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Artigo de método

Protocolos digitais de PCR digital de gotícula de transcrição reversa em duas etapas para detecção e quantificação de SARS-CoV-2

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DOI:

10.3791/62295

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31 de março de 2021

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Neste artigo

Resumo

Este trabalho resume as etapas no desenvolvimento de ensaios diferentes para a detecção de SARS-CoV-2 usando um sistema ddPCR de duas cores. As etapas são elaboradas e notas foram incluídas sobre como melhorar os ensaios e o desempenho do experimento. Estes ensaios podem ser usados para aplicações SARS-CoV-2 RT-ddPCR.

Resumo

O diagnóstico da pandemia SARS-CoV-2 em curso é uma prioridade para todos os países em todo o mundo. Atualmente, o PCR quantitativo de transcrição reversa (RT-qPCR) é o padrão ouro para o diagnóstico de SARS-CoV-2, pois nenhuma solução permanente está disponível. Por mais eficaz que essa técnica possa ser, pesquisas têm surgido mostrando suas limitações na detecção e diagnóstico, principalmente quando se trata de alvos pouco abundantes. Em contraste, o PCR digital de gotículas (ddPCR), uma tecnologia emergente recente com vantagens superiores sobre o qPCR, mostrou superar os desafios do RT-qPCR no diagnóstico de SARS-CoV-2 a partir de amostras alvo pouco abundantes. Prospectivamente, neste artigo, os recursos do RT-ddPCR são expandidos ainda mais, mostrando etapas sobre como desenvolver ensaios simplex, duplex, triplex probe mix e quadruplex usando um sistema de detecção de duas cores. Usando primers e sondas que visam locais específicos do genoma do SARS-CoV-2 (N, ORF1ab, RPP30 e RBD2), o desenvolvimento destes ensaios mostra-se possível. Além disso, protocolos detalhados passo a passo, notas e sugestões sobre como melhorar o fluxo de trabalho de ensaios e analisar dados são fornecidos. A adaptação desse fluxo de trabalho em trabalhos futuros garantirá que o número máximo de destinos possa ser detectado de forma sensível em uma pequena amostra, melhorando significativamente o custo e a taxa de transferência da amostra.

Introdução

A reação em cadeia da polimerase (PCR), uma técnica bem reconhecida, passou por diversas transformações desde seu advento para se tornar uma poderosa técnica capaz de fornecer respostas à pesquisa de ácidos nucleicos. Essas transformações têm sido um constante aprimoramento da antiga técnica. Essas transformações podem ser resumidas em três gerações1. A primeira geração é a PCR convencional que se baseia na eletroforese em gel para quantificar e detectar alvos amplificados. A segunda geração é a PCR quantitativa em tempo real (qPCR) que pode detectar amostras em tempo real e contar com uma curva padrão para quantificar diretamente os alvos em u....

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Protocolo

Declaração ética
O Instituto de Virologia de Wuhan (WHIOV) está entre os laboratórios e institutos aprovados pelo CDC da China da cidade de Wuhan para conduzir pesquisas sobre o SARS-CoV-2 e detectar COVID-19 a partir de amostras clínicas. A pesquisa sobre o desenvolvimento de novas técnicas de diagnóstico para COVID-19 usando amostras clínicas também foi aprovada pelo comitê de ética do Instituto de Virologia de Wuhan (2020FCA001).

1. Fluxo de trabalho de processamento de amostras (Figura 1A)

NOTA: Ao longo do protocolo, é importante usar salas separadas com pipeta....

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Resultados

Em um estudo de prova de conceito, o desempenho analítico dos ensaios multiplex foi testado em amostras clínicas e de pesquisa19. O desempenho dos ensaios multiplex foi superior ao de um RT-PCR19. Como um baixo número de gotículas pode indicar um problema durante a geração de gotículas, neste artigo um ponto de corte de 10.000 gotículas por poço foi definido com base em dados empíricos.

Uma boa separação entre gotículas positivas e negativas com .......

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Discussão

Poucos recursos estão disponíveis sobre como desenvolver ensaios RT-ddPCR para detecção de SARS-CoV-2. Embora não sejam usadas neste artigo, amostras padrão com cópias conhecidas podem ser usadas para desenvolver e otimizar ensaios. Neste trabalho, no entanto, as amostras de SARS-CoV-2 cultivadas em pilhas Vero-E6 foram cravadas em um fundo do RNA genomic humano e usadas como amostras padrão para desenvolver os ensaios. Sequências adequadas de primers e sondas são essenciais no desenvolvimento de ensaios. Uma vez que a m.......

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Divulgações

Os autores não têm conflitos a revelar.

Agradecimentos

Esta pesquisa foi financiada pelo Megaprojeto de Controle de Doenças Infecciosas do Ministério da Saúde da China, número de concessão 2017ZX10302301-005 e Centro de Pesquisa Conjunta Sino-África, número de concessão SAJC201605.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Extrator de ácido nucleico totalmente automático de 32 canais Purificador 32Genfine BiotechFHT101-32Extrator automatizado para RNA
AutoDG Óleo para sondasBioRad12003017QX200 AutoDG consumível
ddPCR Placas de 96 poçosBioRad12003185
ddPCR Supermix para sondas (sem dUTP)BioRad1863024Fazendo mastermix de ensaio ddPCR
Cartuchos DG32 AutoDGBioRad1864108QX200 AutoDG consumível
Pote de banho-maria termostático eletrônicoBeijing Changfeng Instrument and Meter CompanyXMTD-8000Inativação térmica de amostras
Kit de extração de DNA / RNA do vírus FineMag Rapid Bead GenfineBiotechFMY502T5Extração de esferas magnéticas de amostras de RNA inativadas
Selos térmicosde folha perfurávelBioRad1814040
Pontas de pipeta para o AutoDGBioRad1864120QX200 AutoDG consumíveis
Lixeiras de ponta de pipeta para o AutoDGBioRad1864125QX200 AutoDG consumível
PrimeScript RT Master Mix (Perfect Real Time)TaKaRaRR036Ageração de cDNA
PX1 PCR Plate SealerBioRad1814000Sele a placa de gotículas de AutoDG
QuantaSoft 1.7 SoftwareBioRad10026368Aquisição e análise de dados
QuantaSoft Analysis Pro 1.0BioRadN/AAnálise de dados
QX200 Automated Droplet Gererator (AutoDG)BioRad1864101QX200 Consumível
AutoDG QX200 Leitor de gotículas BioRad1864003Leitura de gotículas e aquisição de dados
T100 TermocicladorBioRad1861096Amplificação de alvos de gotículas (PCR) e geração de cDNA

Referências

  1. Nyaruaba, R., Mwaliko, C., Kering, K. K., Wei, H. Droplet digital PCR applications in the tuberculosis world. Tuberculosis. 117, 85-92 (2019).
  2. Baker, M. Digital PCR hits its stride. Nature Methods. 9 (6), 541-544 (2012).
  3. Quan, P. L., Sauzade, M., Brouzes, E.

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Reimpressões e permissões

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