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Artigo de método

Caracterização da diferenciação in vitro dos queratinócitos primários humanos pela análise do RNA-Seq

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DOI:

10.3791/60905

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16 de maio de 2020

 ,  ,  , 

* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

Apresentado aqui é um procedimento stepwise para diferenciação in vitro de queratinócitos primários humanos por inibição de contato seguido de caracterização a nível molecular pela análise de RNA-seq.

Resumo

Os queratinócitos primários humanos são frequentemente usados como modelos in vitro para estudos sobre diferenciação epidérmica e doenças relacionadas. Métodos têm sido relatados para diferenciação in vitro de queratinócitos cultivados em modos submersos (2D) bidimensionais (2D) usando várias condições de indução. Descrito aqui é um procedimento para método de diferenciação de queratinócito in vitro 2D por inibição de contato e subsequente caracterização molecular por RNA-seq. Resumindo, os queratinócitos são cultivados em meio de queratinócito definido complementado com fatores de crescimento até que estejam totalmente confluentes. A diferenciação é induzida por contatos próximos entre os queratinócitos e estimulada pela exclusão dos fatores de crescimento no meio. Utilizando análises de RNA-seq, mostra-se que ambos os queratinócitos diferenciados exibem assinaturas moleculares distintas durante a diferenciação e 2) o padrão dinâmico de expressão genética se assemelha em grande parte às células durante a estratificação epidérmica. Quanto à comparação com a diferenciação normal de queratinócitos, os queratinócitos portadores de mutações do fator de transcrição p63 apresentam morfologia alterada e assinaturas moleculares, consistentes com seus defeitos de diferenciação. Em conclusão, este protocolo detalha as etapas para a diferenciação de queratinócitos in vitro 2D e sua caracterização molecular, com ênfase na análise bioinformática dos dados RNA-seq. Como a extração de RNA e os procedimentos de RNA-seq foram bem documentados, não é o foco deste protocolo. O procedimento experimental de diferenciação de queratinócito in vitro e pipeline de análise bioinformática pode ser usado para estudar eventos moleculares durante a diferenciação epidérmica em queratinócitos saudáveis e doentes.

Introdução

Os queratinócitos primários humanos derivados da pele humana são frequentemente usados como modelo celular para estudar a biologia da epiderme1,2,3,4. A estratificação da epiderme pode ser modelada pela diferenciação de queratinócitos, seja de forma monocamada submersa 2D ou no modelo organotípico 3D air-lift2,3,5,6,7. Embora os modelos 3D tenham se tornado cada vez mais important....

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Protocolo

Biópsias de pele foram retiradas do tronco de voluntários saudáveis ou pacientes com mutações p63, para configurar a cultura primária de queratinócitos. Todos os procedimentos relativos à criação de queratinócitos primários humanos foram aprovados pelo comitê ético do Centro Médico nijmegen da Universidade Radboud ("Commissie Mensgebonden Onderzoek Arnhem-Nijmegen"). O consentimento informado foi obtido.

1. Diferenciação de queratinócitos primários humanos por inibição de contato

  1. Prepare o meio de crescimento de queratinócito (KGM) do meio basal de querotinócito(Tabela de Materiais)quando necessário.
  2. Faç....

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Resultados

Diferenciação normal de queratinócitos e análise RNA-seq
Neste experimento, foram utilizadas linhas de queratinócitos derivadas de cinco indivíduos para diferenciação e análises de RNA-seq. A Figura 1 resume o procedimento experimental de diferenciação e os resultados da análise do RNA-seq. Uma visão geral dos procedimentos de diferenciação in vitro de queratinócitos normais e mudanças de morfologia celular durante a diferenciação são ilustradas na Fi.......

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Discussão

Este trabalho descreve um método para induzir a diferenciação de queratinócitos humanos e a caracterização subsequente utilizando análises de RNA-seq. Na literatura atual, muitos estudos sobre diferenciação de queratinócitos humanos utilizam dois outros métodos, com alta concentração de cálcio ou com soro como métodos para induzir diferenciação2,3,23. Um relatório anterior comparou cuidadosamente esses três métodos diferentes

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Esta pesquisa foi apoiada pela Organização Holandesa de Pesquisa Científica (NWO/ALW/MEERVOUD/836.12.010, H.Z.) (NWO/ALW/Open Competition/ALWOP 376, H.Z., J.G.A.S.); Bolsa da Universidade Radboud (H.Z.); e bolsa do Conselho de Bolsas chinês 201406330059 (J.Q.).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Bioanalyzer 2100AgilentG2929BA
Extrato de hipófise bovina (BPE)LonzaParte do bulletKit
CFX96 Sistema em tempo realqPCRBio-Rad
salina tamponada com fosfato de Dulbecco (DPBS)Sigma-AldrichD8537
Fator de crescimento epidérmico (EGF)LonzaParte do bulletKit
Etanolamina >= 98%Sigma-AldrichE9508
Chips de DNA de alta sensibilidadeAgilent5067-4626
HidrocortisonLonzaParte do bulletKit Insulina
LonzaParte do bulletKit
iQ SYBR Green KitBioRad170-8886
iScript cDNA synthesisBio rad1708890
KAPA Library Quant KitRoche07960255001Kit de medição de baixa concentração
KAPA RNA HyperPrep Kit com RiboEraseRocheKK8540Kit RNAseq
KGM Gold Keratinocyte Growth Medium BulletKitLonza192060
NanodropdeNovixDS-11 FX (modelo)Nanodrop e Qbit para medições de DNA e RNA
Códigos de barras NEXTflex DNA -24IllumniaNOVA-5141036 bp longos primers
Penicilina-EstreptomicinaGibco15140122
RNA Pico ChipAgilent5067-1513
Máquina de Solução

Referências

  1. Hardman, J. A. Skin equivalents for studying the secrets of skin: from development to disease. British Journal of Dermatology. 173 (2), 320-321 (2015).
  2. Borowiec, A. S., Delcourt, P., Dewailly, E., Bidaux, G. Optimal differentiation o....

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Reimpressões e permissões

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