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Artigo de método

Otimização para Sequenciamento e Análise de Amostras de RNA FFPE-RNA degradadas

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DOI:

10.3791/61060

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8 de junho de 2020

* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

Este método descreve as etapas para melhorar a qualidade e a quantidade de dados sequenciais que podem ser obtidos a partir de amostras de RNA incorporadas à parafina fixa-formalina (FFPE). Descrevemos a metodologia para avaliar com mais precisão a qualidade das amostras de FFPE-RNA, preparar bibliotecas de sequenciamento e analisar os dados das amostras de FFPE-RNA.

Resumo

A análise da expressão genética pelo sequenciamento de RNA (RNA-seq) permite insights únicos em amostras clínicas que podem potencialmente levar à compreensão mecanicista da base de várias doenças, bem como mecanismos de resistência e/ou suscetibilidade. No entanto, os tecidos FFPE, que representam o método mais comum para preservar a morfologia tecidual em amostras clínicas, não são as melhores fontes para a análise de perfil de expressão genética. O RNA obtido a partir dessas amostras é muitas vezes degradado, fragmentado e quimicamente modificado, o que leva a bibliotecas de sequenciamento subótimo. Por sua vez, estes geram dados de sequência de baixa qualidade que podem não ser confiáveis para análise de expressão genética e descoberta de mutação. Para aproveitar ao máximo as amostras de FFPE e obter os melhores dados possíveis a partir de amostras de baixa qualidade, é importante tomar certas precauções enquanto planeja o projeto experimental, preparando bibliotecas de sequenciamento e durante a análise de dados. Isso inclui o uso de métricas apropriadas para controle preciso de qualidade de amostra (QC), identificando os melhores métodos para várias etapas durante a geração da biblioteca de sequenciamento e o QC cuidadoso da biblioteca. Além disso, a aplicação de ferramentas e parâmetros de software corretos para análise de dados de sequência é fundamental para identificar artefatos em dados RNA-seq, filtrar a contaminação e leituras de baixa qualidade, avaliar a uniformidade da cobertura genética e medir a reprodutibilidade dos perfis de expressão genética entre as réplicas biológicas. Essas etapas podem garantir alta precisão e reprodutibilidade para o perfil de amostras de RNA muito heterogêneas. Aqui descrevemos as várias etapas para a amostra QC, preparação da biblioteca e QC, sequenciamento e análise de dados que podem ajudar a aumentar a quantidade de dados úteis obtidos a partir de RNA de baixa qualidade, como o obtido a partir de tecidos FFPE-RNA.

Introdução

O uso de abordagens de sequenciamento de última geração nos permitiu obter uma riqueza de informações de vários tipos de amostras. No entanto, amostras antigas e mal preservadas permanecem inviáveis para os métodos comumente utilizados de geração de dados de sequência e muitas vezes requerem modificações em protocolos bem estabelecidos. Os tecidos FFPE representam um tipo de amostra que tem sido amplamente utilizado para as amostras clínicas1,,2,3. Enquanto a preservação do FFPE mantém a morfologia tecidual, os ácidos nucleicos nos tecidos FFPE geralmente exibem uma ampla gam....

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Protocolo

1. Avaliação de quantidade e qualidade do RNA

  1. Selecione as amostras de FFPE de acordo com critérios predefinidos e extraia RNA utilizando um método apropriado (por exemplo, kit de extração de ácido FFPE-nuclei, Tabela de Materiais).
    NOTA: Existem vários métodos diferentes disponíveis para extração ffpe-RNA, incluindo os métodos mais novos de microdisseção que podem trabalhar com muito pouco tecido e extrair RNA de boa qualidade12,,13,14.
  2. O máximo de cuidado deve ser tomado para preservar a integridade do RNA em todas as etapas. Isso inc....

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Resultados

A metodologia descrita acima foi aplicada a 67 amostras de FFPE armazenadas sob uma variedade de condições diferentes durante 7-32 anos (o tempo médio de armazenamento amostral foi de 17,5 anos). Os resultados de conjunto de dados e análise aqui apresentados foram previamente descritos e publicados em Zhao et al.11. Ao verificar a qualidade da amostra descrita anteriormente (ou seja, traços de exemplo na Figura 2), o DV100 foi considerado mais útil do que o.......

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Discussão

O método descrito aqui descreve as principais etapas necessárias para obter bons dados de sequência de amostras de FFPE-RNA. Os principais pontos a serem considerados com este método são: (1) Certifique-se de que o RNA seja preservado da melhor forma possível após a extração, minimizando os ciclos de manuseio e congelamento e descongelamento da amostra. Alíquotas separadas do QC são muito úteis. (2) Use uma métrica QC que seja melhor para o conjunto amostral dado. Os valores rin e DV200 muitas vezes não são út.......

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Divulgações

Esse trabalho foi financiado pelo Instituto Nacional do Câncer (NCI), Instituto Nacional de Saúde (NIH). Leidos Biomedical Research, Inc. é a empreiteira de operações e suporte técnico do Laboratório Nacional de Pesquisa do Câncer de Frederick, que é totalmente financiado pelo NIH. Vários autores (YZ, MM, KT, YL, JS, BT) são afiliados à Leidos Biomedical Research, Inc., mas todos os autores são totalmente financiados pelo Instituto Nacional do Câncer, incluindo salários de autores e materiais de pesquisa. Leidos Biomedical Research, Inc. não forneceu salário para os autores (YZ, MM, KT, YL, JS, BT) ou material para o estudo, nem teve qualquer papel no desenho do estudo, coleta de dados, análise, decisão de publicar ou preparar o manuscrito.

Agradecimentos

Somos gratos à Dra. Danielle Carrick (Divisão de Controle do Câncer e Ciências Populacionais do Instituto Nacional de Câncer) por ajuda contínua, especialmente por iniciar este estudo, fornecendo-nos as amostras e sugestões úteis durante a análise de dados. Agradecemos sinceramente a todos os membros do Centro de Sequenciamento da CCR no Laboratório Nacional de Pesquisa do Câncer de Frederick por sua ajuda durante a preparação e sequenciamento da amostra, especialmente Brenda Ho pela assistência na amostra QC, Oksana German para a biblioteca QC, Tatyana Smirnova para executar os sequenciadores. Também gostaríamos de agradecer a Tsai-wei Shen e Ashley Walton no Sequenc....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
2100 BioanalyzerAgilentG2939BA
Agilent DNA 7500 KitAgilent5067-1506
Agilent Kit de DNA de Alta SensibilidadeAgilent5067-4626
Agilent RNA 6000 Nano KitAgilent5067-1511
AllPrep DNA/RNA FFPE KitQiagen80234
CFX96 Touch SystemKit dede Biblioteca 1855195
v2-IlluminaKapaBiosystemsKK4824
NEBProto Ultra II Direcional RNA Kit de Preparação para Biblioteca para IlluminaNew England BiolabsE7765Shttps://www.neb.com/protocols/2017/02/07/protocol-for-use-with-ffpe-rna-nebnext-rrna-depletion-kit
NEBPróximo Kit de Depleção de rRNA (Humano/Camundongo/Rato)New England BiolabsE6310L
NextSeq 500 Sistema de SequenciamentoIlluminaSY-415-1001NextSeq 500 Guia do sistema: https://support.illumina.com/content/dam/illumina-support/documents/documentation/system_documentation/nextseq/nextseq-500-system-guide-15046563-06.pdf
NextSeq PhiX Control KitIlluminaFC-110-3002
NSQ 500/550 Hi Output KT v2.5 (150 CYS)Illumina
10X Separador Magnético Genomics 10XGenomics120250
Rotator MultimixerVWR13916-822
C1000 Touch Termocicladorde 1851197Bio-Rad
Illumina20024907
Flow Illumina20024907
Cartucho tampão e cartucho de reagenteIllumina20024907
Solução de hidróxido de sódio (0,2N)Millipore SigmaSX0607D-6
TRIS-HCL Tampão 1,0M, pH 7,0Fisher Scientific50-151-871
Quantificação Bio-Rad20024907 Kit de reagentes de sequenciamento Pacote de células

Referências

  1. Carrick, D. M., et al. Robustness of Next Generation Sequencing on Older Formalin-Fixed Paraffin-Embedded Tissue. PLoS One. 10 (7), 0127353(2015).
  2. Hedegaard, J., et al.

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

Sequenciamento de RNAControle de Qualidade de AmostrasPreparação de BibliotecasAnálise de DadosAnálise de Componentes PrincipaisTriagem FastQCAlinhamento STAREstatísticas RSeQCRelatório Multi-QC