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Artigo de método

Observação microscópica da Dinâmica do Linfócito em Patches de Rat Peyer

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DOI:

10.3791/61568

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25 de junho de 2020

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Neste artigo

Resumo

Aqui, descrevemos um método preciso para coletar linfócitos toráclicos e observar a migração de linfócitos gut-tropic nos patches de Rato Peyer por 3 horas usando fotografia de lapso de tempo. Esta técnica pode esclarecer como a dinâmica dos linfócitos são afetadas em condições inflamatórias.

Resumo

Linfócitos ingênuos recirculam do sangue para os tecidos linfoides sob condição fisiológica e é comumente reconhecido como um fenômeno importante na imunidade intestinal. O estroma de órgãos linfoides secundários, como as manchas de Peyer (PPs) ou linfonodos mesentéricos, são onde linfócitos ingênuos sentem antígenos. Linfócitos ingênuos circulam pela corrente sanguínea para alcançar venules endoteliais elevados, o portal de entrada em PPs. Estima-se que alguns imunomoduladores influenciem a migração de linfócitos, mas a avaliação precisa da dinâmica da microcirculação é muito difícil, e estabelecer um método para observar a migração de linfócitos in vivo pode contribuir para o esclarecimento dos mecanismos precisos. Refinamos o método de coleta de linfócitos do ducto linfático e observação da dinâmica detalhada dos linfócitos gut-trópicos em PPs de ratos. Escolhemos microscopia de varredura a laser confocal para observar PPs de ratos in vivo e gravamos usando fotografia de lapso de tempo. Agora podemos obter imagens claras que podem contribuir para a análise da dinâmica do linfócito.

Introdução

As manchas de Peyer (PPs) consistem em centenas de folículos linfoides na álmina propria do intestino delgado. Os PPs são divididos em folículos, região interfollicular e centros germinais localizados na parte inferior dos folículos, onde linfócitos são estimulados pela apresentação de antígeno. Não há vasos linfáticos diferentes, e os antígenos invadem a órmina propria do lúmen intestinal através da camada celular epitelial. A região epitelial que cobre folículos linfoides é chamada de epitélio associado ao folículo, dentro do qual células M intercaladas especializadas captam antígenos mucosais. As células M tomam antígenos do lado luminal e os antígenos são então ca....

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Protocolo

O protocolo experimental foi aprovado pelo Comitê de Pesquisa Animal da National Defense Medical College (nº 16058). Os animais foram mantidos em chow de laboratório padrão (CLEA Japan Inc, Tóquio, Japão). Os animais de laboratório foram tratados de acordo com as diretrizes dos Institutos Nacionais de Saúde.

1. Coleta e separação de linfócitos

NOTA: Uma vez que os linfócitos devem ser frescos e não podem ser armazenados, eles devem ser coletados de ratos para cada experimento. Além disso, os linfócitos gut-tropic devem ser coletados diretamente do duto torácico onde circulam. Espera-se que todos os procedimentos se....

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Resultados

Coleta de linfócitos de linfáticos
Para preparar o rato para a canulação do ducto torácico, faça uma incisão no tenso ducto torácico como mostrado na Figura 1 e, em seguida, mantenha o rato na gaiola de um Bollman, como mostrado na Figura 2.

Quando os linfócitos são bem coletados, podemos obter cerca de 20 mL /6 h de fluido linfático contendo cerca de 107~108/mL linfócitos. Dos TDLs, 70% expre.......

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Discussão

Aqui descrevemos um protocolo para coletar linfócitos ingenuos e trópicos ingenuos e observar sua migração em PPs de ratos. Esses procedimentos podem revelar como os linfócitos se movem na microvasculatura dos PPs e possibilitar comparar visualmente sua dinâmica em uma condição normal ou medicada. A observação direta dessas dinâmicas tem muito mérito em obter uma pista para modificação imunológica por algumas drogas, embora o período observacional seja limitado a apenas algumas horas.

Menciona.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Esta pesquisa foi apoiada por subsídios da National Defense Medical College e de uma bolsa de pesquisa em Saúde e Ciências do Trabalho para pesquisas sobre doenças intratáveis do Ministério da Saúde, Trabalho e Bem-Estar, Japão.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Microscopia de varredura a laser comfocalA1R +Nikon
Carboxifluoresceína diacetato éster succinimidílicoThermo Fisher ScientificC1157
Hoechest 33342Thermo Fisher ScientificH3570
IsofluranoWako Pure Chemical Industries099-06571
RPMI 1640 médioGIBCO11875093
Texas Vermelho– dextranoThermo Fisher ScientificD1863

Referências

  1. Miura, S., Hokari, R., Tsuzuki, Y. Mucosal immunity in gut and lymphoid cell trafficking. Annals of Vascular Diseases. 5, 275-281 (2012).
  2. Stein, J. V., Nombela-Arrieta, C. Chemokine control of lymphocyte trafficking: a general overview. Immunology. 116, 1-....

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Reimpressões e permissões

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