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Artigo de método

Estudo de transferência de energia de fluorescência única da síntese de proteína ribossa

2.4K vistas

DOI:

10.3791/62664

6 de julho de 2021

Neste artigo

Resumo

Transferência de energia de fluorescência de molécula única é um método que rastreia a dinâmica do tRNA durante a síntese de proteína ribossômica. Ao rastrear ribossomos individuais, são identificadas populações inhomogêneas, que lançam luz sobre mecanismos. Este método pode ser usado para rastrear mudanças conformacionais biológicas em geral para revelar relações de função dinâmica em muitos outros biossistemas complexos. Métodos de molécula única podem observar etapas limitantes sem taxa e intermediários-chave de baixa população, que não são acessíveis por métodos convencionais de conjunto devido ao efeito médio.

Resumo

O ribossomo é um grande complexo de ribonucleoproteína que reúne proteínas processivamente ao longo de modelos de mRNA. O diâmetro do ribossomo é de aproximadamente 20 nm para acomodar substratos de tRNA grandes nos locais A, P e E. Consequentemente, a dinâmica ribossoma é naturalmente desagum rapidamente. O método de molécula única pode detectar cada ribossomo separadamente e distinguir populações inhomogêneas, o que é essencial para revelar os complicados mecanismos dos sistemas multicomponimentos. Relatamos os detalhes de um método smFRET baseado no microscópio invertido Nikon Ti2 para sondar a dinâmica ribossômica entre a proteína ribossômica L27 e tRNAs. O L27 é rotulado em sua posição cys 53 única e reconstituído em um ribossomo que é projetado para falta de L27. O tRNA é rotulado em sua região do cotovelo. À medida que o tRNA se move para diferentes locais dentro do ribossomo durante o ciclo de alongamento, como a pré e pós-translocação, as eficiências e dinâmicas do FRET apresentam diferenças, que sugeriram múltiplas subpopulações. Essas subpopulações não são detectáveis por métodos de conjunto. O microscópio smFRET baseado em TIRF é construído sobre um microscópio invertido manual ou motorizado, com iluminação laser construída em casa. As amostras de ribossomo são purificadas por ultracentrifugação, carregadas em uma célula de amostra multicanal construída em casa e depois iluminadas através de um campo laser evanescente. O ponto laser de reflexão pode ser usado para alcançar o controle de feedback do foco perfeito. Os sinais de fluorescência são separados por uma torre de filtro motorizada e coletados por duas câmeras CMOS digitais. As intensidades são recuperadas através do software NIS-Elements.

Introdução

O ribossomo é um complexo de ribonucleoproteína de 20 nm de grande porte de uma subunidade grande (50S) e uma pequena (30S). Ele monta peptídeos longos ao longo do modelo mRNA de forma processiva e cooperativa. O ribossomo 30S se liga ao fMet-tRNAfMet e mRNA para iniciar a síntese proteica, e o 50S então se junta para formar o complexo de iniciação 70S. Os tRNAs trazem aminoácidos para o ribossomo no local A (local de ligação aminoacyl-tRNA), enquanto a cadeia de peptidyl alongada é mantida no local P (peptidyl-tRNA binding site). No complexo de pré-translocação, a cadeia de peptidyl é transferida para o tRNA no local A com um aminoácido adicionado. Enquant....

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Protocolo

1. Preparação de ribossomo rotulado e tRNA para detecção de FRET

  1. Isolar ribossomo sem L27 da cepa E. coli IW312 de acordo com os protocolos padrão20,21. Extrair o ribossomo regular da cepa E. coli MRE600.
  2. Clone o gene rpmA do L27 com c-terminal Sua tag em plasmídeo pET-21b (+) que é transformado e expresso nas células BL21(DE3)pLysS15. Purifique a proteína através de uma coluna de sepharose pré-embalada.
  3. Rotulagem de L27
    1. Incubar 20-100 μM de L27 purificado em 100 μL com excesso de 2-10 vezes de TCEP (Tris-2-carboxyethyl-fosphine) à....

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Resultados

O smFRET tinha o ribossomo rotulado na posição média do tráfego tRNA, para distinguir a translocação de tRNA do A- para o local P (Figura 1)15. A distância do resíduo de rotulagem L27 para o tRNA A ou P-local é de 52 ou 61 Å, respectivamente, correspondendo à eficiência do FRET de 0,47 e 0,65. Após a coleta de imagens, intensidades de fluorescência dos canais doador e aceitador foram recuperadas e traçadas como lapsos de tempo(Figura 1). .......

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Discussão

O SmFRET é sensível aos sinais de fundo. Primeiro, é necessário revestir a câmara de amostra com 0,05% de interpolação e, em seguida, ser adicionado simultaneamente com a solução ribossosome para bloquear a ligação não específica do ribossomo à superfície. Para ver fluorescência da emissão de Cy5 aceitante, o coquetel de catadores de oxigênio (soluções de desoxi, glicose e Trolox) é essencial. Sem essa solução, o branqueamento é muito rápido no canal de aceitação para obter informações úteis. Outro passo crítico para exp.......

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Divulgações

Wang declara que não há conflitos de interesse.

Agradecimentos

Este trabalho é apoiado pelos Institutos Nacionais de Saúde dos EUA (R01GM111452) e pela Fundação Welch (E-1721).

....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
AminosilanoLaysanbioMPEG-SIL-5000
Biotina-PEGLaysanbioBiotina-PEG-SVA-5000
BL21 (DE3) células pLysSNovagen71403
Catalasemillipore sigmaC3515
CS150FNX Micro Ultracentrífuganuaire
Cy3 / C5-maleimidaApexBioA8138/A8140
ECLIPSE Ti2 microscópio invertidoNikon
EdgeGARD Capuz de fluxo laminarBaker
Glucose oxidasemillipore sigmaG2133
Histrap HP column (coluna de sepharose pré-embalada)Cytiva17524701
lamínula de microscópioVWR48393-230
Lâminas de vidro para microscópioVWR470235-792
ORCA-Flash4.0 V3 câmeraHamamatsu
PEG (5.000)LaysanbioMPEG-SVA-5000
pET-21b (+) plasmídeoNovagen69741
SonicatorVWRCPX-952-518R
TCEPApexbioB6055
TroloxMillipore Sigma238813

Referências

  1. Ramakrishnan, V. What we have learned from ribosome structures. Biochemical Society Transactions. 36, Pt 4 567-574 (2008).
  2. Frank, J., Agrawal, R. K. A ratchet-like inter-subunit reorganization of the ribosome during translocation. Nature. 406 (6793....

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Reimpressões e permissões

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