tempo multicolor in vivo descrita aqui. Mostramos que os clones codificados por cores brainbow de células na zona ventricular proliferativa do cérebro-zebrafish em desenvolvimento14 (Figura 1).

Tipicamente, quando as células rotuladas por Brainbow eram dispostas ao longo de uma fibra radial particular, elas compartilhavam a mesma cor

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Discussion

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Este protocolo descreve um método para visualizar clones de células progenitoras e neurônios no cérebro-zebrafish em desenvolvimento e segui-los in vivo usando Brainbow e microscopia confocal de lapso de tempo11. A principal vantagem deste protocolo em comparação com estudos in vitro ou ex vivo é a capacidade de observar diretamente a zona proliferativa do cérebro vertebrado em seu meio natural ao longo do tempo. Esta técnica baseia-se em estudos anteriores que rotularam um único clone usando veto.......

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Disclosures

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Os autores não têm nada para revelar.

Acknowledgements

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Agradecemos a Y. A. Pan, J. Livet e Z. Tobias por contribuições técnicas e intelectuais. Este trabalho foi apoiado pela National Science Foundation (Prêmio 1553764) e pelo M.J. Murdock Charitable Trust.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Pipeta de transferência de 1,5 mL (ponta fina)Globe Scientific, Inc.134020
1-fenil-2-tioureia (PTU)Alfa AesarL06690Diluído a 0,2 mM em E3 para prevenir a pigmentação do embrião
Tubos cônicos de 50 mLCorning352070Para embriões que chocam o calor
Linha de pesca de nylon de 6 lbSecureLineNMT250Para fazer manipuladores de embriões
Pipeta de transferência de 7,5 mLGlobe Scientific, Inc.135010
CaCl2SigmaC3881Para
cotonetesPuritan867-WC SEM COLAPara fazer manipuladores de embriões
Cre recombinaseNew England BiolabsM0298M
Banho seco digitalGenemate490016-616Usado para armazenar LMA a 42 ° C
de dissecação de epifluorescência
Tubos capilares de vidroWorld Precision InstrumentsTW100F-4
IncubadoraForma Científica3158Para manter embriões a 28 &graus; C
Moldes de placa de injeçãoFerramentas de ciência adaptáveisTU-1
Isotemp banho-mariaFisher Scientific2320Para embriões de choque térmico
KClAMRESCO0395Para E3 e para solução de DNA para injeções
Microscópio confocal de varredura a laserZeissLSM710
LE agaroseGenemateE3120Para criar placas de injeção de agarose
Baixo ponto de fusão de agarose (LMA)AMRESCOJ234
Tanques de acoplamentoAquaneering, Inc.
azul de metilenoSigmaM9140para E3
MgSO4Sigma9397para micromanipulador
E3 Instrumentos de precisão mundialM3301
Extrator de micropipetaSutter Instrument Co.P-97
MS-222 Tricaine-SWestern Chemical, Inc.Estoque feito a 4 mg/mL em água de osmose reversa (RO) e, em seguida, adicionado gota a gota a E3 até a concentração final de 0,2 mM para anestesiar embriões
NaClJ.T. Baker4058-01Para
placas de Petri E3 (90 mm, 60 mm)Genesee Scientific32-107GPara abrigar embriões e criar câmara de imagem (60 mm)
Vermelho de fenolSigmaP0290
Marcadoresde anel de ponto macioTrevo Needlecraft, Inc.354Para criar câmara de imagem com placa de Petri
Super cola (controle Ultra gel)Loctite1363589Para fazer manipuladores de embriões Agulhas
seringaBeckton DickinsonBD329412Para descorionar embriões
E3 Escopo ZHCT100 de

References

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  1. Lyons, D. A., Guy, A. T., Clarke, J. D. W. Monitoring neural progenitor fate through multiple rounds of division in an intact vertebrate brain. Development. 130, 3427-3436 (2003).
  2. Noctor, S. C., Flint, A. C., Weissman, T. A., Dammerman, R. S., Kriegstein, A. R.

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Brainbow ImagingTime lapse ConfocalZebrafish Nervous SystemNeural Progenitor CellsClonal Lineage AnalysisMulticolor FluorescenceIn Vivo ImagingCell Division TrackingApoptosis DetectionInterkinetic Nuclear Migration

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