Estratégia de análise de biopanning e bioinformática baseada em biosensor para a validação global de interações medicamentosas-proteínas

Summary

Este estudo teve como objetivo apresentar uma estratégia para identificar interações medicamentosa-peptídeos. A estratégia envolve o biopanning de peptídeos curtos que reconhecem drogas com base em um biosensor de microequilísã de quartzo-cristal (QCM), seguido de análise bioinformática para avaliação quantitativa das informações obtidas para o reconhecimento de medicamentos e anotação dos locais de ligação medicamentosa em proteínas.

Abstract

Receptores e proteínas enzimáticas são biomoléculas importantes que atuam como alvos vinculantes para pequenas moléculas bioativas. Assim, a validação rápida e global das interações medicamentosa-proteína é altamente desejável não apenas para compreender os mecanismos moleculares subjacentes à eficácia terapêutica, mas também para avaliar características medicamentosas, como adsorção, distribuição, metabolismo, excreção e toxicidade (ADMET) para uso clínico. Aqui, apresentamos uma estratégia de alto rendimento baseada em biosensor para a biopanning de peptídeos curtos exibidos com phage T7 que podem ser facilmente exibidos no capsídeo phage. A análise subsequente das sequências de aminoácidos de peptídeos contendo segmentos curtos, como "relíquias quebradas", dos locais de ligação de drogas utilizando programas bioinforáticos no conjunto de ligamento receptor e contato (RELIC). Aplicando este método a dois medicamentos clinicamente aprovados, um irinotecano anti-tumor e um oseltamivir anti-flu, o processo detalhado para a coleta das sequências de peptídeos que reconhecem a droga e destacam os locais de ligação medicamentosa das proteínas-alvo são explicados neste artigo. A estratégia aqui descrita pode ser aplicada para quaisquer pequenas moléculas de interesse.

Introduction

A identificação de alvos de ligação de drogas é essencial para o desenvolvimento de drogas, bem como para a compreensão dos mecanismos moleculares das doenças. Em particular, as proteínas receptoras e enzimáticas são os alvos moleculares mais importantes das pequenas moléculas bioativas¹. Embora a captura de afinidade seja uma técnica bem estabelecida para identificar as proteínas de ligação medicamentosa², limitações técnicas, como baixa solubilidade de proteínas, muitas vezes dificultam a validação de alvos medicamentosos². Mais importante, as pequenas moléculas imobilizadas perdem o grau de liberdade necessário para o acoplamento e podem ser inacessíveis aos locais de ligação localizados internamente em proteínas alvo maiores. Além disso, a incompatibilidade de proteínas, a incapacidade de analisar as condições de co-cristalização e as limitações devido ao tamanho molecular muitas vezes dificultam o uso de cristalografia de raios-X, ressonância magnética nuclear (RMN) e outras análises experimentais para o estudo de interações medicamentosa-proteína.

O uso do biopanning de exibição de phage T7 é uma maneira eficiente de determinar o local de ligação em proteínas para iscas de moléculas pequenas³. Em particular, uma biblioteca de peptídeos aleatórios exibida por T7, que pode ser construída inserindo DNA sintético em um local de multi-clonagem, é eficaz. Em comparação com a biblioteca de phage T7 que exibe proteínas, os peptídeos curtos podem ser facilmente projetados para serem exibidos no capsídeo de phage T7 sem restrições físicas, que podem ter contato com qualquer droga de molécula pequena fixada em um suporte sólido². Além disso, a introdução de um biosensor de microequilísão de quartzo-cristal (QCM) na plataforma de biopanning de exibição de phage T7 permite a identificação de interações tão fracas, mas específicas, de peptídeos curtos com drogas, monitorando a redução da frequência QCM^4,5. O phage T7 vinculado é então diretamente recuperado infectando o hospedeiro Escherichia coli (BLT5615), e a sequência de DNA da região que codifica o peptídeo selecionado pela afinidade que abriga segmentos curtos que reconhecem drogas é determinada. A análise subsequente da sequência de aminoácidos da população de peptídeos fornece informações sobre o reconhecimento de drogas. No alinhamento silico pairwise das sequências de aminoácidos resgatados pode ser usado para obter informações sobre o alvo biológico da droga dentro de um proteome selecionado. Esta alta identificação de fragmentos de proteína com afinidade com uma droga pode ser usada para reconstruir heusristicamente o local de ligação de drogas de forma semelhante à da reconstrução de um artefato antigo a partir de fragmentos de cerâmica⁶. Em particular, essa abordagem única pode ser útil quando as abordagens convencionais de proteômica falham.

Aqui, apresentamos uma estratégia baseada em biosensor para a biopanização de peptídeos e análises bioinformáticas exibidas por físeras T7 para a validação alvo das pequenas moléculas. Além das limitações técnicas sobre os métodos convencionais, essa estratégia permite a identificação de locais de ligação de drogas em proteínas-alvo para qualquer pequena molécula de interesse sob o protocolo idêntico.

Protocol

NOTA: As seguintes são as etapas para a triagem de phages T7 que reconhecem medicamentos usando um biosensor QCM e recuperando as phages screened via E. coli (BLT5615) infecção. Os protocolos para a síntese de um derivado de uma pequena molécula que forma uma monocamada auto-montada (SAM) e para a construção da biblioteca de peptídeos aleatórios de 15 mer exibidas por T7 podem ser encontrados em outros lugares^6,7.

1. Preparação do chip de sensor QCM

1. Conecte um chip de sensor cerâmico no oscilador de um aparelho QCM de 27 MHz e regissuça a frequência intrínseca (Hz) na fase de ar antes da imobilização de pequenas moléculas.
2. Despeça o chip e solte 20 μL de uma solução (1 mM em 70% de etanol) de um derivado de molécula pequena que forma SAM no eletrodo de ouro do chip do sensor usando uma pipeta.
   ATENÇÃO: O cristal do chip de sensor onde o eletrodo de ouro (Au, 0,1 mm de espessura, 2,5 mm i.d., 4,9 mm²) está localizado é extremamente fino e pode rachar facilmente (SiO₂, 0,06 mm de espessura, 9 mm i.d.). Por isso, pipeta com cuidado.
3. Deixe por 1h em temperatura ambiente (em torno de 20 °C) em uma placa de Petri com tecido umedecido e protegido das luzes do quarto.
4. Lave a superfície do eletrodo suavemente com água ultrapura; em seguida, remova as gotas de água soprando ar com uma seringa ou espanador de ar.
5. Configure o chip do sensor para o aparelho QCM e registe a redução da frequência na fase de ar para medir a quantidade da pequena molécula que foi imobilizada.
   NOTA: Pelo menos, 100 Hz de frequência intrínseca é necessário para a imobilização de pequenas moléculas bem sucedidas (1 Hz imobiliza 30 pg).

2. Biopanning da biblioteca de phage T7 usando um biosensor QCM (Figura 1)

1. Defina uma cuvette com um agitador magnético dedicado no biosensor QCM e despeje 8 mL do tampão de reação (10 mM Tris-HCl, 200 mM NaCl, pH 7-8) no cuvette.
2. Conecte o chip do sensor QCM ao oscilador e puxe para baixo o braço do oscilador para imergir o chip no buffer sendo agitado a 1000 rpm.
3. Comece a monitorar a frequência QCM no computador pessoal (PC) e aguarde até que o sensorgrama se equilibre para cerca de 3 Hz/min da deriva de frequência.
4. Injete 8 μL de uma biblioteca de phage T7 (1-2 × 10¹⁰ pfu/mL) no cuvette (concentração final: 1-2 × 10⁷ pfu/mL) e marque o ponto de injeção no sensor.
5. Monitore a redução de frequência causada pela ligação de phages T7 à pequena molécula imobilizada na superfície do eletrodo de ouro por 10 minutos.
6. Pare o monitor de frequência QCM, desaloja o chip do sensor do oscilador e remova o buffer soprando ar e/ou afastando-se com lenços umedecidos.
7. Coloque o chip de sensor em uma placa de Petri úmida e solte os 20 μL da suspensão de E. coli (BLT5615) (OD₆₀₀ = 0,5 — 1,0 depois de tremer a 37 °C adicionando células hostis IPTG a 1 mM) na fase de tronco no eletrodo de ouro.
8. Feche a tampa do prato e cubra-a com papel alumínio para bloquear a luz.
9. Incubar o prato a 37 °C por 30 min em uma batedeira de microplacão de 96 poços (1000-1500 rpm) para melhorar a recuperação dos phages T7 ligados.
10. Recupere os 20 μL da solução e suspenda-o em 200 μL de meio LB.
    NOTA: As amostras obtidas nesta etapa podem ser preservadas a 4 °C por uma semana.
11. Prepare uma série de diluição da solução phage para isolamento da placa e sequenciamento de DNA de acordo com o procedimento geral descrito nas instruções do fabricante^8,9.
12. Limpe a superfície do eletrodo dourado com um cotonete encharcado com 1% de solução de sulfato de dodecyl de sódio.
13. Lave a superfície dourada com água ultrauso da garrafa de lavagem e, em seguida, remova gotas de água soprando ar com uma seringa ou espanador de ar.
14. Queda de 5 μL de solução de piranha (Conc. H₂SO₄: 30% H₂O₂ = 3:1) na superfície dourada e deixe por 5 min.
15. Lave a superfície dourada novamente com água e depois seque soprando ar e/ou afastando-se com lenços umedecidos.
16. Repita as etapas 2.14 e 2.15.
    ATENÇÃO: Prepare a solução de piranha imediatamente antes de usar. Use este líquido cuidadosamente, pois é um ácido muito forte. O tratamento por mais de 5 minutos corroe o chip do sensor.

3. Análise bioinformática utilizando o conjunto do programa Receptor Ligand Contact (RELIC)(Figura 2)^10,11

1. Descompacte o programa RELIC autônomo em um PC com um sistema operacional MS Windows.
2. Alinhe as sequências de aminoácidos dos peptídeos de 15-mer selecionados usando a droga ou selecionados aleatoriamente da biblioteca pai não telada em cada arquivo de formato de texto (nome.txt).
3. Digite a sequência de aminoácidos de proteínas únicas ou múltiplas em cada arquivo de texto com formato FASTA ou baixe os arquivos de texto do banco de dados em formato FASTA a partir de qualquer banco de dados de proteínas (por exemplo, UniProt (http://www.uniprot.org/) ou DrugBank (https://www.drugbank.ca/).
4. Coloque os arquivos de texto (e arquivos PDB para HETEROalign) na pasta necessária para executar cada programa RELIC.
5. Clique no arquivo executável (programa.exe) para AADIV, INFO, MOTIF, MATCH, HETEROalign, FASTAcon e FASTAskan na pasta independente para abrir a versão pessoal do FTN95.
6. Digite o nome de arquivo apropriado, juntamente com a extensão (nome.txt), na mensagem de comando para executar cada programa e obter o arquivo de formato de texto necessário.
7. Exporte o arquivo de texto resultante para um software de planilha (por exemplo, Excel) para gerar um plot de conteúdo de informação (INFO) ou pontuações de similaridade cumulativa calculadas usando um BLOSUM62 (MATCH, HETEROalign).
   NOTA: O servidor RELIC original (http://relic.bio.anl.gov) não está mais disponível e alguns programas relicários do tipo autônomo que funcionam em PCs com uma plataforma Windows podem ser obtidos do autor correspondente (tkksg@rs.noda.tus.ac.jp).

Results

Os resultados representativos de dois medicamentos clinicamente aprovados estão na Figura 3. Irinotecan (Figura 3A), um prodrug solúvel em água de camptothecin natural usado no tratamento de câncer colorretal avançado e câncer de pulmão de células não pequenas, é convertido em SN-38 no fígado, o que inibe topoisomerase I em células cancerosas¹². Além disso, este composto inibe diretamente acetilcolinesterase (AChE)^13,14. Através da estratégia, 29 peptídeos que reconheceram iri imobilizado como um SAM foi identificado por subconjuntos de biopanamento de um ciclo baseados em biosensor QCM. O alinhamento emparelhado subsequente dos 29 peptídeos e AChE rendeu pontuações máximas para Y121, Q225, F290, E327, H440 e Y442 e destacou a porção na estrutura tridimensional. Estes resíduos de aminoácidos foram consistentes com aqueles que compõem o local de ligação iri de AChE. O mesmo subconjunto de peptídeos identificou com sucesso E99, L100, L252, L305, I387 e V474 nas proximidades da tríade catalítica (S221, E353 e H467) em carboxylesterase (CE), indicando que esses aminoácidos formam um andaime para reconhecimento iri durante o reconhecimento de^Iri. Tais resíduos de aminoácidos no local catalítico não podem ser identificados diretamente usando a cristalografia convencional de raios-X ou análise de RMN, pois a reação enzimática prossegue suavemente e não forma o complexo estático stably sob condições experimentais gerais. Assim, essa detecção combinatória de locais de ligação de drogas de múltiplas proteínas, incluindo aquelas nos complexos intermediários possivelmente formados com enzimas durante reações metabólicas para uma determinada droga, é possível usando os peptídeos selecionados por afinidade determinados para uma droga.

A Figura 3B mostra os outros resultados obtidos para oseltamivir (Osel), uma droga anti-gripe que é ativada ao carboxilato oseltamivir, que por sua vez inibe a neuraminidase (NA) do vírus da gripe¹⁶. Os 27 peptídeos que reconheceram Osel cobrindo a superfície do eletrodo de ouro do sensor QCM detectaram com sucesso o local de ligação osel na NA¹⁶. Este site de ligação consiste em loops de peptídeos não estruturados que potencialmente sofrem movimento dinâmico durante o acoplamento com Osel. Os peptídeos que reconhecem osel no capsídeo de phage T7 podem imitar esta acoplamento dinâmica ao ligar o Osel fixado na superfície do eletrodo de ouro do chip de sensor QCM. Eventos adversos neuropsiquiátricos (NPAEs) foram identificados em pacientes jovens com gripe, que efeito sobre os pacientes estão possivelmente relacionados com a doença em si e não com a droga. Estudos demonstraram que a Osel é exportada ativamente do sistema nervoso central (SNC) de roedores através da proteína de resistência multidroga (MDR) na barreira hematoencefálica (BBB)¹⁷. De fato, uma das proteínas da classe deste MDR apresentou uma pontuação alta (5% em 4.396 no banco de dados de proteínas DrugBank^{1.0 18}), além de outros transportadores, enzimas relacionadas a neurotransmissores e receptores, em nosso estudo. A significância farmacológica dessas proteínas no que diz respeito ao aparecimento de efeitos adversos da Osel está sendo investigada.

Até agora, locais únicos e múltiplos de ligação de pequenas moléculas nas proteínas-alvo foram identificados com sucesso para seis pequenas moléculas que usam nossa estratégia(Figura 4). Para brz2001 e roxitromicina (RXM), foram identificados locais idênticos de ligação de drogas em uma proteína alvo utilizando diferentes piscinas de peptídeos, os números e sequências de aminoácidos para os quais variaram completamente^7,19. Além disso, piscinas de peptídeos únicos obtidas para Iri, RXM e Osel levaram à identificação de múltiplos locais de ligação em diferentes proteínas para cada droga, como AChE e CE para Iri (Figura 3A)^20,angiomotina e CYP3A4 para RXM^19,21, e proteína associada a NA e MDR para Osel. Um alvo molecular desconhecido foi identificado para o composto anti-tumor doxorubicina (FANCF)²², e o antibiótico anti-angiogênico macrolide RXM (angiomotin)¹⁹.

Figura 1: Representação esquemática do biopanning baseado em biosensor QCM da biblioteca de peptídeos exibida por phage T7. Uma biblioteca de phage T7 que exibe peptídeos aleatórios é injetada no cuvette contendo o buffer (em agitação) onde o chip biosensor QCM está imerso e a frequência é estabilizada. Depois de monitorar a redução de frequência devido à ligação de phages T7 a pequenas moléculas imobilizadas na superfície do eletrodo de ouro do chip do sensor, o chip do sensor é separado do oscilador. O DNA do phage T7 vinculado é então diretamente recuperado após a infecção pelo hospedeiro E. coli (BLT5615). Os phages T7 resultantes são isolados através da formação de placas e, finalmente, a sequência de aminoácidos do peptídeo selecionado pela afinidade da droga exibido no tcapide de phage T7 é determinada de acordo com o método geral de exibição de phage. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 2: Representação esquemática da avaliação quantitativa da comparação sequencial entre peptídeos selecionados por medicamentos e proteínas únicas ou múltiplas. As sequências de peptídeos selecionadas por drogas estão respectivamente alinhadas com as sequências primárias de aminoácidos de proteínas únicas e múltiplas, e a semelhança em cada conjunto de aminoácidos de 3-5 é cumulativamente pontuada através do alinhamento pairwise de acordo com uma matriz BLOSUM62 modificada. O enredo ou diagrama resultante indica os resíduos ou porções que constituem um local potencial de ligação de drogas na proteína. Uma análise mais aprofundada usando um programa RELIC apropriado destaca o local de vinculação na estrutura tridimensional (se o arquivo PDB estiver disponível) ou classifica proteínas inteiras que são possivelmente o alvo de ligação (o programa HETEROalign está atualmente indisponível). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3: Resultados representativos da coleta de peptídeos e posterior análise bioinformática. (A) Irinotecan (pró-tumor, inibidor topoisomerase I). A interação com phage T7 foi monitorada por 10 minutos como uma redução na frequência QCM. O DNA do phage T7 ligado foi recuperado e sequenciado para determinar a sequência de aminoácidos correspondente. As sequências de aminoácidos de 29 peptídeos de 15-mer, coletadas usando um subconjunto de biopanning de um ciclo, destacaram os aminoácidos que compõem o local de ligação iri de AChE [PDB ID 1U65]. Uma avaliação posterior utilizando os mesmos 29 peptídeos destacou os resíduos de aminoácidos vizinhos (resíduos de andaimes para desestrificação) da tríade catalítica em CE, enzima hepática que converte Iri em SN-38 (forma ativa) [PDB ID: 1K4Y]. Escores de similaridade de 103 peptídeos selecionados aleatoriamente da biblioteca de pais não rastreados^7,19 foram subtraídos dessas pontuações para remover o viés da biblioteca. Estes números são reproduzidos a partir do Ref. 20, com permissão da Elsevier. (B) Oseltamivir (anti-gripe). Os 27 peptídeos contendo aminoácidos que reconhecem osel destacaram porções desordenadas do local de ligação osel para neuraminidase (NA) (enzima do vírus) [PDB ID: 2HT7]. A validação global da similaridade sequencial entre 27 peptídeos e 4.396 proteínas no DrugBank 1.0¹⁸ revelou que a NA estava dentro da faixa de 5%, além das proteínas humanas hospedeiras associadas às funções do sistema nervoso central. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 4:Resumo daspequenas moléculas, dos quais foram identificados os alvos de ligação utilizando essa estratégia. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. 

Discussion

Aqui, foi apresentada uma estratégia para o biopanning baseado em biosensor de peptídeos que reconhecem drogas, seguida de análise bioinformática para validação de interações medicamentosa-proteína usando os peptídeos identificados. Projetar os derivados de pequenas moléculas para imobilização no eletrodo de ouro do biosensor é um passo importante, pois o linker introduzido pode dificultar a ligação e a coleta do peptídeo que reconhece a droga. Para evitar isso, derivativos com diferentes posições do linker introduzido são preparados²³. Alternativamente, para imobilizar pequenas moléculas hidrofóbicas, o chip do sensor é imerso em água a granel em uma placa de Petri de 10 cm, e uma solução de 20 μL da pequena molécula (solução de 10 mM em sulfóxido de dimetila) é lançada sobre o eletrodo de ouro do biosensor, para cobrir sua superfície, e incubada por 5 minutos. Isso permite a retenção de uma frequência intrínseca de hertz sub-cem de pequenas moléculas, que é mantida por pelo menos 10 minutos durante o biopanning. De fato, utilizando tal imobilização, os peptídeos selecionados pela afinidade osel destacaram claramente o local de vinculação de Osel em NA (Figura 3).

O phage T7 usado para preparar a biblioteca de peptídeos aqui é geneticamente modificado usando o NNK₁₅ que codifica 32 códons para todos os 20 aminoácidos padrão e reprime o surgimento de 2 códons de parada (UAA, UGA) e emerge apenas UAG (Figura 1)^6,7. Isso é importante para exibir peptídeos de 15-mer e aumentar a diversidade da biblioteca. O sistema de exibição de phage T7 tem um limite técnico de exibição de 10⁷—10⁹ phages T7. No entanto, a diversidade da biblioteca de peptídeos de 15-mer é teoricamente 20¹⁵ (3,27 × 10¹⁹); assim, não pode ser usado para construção completa da biblioteca. No entanto, a busca por similaridade ou mineração de motivos conservados permite a detecção dos aminoácidos que compreendem os locais de ligação de drogas de proteínas, mesmo com essa limitada diversidade de peptídeos na biblioteca. Além disso, 3-5 aminoácidos se estendem dentro do peptídeo da biblioteca (a taxa de aparência é entre 1/20³ e 1/ 20⁵, que pode ser realizado usando o sistema de exibição de phage T7) estão envolvidos no reconhecimento de pequenas moléculas drogas; portanto, não é necessário um 100% de correspondência das sequências de peptídeos com sequências de aminoácidos de 15-mer que constituem o local de ligação medicamentosa da proteína alvo. De fato, aproximadamente 30 peptídeos selecionados por afinidade destacaram com sucesso o local de ligação da proteína alvo para cada droga testada(Figura 4). Assim, a diversidade da biblioteca de phage T7 pai utilizada (1,7 × 10⁷ pfu/mL) pode ser usada para reconstruir heuristicamente o local de ligação de drogas.

Tipicamente, 3-5 cópias de phages T7 que exibiam as mesmas sequências das sequências de aminoácidos de 15-mer que abrigam trechos de aminoácidos que reconhecem drogas surgiram dentro das 16 placas arbitrariamente isoladas, indicando o sucesso da seleção de afinidade sob nosso protocolo. Isso indica que 18-30 sequências diferentes de peptídeos que reconhecem drogas são coletadas dentro das 96 placas isoladas (o número está associado ao formato microplaca), que são identificados posteriormente usando sequenciamento do DNA e obtenção da sequência de aminoácidos correspondente. Na estratégia atual, a injeção de 8 μL da biblioteca de phage T7 no cuvette contendo tampão de 8 mL (diluição de 1000 vezes da biblioteca) é adequada para reduzir a ligação não específica de phages T7. Para aumentar a diversidade dos peptídeos selecionados por afinidade, repetir a seleção de um ciclo várias vezes e usar 16 ou 32 isolamentos de placas por triagem mostrou-se mais eficaz do que o isolamento de uma única solução de cada vez. Por exemplo, para coletar efetivamente aproximadamente 30 peptídeos selecionados por afinidade sequenciados de forma diferente, foram realizados 3-6 conjuntos de seleção de um ciclo, 16 ou 32 placas foram isoladas em cada experimento. A aparência de sequências idênticas em todas as placas de 16 ou 32 placas de phage T7 são indicadas detecção acidental de fundo ou pode contaminar como uma transferência. Em contraste, a ausência de phages T7 com a mesma sequência ou aparência de muitos phages T7 com peptídeos mais curtos do que o comprimento de 15-mer indica que os phages T7 na população não especificamente emergiram com alta probabilidade. Como a redução da frequência do QCM ocorre na mesma medida mesmo nesses casos, o sucesso da seleção deve ser amplamente avaliado sequenciando o DNA da praga isolada T7, seguida pela análise bioinformática das sequências de aminoácidos dos peptídeos. Além disso, ao contrário do protocolo convencional de exibição de phage T7, repetir rodadas de seleção é menos eficaz, pois a variação e o número dos phages T7 são pequenos e não estão concentrados mesmo após a repetição das etapas de amplificação e seleção²³.

É importante ressaltar que este método é aplicável para a mineração de pequenos sítios de ligação de moléculas nos proteomes de humanos, vírus patogênicos e até plantas. Curiosamente, o comprimento de exibição curta possivelmente não estruturado de peptídeos no capsídeo de phage T7 pode imitar a dinâmica molecular dos peptídeos de proteínas durante o acoplamento com uma pequena molécula; isso pode refletir a ligação dinâmica²⁴. Além das limitações técnicas dos métodos convencionais, essa estratégia, aplicável a protocolos idênticos para pequenas moléculas, pode expandir o proteome drogado, bem como proporcionar mais granularidade em relação à análise de interação drogada-proteína.

Algumas limitações técnicas dessa abordagem devem ser consideradas. A síntese orgânica é necessária para a imobilização de pequenas moléculas na superfície do eletrodo de ouro do chip biosensor. Para os não especialistas em química orgânica, alguns reagentes de imobilização estão disponíveis comercialmente para fixar mecanicamente a pequena molécula por acoplamento. Além disso, certas porções sem sentido dos peptídeos podem resultar na detecção de uma porção da proteína não relevante para o acoplamento de drogas como falsos positivos. Isso corresponde empiricamente a domínios ricos em folha beta ou leucinas ricos em resíduos de leucina ou valina, que são codificados por mais códons do que outros aminoácidos padrão, quando cópias do phage T7 são produzidas. Controlar o comprimento do peptídeo da biblioteca pode controlar a ocorrência de falsos positivos. Em contraste, pode haver casos em que resíduos de aminoácidos no local de ligação de drogas que estão envolvidos no acoplamento, como demonstrado usando cristalografia de raios-X ou análise de RMN, não são detectados. Isso pode ser resolvido coletando um número maior dos peptídeos que reconhecem a droga ou mudando a direção da fixação das pequenas moléculas no eletrodo de ouro.

Muitas interações medicamentosa-proteínas que estão relacionadas aos principais e secundários efeitos do uso de drogas ainda podem não ser identificadas no proteome; além disso, enzimas e transportadores responsáveis pela absorção de medicamentos, distribuição, metabolismo, excreção e toxicidade, também podem ainda não ser identificados. A ligação proteica nem sempre é responsável pela bioatividade de uma droga. Assim, uma combinação de outras informações de ensaios biológicos melhorará a identificação de alvos essenciais de drogas responsáveis pelos principais e adversos efeitos das drogas. Outras adaptações desta técnica concisa aumentarão a praticidade e o throughput para a mineração dos locais de ligação proteica de uma ampla gama de pequenas moléculas. O método aqui apresentado contribuirá em grande parte para não apenas realizar pesquisas básicas nos campos relacionados, mas também esclarecer os mecanismos moleculares subjacentes à eficácia terapêutica ou outros efeitos biológicos de drogas no uso clínico.

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
AFFINIXQN	ULVAC, Inc. (Tóquio, Japão)	QCM2008-STKIT	Contém cubeta de vidro, ímã de agitação, software de operação e análise com um PC com Windows
AADIV	Northeastern University (Lee Makowski)	AADIV.exe	Calcula a frequência de ocorrência de cada um dos 20 aminoácidos em cada posição de inserção recombinante, bem como a frequência geral independente da posição de cada aminoácido dentro desse conjunto de sequências de peptídeos. Também estima aproximadamente a diversidade de sequências de uma biblioteca de exibição pelo método de amostragem estatística com base em sequências obtidas de um número limitado de membros da biblioteca amostrados aleatoriamente.
Chip Sensor de Cerâmica	ULVAC, Inc. (Tóquio, Japão)	QCMST27C	4 chips de sensores/pacote
Dimetilsulfóxido	Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, EUA)	D8418
Etanol	Merck (Kenilworth, NJ, EUA)	09-0850
FASTAcon	Northeastern University (Lee Makowski)	FASTAcon.exe	Identifica proteínas de uma população com curto sequências de consenso.
FASTAskan	Northeastern University (Lee Makowski)	FASTAskan.exe	Lista proteínas com alta similaridade com uma população de peptídeos.
Kit de immiblização para AFFINIX	ULVAC, Inc. (Tóquio, Japão)	Reagente QCMIMKT	SAM e reagente de acoplamento de amina
INFO	Northeastern University (Lee Makowski)	INFO.exe	Fornece medida matemática da probabilidade de observar uma sequência peptídica específica por acaso (ou seja, ligação inespecífica) em oposição à seleção de uma propriedade específica (afinidade com molécula pequena).
Meio LB líquido	Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, EUA)	L3522	Autoclave por 20 min
MATCH	Northeastern University (Lee Makowski)	MATCH.exe	Identifica quaisquer trechos de resíduos de aminoácidos dentro de uma proteína específica que exibam semelhança significativa com um grupo de peptídeos selecionados por afinidade. Saídas como diagrama de cluster e gráfico de similaridade cumulativa calculado a partir de uma matriz de BLOSUM62 modificada com uma janela curta (5– 6 aminoácidos de comprimento).
MOTIF1	Northeastern University (Lee Makowski)	MOTIF1.exe	Procura por três motivos de sequência contínua de aminoácidos dentro de uma população de peptídeos.
MOTIF2	Northeastern University (Lee Makowski)	MOTIF2.exe	Procura padrões de três aminoácidos e não permite substituições conservadoras de aminoácidos, mas permite comprimentos de lacuna idênticos.
NaCl	Merck (Kenilworth, NJ, EUA)	S3014
(RELIC)	Argonne National Laboratory (Lemont, IL, EUA)	https://www.relic.anl.gov	Atualmente indisponível (O programa autônomo pode ser usado a partir do autor da correspondência mediante solicitação)
Tris	Merck (Kenilworth, NJ, EUA)	252859