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Artigo de método

Auto-montagem de membranas lipídicas híbridas dopadas com moléculas orgânicas hidrofóbicas na interface água/ar

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DOI:

10.3791/60957

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1 de maio de 2020

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Neste artigo

Resumo

Relatamos um protocolo para a produção de uma membrana lipídica híbrida na interface água/ar dopando a bicamada lipídica com moléculas de cobre (II) 2,9,16,23-tetra-tert-butil-29H,31H-phthalocyanine (CuPc). A membrana lipídica híbrida resultante tem uma estrutura de sanduíche lipídida/CuPc/lipídio. Este protocolo também pode ser aplicado à formação de outros nanomateriais funcionais.

Resumo

Devido às suas propriedades únicas, incluindo uma espessura ultrathin (3-4 nm), resistividade ultra-alta, fluidez e capacidade de auto-montagem, bicamadas lipídicas podem ser facilmente funcionais e têm sido usadas em várias aplicações, como bio-sensores e bio-dispositivos. Neste estudo, introduzimos uma molécula orgânica planar: cobre (II) 2,9,16,23-tetra-tert-butil-29H,31H-phthalocyanine (CuPc) para dopar membranas lipídicas. A membrana híbrida CuPc/lipídica se forma na interface água/ar por auto-montagem. Nesta membrana, as moléculas de CuPc hidrofóbicas estão localizadas entre as caudas hidrofóbicas de moléculas lipídicas, formando uma estrutura de sanduíche lipídico/CuPc/lipídio. Curiosamente, um bicamador lipídado híbrido estável no ar pode ser prontamente formado transferindo a membrana híbrida para um substrato Si. Relatamos um método simples para incorporar nanomateriais em um sistema de bicamadas lipídicas, o que representa uma nova metodologia para a fabricação de biosensores e biodispositivos.

Introdução

Como estruturas essenciais das membranas celulares, o interior das células são separados do exterior por um sistema lipídetivo bicamada. Este sistema consiste em fosfolipídios anfífilicos, que são compostos por ésterso fosfórico hidrofílico "cabeças" e ácidos graxos hidrofóbicos "caudas". Devido à notável fluidez e capacidade de auto-montagem de bicamadas lipídicas em ambiente aquoso1,2, bicamadas lipídicas artificiais podem ser formadas usando métodos simples3,4. Vários tipos de proteínas de membrana, como canais de íons, receptores de membrana e enzi....

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Protocolo

1. Preparação de uma solução híbrida

  1. Lave quatro frascos de vidro descartáveis de 4 mL e tampas de parafuso (com selos revestidos de PTFE) em um banho ultrassônico por 10 min em água destilada (purificada com um sistema de filtragem), seguida por etanol e clorofórmio, respectivamente. Seque os frascos de vidro e as tampas em um fluxo de gás nitrogênio.
  2. Em um porta-luvas anaeróbica, prepare uma solução de estoque cupc (10 mg/mL) em um frasco de vidro lavado dissolvendo CuPc em pó em clorofórmio.
  3. Filtre a solução CuPc através de uma membrana de politetrafluoroetileno de 0,2 μm (PTFE).
  4. Armazene a solução filtrada em um frasco de vi....

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Resultados

A membrana como formada tem uma cor azul claro uniforme devido à presença de moléculas de CuPc. A área da membrana colorida é normalmente vários centímetros quadrados. Na Figura 1A e Figura 1B,mostramos uma imagem microscópica e uma imagem de microscópio de força atômica (AFM) (incluindo um perfil de altura) da membrana lipídica híbrida em um substrato Si. Na imagem AFM, a membrana no canto superior esquerdo é grossa, com espessura de 79,4 nm e que no canto infe.......

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Discussão

Na solução precursora da membrana híbrida, um solvente orgânico misto (clorofórmio e hexano) em vez de clorofórmio puro é usado para dissolver lipídios e CuPc. Se o clorofórmio puro for usado, a densidade da solução precursora seria maior que a água. Portanto, é altamente provável que a solução afundaria no fundo da água em vez de se espalhar na superfície da água. Adicionar hexano, um solvente de baixa densidade, à solução precursora, garante que a solução flutuará sobre a superfície da água e formará uma membrana híbri.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado pelo programa CREST da Agência de Ciência e Tecnologia do Japão (JPMJCR14F3) e pela Grant in-Aids da Japan Society for the Promotion of Science (19H00846 e 18K14120). Este trabalho foi realizado parcialmente no Laboratório de Nanoeletrônica e Spintronics, Instituto de Pesquisa de Comunicação Elétrica da Universidade de Tohoku.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
ClorofórmioWako  Produtos Químicos033-08631
CuPcSigma-Aldrich423165
DPhPcAvanti Polar Lipids850356C
Frascos de vidro com tampa de roscaNichiden-Rike Glass Co., Ltd6-29801
HexaneWako  Produtos Químicos084-03421
Filtros de membranaMerck Millipore Ltd.
Micro-seringaHamilton80530
Bomba peristálticaTokyo Rikakikai Co., Ltd.
misturador de vórticeScientific Industries, Inc.SI-0286
R8CA4283611914199

Referências

  1. Israelachvili, J. N., Mitchell, D. J., Ninham, B. W. Theory of self-assembly of lipid bilayers and vesicles. Biochimica Et Biophysica Acta-Biomembranes. 470 (2), 185-201 (1977).
  2. Venable, R. M., Zhang, Y., Hardy, B. J., Pastor, R. W.

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Reimpressões e permissões

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