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Artigo de método

Estimativa do Teor de Lignina de Biomassa Vegetal usando Ácido Tioglicólico (TGA)

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DOI:

10.3791/62055

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24 de julho de 2021

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Neste artigo

Resumo

Aqui, apresentamos um método TGA modificado para estimativa do teor de lignina na biomassa vegetal herbácea. Este método estima o teor de lignina formando ligações específicas com a lignina e apresenta uma vantagem sobre o método Klason, pois requer uma amostra relativamente pequena para estimativa de conteúdo de lignina.

Resumo

A lignina é um polímero natural que é o segundo polímero mais abundante na Terra depois da celulose. A lignina é depositada principalmente em paredes de células secundárias vegetais e é um heteropolímero aromático composto principalmente por três monolignols com importância industrial significativa. A lignina desempenha um papel importante no crescimento e desenvolvimento das plantas, protege contra estresses bióticos e abióticos e na qualidade da forragem animal, da madeira e dos produtos industriais de lignina. A estimativa precisa do teor de lignina é essencial tanto para a compreensão fundamental da biossíntese de lignina quanto para as aplicações industriais de biomassa. O método de ácido tioglicólico (TGA) é um método altamente confiável de estimar o teor total de lignina na biomassa vegetal. Este método estima o teor de lignina formando thioethers com os grupos de álcool benzílico de lignina, solúveis em condições alcalinas e insolúveis em condições ácidas. O teor total de lignina é estimado usando uma curva padrão gerada a partir de lignina comercial de bambu.

Introdução

A lignina é um dos componentes vitais de suporte de carga das paredes celulares das plantas e o segundo polímero mais abundante na Terra1. Quimicamente, a lignina é um heteropolímero transligado composto por compostos fenólicos complexos de alto peso molecular que formam uma fonte renovável natural de polímeros aromáticos e síntese de biomateriais2,3. Este polímero natural desempenha papéis significativos no crescimento, desenvolvimento, sobrevivência das plantas, suporte mecânico, rigidez da parede celular, transporte de água, transporte mineral, resistência à hospedagem, desenvolvimen....

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Protocolo

1. Preparação de amostras de plantas

  1. Recolher plantas de algodão de dois meses de idade da estufa (Figura 1A).
  2. Vire vasos de plantas suavemente para separar o solo e as raízes com raízes laterais intactas, afrouxando o solo ao redor da planta(Figura 1B).
  3. Lave bem as plantas coletadas em bandejas cheias de água para remover toda a sujeira (para amostras de raiz) (Figura 1C).
  4. Use toalhas de papel para secar tecidos separados de raiz, caule e folha, e rotulá-las(Figura 1D). Ar seco por 2 dias à temperatura ambient....

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Resultados

Duas linhas experimentais de algodão diferentes foram comparadas por diferenças em seus teores de lignina em diferentes tecidos. O teor extraído de lignina de cada amostra foi medido em 280 nm e registrou seus respectivos valores de absorção. Os valores médios de absorção de cada réplica biológica foram comparados com a linha de regressão da curva padrão da lignina(Tabela 2, Figura 3C). A linha de regressão, y = mx + c, é utilizada para calcular o conteúdo desconhecido de li.......

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Discussão

A lignina desempenha um papel significativo no crescimento e desenvolvimento das plantas e recentemente tem sido extensivamente estudada para aplicações de biocombustíveis, bioenergia e bioprodutos. A lignina é rica em compostos aromáticos que são armazenados em todas as paredes de células secundárias de plantas vasculares. Possui diversas aplicações industriais, como produtos de painéis de madeira, bio dispersantes, floculantes, espumas de poliuretano e em resinas de placas de circuito29,

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Divulgações

Os autores declaram que não têm conflito de interesses.

Agradecimentos

Agradecemos ao Departamento de Ciência de Plantas & Solos e Cotton Inc. pelo apoio parcial deste estudo.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
BioEspectrofotômetro cinéticoEppendorf cinético6136000010Para medir a absorbância a 280 nm
CentrífugaEppendorf5424Para centrifugação de amostras
Lignina de bambu comercialAldrich1002171289Usado na preparação da curva padrão
Água destiladaFischer Scientific16690382Usado no protocolo
Tubos FalconVWR734-0448Recipientes para soluções
Moinho congeladorSpex Sample Prep68-701-15Para moagem fina de amostras de tecidos vegetais
Bloco de calor/ Misturador térmicoEppendorf13527550Para etapas com controlo de temperatura durante a extracção de lignina
Agitador de placas de aquecimentoWalterWP1007-HSUtilizado para preparação de soluções
Ácido clorídrico (HCL)Sigma221677Usado no protocolo
IncubadoraFisherbrand150152633Para secagem completa de amostras de tecido vegetal
Balança de mediçãoMettler toledo30243386Para medir o peso do tecido vegetal, padrões e tubos de microcentrífuga
Metanol (100 %)Fischer Scientific67-56-1Usado no protocolo
Tubos de microcentrífuga (2 mL)MicrocentrífugaZ628034-500EARecipientes para extração de lignina
Gerinder de biomassa vegetalHanchenAmazonUsado para triturar amostras secas
Medidor de pHFisher ScientificAE150Medição de pH para soluções preparadas para extração de lignina
Incubadora/forno com temperatura controladaFisher Scientific15-015-2633Usado no protocolo
Ácido tioglicólico (TGA)Sigma Aldrich68-11-1Usado no protocolo
Secador a vácuoEppendorf22820001Usado para secar amostras
Misturador de vórticeEppendorf3340001Para mistura adequada de amostras

Referências

  1. Freudenberg, K., Neish, A. C. Constitutionand Biosynthesis of Lignin. , Springer-Verlag Inc. New York, NY. 129(1968).
  2. Chio, C., Sain, M., Qin, W. Lignin utilization: A review of lignin depolymerization from various aspects. Renewable and Sustainable Energy Reviews. 107

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Reimpressões e permissões

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