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Artigo de método

Descelularização sem detergente do pâncreas humano para produção de matriz extracelular (MEC) solúvel

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DOI:

10.3791/61663

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4 de setembro de 2020

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Neste artigo

Aviso de errata

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Resumo

O protocolo descrito neste manuscrito explica as etapas para a fabricação de uma matriz extracelular solúvel (MEC) a partir do pâncreas humano. O pó de ECM solubilizado obtido através deste protocolo pode ser usado para a recapitulação do microambiente das ilhotas pancreáticas in vitro e, potencialmente, in vivo.

Resumo

O transplante de ilhotas (ITx) tem o potencial de se tornar o padrão de tratamento na medicina de reposição de células beta, mas seus resultados permanecem inferiores aos obtidos com o transplante de pâncreas inteiro. Os protocolos atualmente utilizados para o isolamento das ilhotas humanas estão sob escrutínio porque se baseiam na digestão enzimática do órgão, por meio da qual o pâncreas é demolido, suas conexões com o corpo são perdidas e as ilhotas são irreversivelmente danificadas. O dano das ilhotas é caracterizado por fatores críticos, como a destruição da matriz extracelular (MEC), que representa a estrutura 3D do nicho das ilhotas e cuja perda é incompatível com a eufisiologia das ilhotas. Os pesquisadores estão propondo o uso de andaimes baseados em ECM derivados do pâncreas de mamíferos para resolver esse problema e, finalmente, melhorar a viabilidade, função e vida útil das ilhotas. Os métodos atualmente disponíveis para obter esses andaimes são agressivos porque são em grande parte à base de detergente. Assim, propomos um novo método sem detergente que cria menos danos à ECM e pode preservar componentes críticos da ECM pancreática. Os resultados mostram que o protocolo de descelularização recém-desenvolvido permitiu a obtenção da depuração completa do DNA enquanto os componentes da ECM foram retidos. A MEC obtida foi testada quanto à citotoxicidade e encapsulada com ilhotas pancreáticas humanas que apresentaram comportamento celular positivo com secreção de insulina quando estimuladas com desafio de glicose. Coletivamente, propomos um novo método para a descelularização do pâncreas humano sem o uso de detergentes químicos iônicos e não iônicos convencionais. Este protocolo e o ECM obtido com ele podem ser úteis para aplicações in vitro e in vivo.

Introdução

O isolamento das ilhotas pancreáticas é um processo meticuloso realizado através da digestão enzimática das conexões entre as ilhotas e sua estrutura de suporte extracelular circundante. Essa destruição da matriz extracelular (MEC) é um dos fatores críticos na caracterização dos danos das ilhotas que ocorrem durante os processos de isolamento 1,2,3,4. A MEC peri-ilhota é um componente acelular essencial do pâncreas endócrino. É composto por proteínas e polissacarídeos, que interagem e se reticulam para forma....

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Protocolo

Este estudo de pesquisa foi aprovado pelo comitê de pesquisa humana do Wake Forest Baptist Medical Center. O pâncreas humano foi obtido eticamente de doadores de órgãos por meio do Carolina Donor Services. Os doadores de órgãos foram rastreados para doenças infecciosas relevantes para humanos, de acordo com os regulamentos da UNOS. Os órgãos foram recebidos em solução de preservação estéril, onde foram mantidos até o uso. Após a entrega ao laboratório, todos os órgãos foram inspecionados e amostras do pâncreas nativo foram coletadas para fins histológicos. Os órgãos foram então congelados e armazenados em condições estéreis a -20 °C a....

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Resultados

Amostras pancreáticas nativas e acelulares foram processadas para coloração histológica com H&E, MT e AB. A coloração H&E mostrou ausência completa de material nuclear e células, confirmando o sucesso da descelularização. As colorações MT e AB mostraram o arcabouço da MEC, destacando qualitativamente os componentes colágeno e estromal, respectivamente (Figura 1).

Este método permitiu a geração consistente de um pó de ECM a partir do pâncreas humano. Os tes.......

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Discussão

O objetivo deste trabalho foi desenvolver um protocolo de descelularização mais suave e sem detergente para produzir ECM pancreática. Foi dada atenção à preservação dos componentes da ECM do parênquima pancreático e à prevenção de uma exposição prolongada do tecido a detergentes químicos iônicos ou não iônicos convencionais durante o processo de descelularização.

O aspecto mais inovador do método de descelularização desenvolvido é evitar detergentes químicos i.......

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Divulgações

Não há interesses financeiros concorrentes a serem declarados por nenhum dos coautores.

Agradecimentos

Este projeto recebeu financiamento do Programa de Pesquisa e Inovação Horizonte 2020 da União Europeia sob o acordo de subvenção nº 646272. As ilhotas pancreáticas humanas foram obtidas dos Laboratórios Prodo, Aliso Viejo, CA 92656.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Garrafas de armazenamento de poliestireno de fácil aderência Corning 1L com tampas de 45 mmThermoFisher430518uso de recipiente para descelularização
Moinho criogênicoSPEX Certiprep6870-230
Desoxirribonuclease I do pâncreas bovinoSigma AldrichDN25
Água destiladaThermoFisher15230147
Falcon 50mL Cônico Tubos de centrífugaCorning352070
Pâncreas Humanoe
Insulina-ElisaMercodia10-1113-01
Cloreto de Magnésio, 1M, EstérilBio-World41320004-1
Pepsina da mucosa gástrica suína Bacia deSigma AldrichP7012-5G
sem Tampa, DeRoyalEstéril32-881
Tubos de cromatografia PolypreBio-rad731-1500Colunas de polipropileno
Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay KitInvitrogenP7589DNA Kit
SamplePrep Acessório de freezer/moinho de grande capacidadeSPEX6801Conjunto de frascos de moagem grande
Sephadex G-10 grânulosCytiva17001001Gel Resina
de filtraçãoKit cirúrgicona
UltraPur 0.5M EDTA, pH 8.0ThermoFisher15575020
UltraPur 1 M Tris-HCI Buffer, pH 7.5ThermoFisher15567027
UltraPure DNase-Free Água DestiladaThermoFisher10977023
Placenta

Referências

  1. Korpos, E., et al. The peri-islet basement membrane, a barrier to infiltrating leukocytes in type 1 diabetes in mouse and human. Diabetes. 62 (2), 531-542 (2013).
  2. Daoud, J., Petropavlovskaia, M., Rosenberg, L., Tabrizian, M.

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Reimpressões e permissões

Errata


Formal Correction: Erratum: Detergent-Free Decellularization of the Human Pancreas for Soluble Extracellular Matrix (ECM) Production
Posted by JoVE Editors on 12/10/2020. Citeable Link.

An erratum was issued for: Detergent-Free Decellularization of the Human Pancreas for Soluble Extracellular Matrix (ECM) Production. The author list was updated.

The author list was updated from:

Riccardo Tamburrini1,2,3, Deborah Chaimov1,3, Amish Asthana1,3, Kevin Enck3, Sean M. Muir4, Justine Mariam Aziz5, Sandrine Lablanche6, Emily Tubbs6, Alice A. Tomei7,8, Mark Van Dyke9, Shay Soker3, Emmanuel C. Opara3, Giuseppe Orlando1,3
1Department of Surgery, Wake Forest Baptist Medical Center,
2Department of General Surgery, PhD Program in Experimental Medicine, University of Pavia,
3Wake Forest Institute for Regenerative Medicine, Wake Forest School of Medicine,
4Wake Forest University College of Arts and Science,
5Wake Forest University School of Medicine,
6Laboratory of Fundamental and Applied Bioenergetics (LBFA), and Environmental and System Biology (BEeSy), Grenoble Alps University,
7Department of Biomedical Engineering, University of Miami,
8Diabetes Research Institute, University of Miami Miller School of Medicine,
9Department of Biomedical Engineering and Mechanics, School of Biomedical Engineering and Sciences, Virginia Polytechnic Institute and State University

to:

Riccardo Tamburrini1,2,3, Deborah Chaimov1,3, Amish Asthana1,3, Carlo Gazia3,4, Kevin Enck3, Sean M. Muir5, Justine Mariam Aziz6, Sandrine Lablanche7, Emily Tubbs7, Alice A. Tomei8,9, Mark Van Dyke10, Shay Soker3, Emmanuel C. Opara3, Giuseppe Orlando1,3
1Department of Surgery, Wake Forest Baptist Medical Center, 
2Department of General Surgery, PhD Program in Experimental Medicine, University of Pavia, 
3Wake Forest Institute for Regenerative Medicine, Wake Forest School of Medicine, 
4Department of Surgery, Tor Vergata University of Rome
5Wake Forest University College of Arts and Science, 
6Wake Forest University School of Medicine, 
7Laboratory of Fundamental and Applied Bioenergetics (LBFA), and Environmental and System Biology (BEeSy), Grenoble Alps University, 
8Department of Biomedical Engineering, University of Miami, 
9Diabetes Research Institute, University of Miami Miller School of Medicine, 
​10Department of Biomedical Engineering and Mechanics, School of Biomedical Engineering and Sciences, Virginia Polytechnic Institute and State University

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