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Artigo de método

Knockdown estável de genes codificando proteínas matrizes extracelulares na linha célula do mioblasto C2C12 usando pequeno-hairpin (sh)RNA

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DOI:

10.3791/60824

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12 de fevereiro de 2020

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Neste artigo

Resumo

Fornecemos um protocolo para derrubar genes que codificam proteínas de matriz extracelular (ECM) em mioblastos C2C12 usando rNA de pino pequeno (sh). Visando o ADAMTSL2 como exemplo, descrevemos os métodos para a validação da eficiência de knockdown no nível mRNA, proteína e celular durante o mioblasto C2C12 à diferenciação do miotubo.

Resumo

As proteínas de matriz extracelular (ECM) são cruciais para o desenvolvimento muscular esquelético e homeostase. A derrubada estável da codificação de genes para proteínas ECM em mioblastos C2C12 pode ser aplicada para estudar o papel dessas proteínas no desenvolvimento muscular esquelético. Aqui, descrevemos um protocolo para esgotar a proteína ECM ADAMTSL2 como exemplo, usando rna de pino pequeno (sh) em células C2C12. Após a transfecção de plasmídeos shRNA, as células estáveis foram selecionadas em lote usando puromicina. Descrevemos ainda a manutenção dessas linhas celulares e a análise penópeica via expressão mRNA, expressão proteica e diferenciação C2C12. As vantagens do método são a geração relativamente rápida de células de knockdown C2C12 estáveis e a diferenciação confiável das células C2C12 em miotubos multinucleados após o esgotamento do soro no meio da cultura celular. A diferenciação das células C2C12 pode ser monitorada por microscopia de campo brilhante e medindo os níveis de expressão de genes marcadores canônicos, como MioD, miogenina ou cadeia pesada de miosina (MyHC) indicando a progressão da diferenciação do mioblasto C2C12 em miotubos. Em contraste com a derrubada transitória de genes com RNA de pequeno interferção (si), genes que são expressos mais tarde durante a diferenciação do C2C12 ou durante o amadurecimento do miotubo podem ser alvo de forma mais eficiente, gerando células C2C12 que expressam shRNA. Limitações do método são uma variabilidade nas eficiências de knockdown, dependendo da shRNA específica que pode ser superada usando estratégias de nocaute genético baseadas no CRISPR/Cas9, bem como potenciais efeitos fora do alvo do shRNA que devem ser considerados.

Introdução

As proteínas de matriz extracelular (ECM) fornecem suporte estrutural para todos os tecidos, mediam a comunicação celular-célula e determinam o destino celular. A formação e remodelação dinâmica do ECM são, portanto, fundamentais para manter a homeostase tecidual e órgão1,2. Variantes patológicas em vários genes codificando proteínas ECM dão origem a distúrbios musculoesqueléticos com fenótipos que vão desde distrofias musculares até construção pseudomouscular3,4. Por exemplo, variantes patogênicas em ADAMTSL2 causam a desordem musculoesquelét....

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Protocolo

1. Preparando o DNA shRNA Plasmid de Escherichia coli

  1. Geração de colônias bacterianas clonais carregando os plasmídeos shRNA
    1. Obtenha estoques de glicerol de E. coli carregando plasmídeos shRNA específicos para alvos e um plasmídeo de controle de fontes comerciais (Tabela de Materiais).
      NOTA: Foram utilizados três plasmídeos diferentes de shRNA, visando diferentes regiões da murina Adamtsl2 mRNA. Um shRNA foi selecionado para atingir a região 3'-untranslated (3'UTR) de Adamtsl2 para facilitar experimentos de resgate com plasmídeos de expressão codificando recombinante full-length ADAMTSL2 ou domí....

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Resultados

A seleção de C2C12 resistente à puromicina pode ser alcançada em 10-14 dias após a transfecção devido à eliminação eficiente de células não resistentes, ou seja, não transfecdas(Figura 1B). Normalmente, mais de 80% das células se desprendem da cultura celular e essas células são removidas durante a manutenção de células rotineiras. As células C2C12 resistentes à puromicina expressando o controle (mexido) shRNA mantêm a morfologia celular alongada em forma de eixo e alongada .......

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Discussão

Descrevemos aqui um protocolo para o knockdown estável das proteínas ECM em mioblastos C2C12 e para análise fenotipico da diferenciação dos mioblastos C2C12 em miotubos. Vários fatores determinam o resultado do experimento e precisam ser considerados com cuidado. Manter células C2C12 na fase proliferante é um passo fundamental para manter as células C2C12 no estado precursor do mioblasto. Manter a capacidade das células C2C12 de diferenciar consistentemente em miotubos depende i) do número de passagem das células, ii) a .......

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

D.H. é apoiado pelo Instituto Nacional de Saúde (Instituto Nacional de Artrite e Doenças Musculoesqueléticas e da Pele, NIAMS, número de subvenção AR070748) e financiamento de sementes do Departamento de Ortopedia de Leni & Peter W. May, Icahn School of Medicine em Mt. Sinai.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
AcetonaFisher Chemical191784
AgarFisher BiorreagentsBP1423
AmpicilinaFisher BioreagentsBP1760-5
Contador de células automatizado Countesse IIInvitrogenA27977
Bradford ReagentThermo ScientificP4205987
C2C12 célulasATCCA câmara CRL-1772
deslizaInvitrogenC10283
ClorofórmioFisher Chemical183172
DMEMGIBCO11965-092
DMSOFisher BioreagentsBP231-100
DNase I (grau de amplificação)Invitrogen18068015
Soro bovino fetalVWR97068-085
GAPDHEMD MilliporeMAB374
GlicinaVWR Life Sciences19C2656013
Anticorpo secundário anti-rato de cabra (IRDYE 800CW)Li-CorC90130-02
Anticorpo secundário de camundongo anti-cabra (vermelho de rodamina)Jackson Immune Research133389
HClFisher ChemicalA144S
Incubadora (Shaker)Denville Scientific Corporation1704N205BC105
MercaptoetanolAmresco, VWR Life Sciences2707C122
Kit de extração de plasmídeo MidiprepQiagen12643
Miosina 4 (cadeia pesada de miosina)Invitrogen14-6503-82
Meio de montagemInvitrogen2086310
NaClVWR Life Sciences241
surfactante/detergente não iónicoVWR Life Sciences18D1856500
ParaformaldeídoMP199983
PBSFisher BiorreagentesBP399-4
PEIPolysciences23966-1
Penicilina/estreptomicina antibióticosGIBCO15140-122
Corning353003Petridish
Fisherbrand149569C
Comprimidos de coquetel inibidores de proteaseRoche33576300
PuromicinaFisher ScientificBP2956100
PCR (tempo real)Applied Biosystems4359284
Reaction tubosEppendorf22364111
Reverse Transcription Master MixApplied Biosystems4368814
tampão RIPAThermo ScientificTK274910
sh control plasmídeoSigma-Aldrich07201820MN
sh 3086 plasmídeoSigma-AldrichTRCN0000092578
sh 972 plasmídeoSigma-Aldrich
sh 1977 plasmídeoSigma-AldrichTRCN0000092582
Espectrofotômetro (Nanodrop)Thermo ScientificNanoDrop One C
SYBR Green Reagent Master MixApplied Biosystems743566
Ácido tricloroacéticoAcros Organics30145369
Reagente TrizolAmbion
Trypan blueGIBCO15250-061
TriptonaFisher BiorreagentsBP1421
Tripsina EDTA 0,25%Gibco-Life Technology Corporation2085459
Água (tratada com DEPC e livre de nuclease)Biorreagentes Fisher186163
Aparelho de Western blottingBioradMini Protean Tetra Cell
Extrato de leveduraFisher BioreagentsBP1422
Tubos de polipropileno TRCN0000092579254707

Referências

  1. Tanzer, M. L. Current concepts of extracellular matrix. Journal of Orthopaedic Science: Official Journal of the Japanese Orthopaedic Association. 11 (3), 326-331 (2006).
  2. Hubmacher, D., Apte, S. S. The biology of the extrace....

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Reimpressões e permissões

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