Descrevemos um método para diferenciar astrócitos e neurônios derivados pluripotentes induzidos por humanos da medula espinhal e sua co-cultura para registro eletrofisiológico.
Artigo de método
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Descrevemos um método para diferenciar astrócitos e neurônios derivados pluripotentes induzidos por humanos da medula espinhal e sua co-cultura para registro eletrofisiológico.
Astrócitos e neurônios derivados de células-tronco pluripotentes humanas (hiPSC-A) (hiPSC-N) fornecem uma ferramenta poderosa para modelar a fisiopatologia da Esclerose Lateral Amiotrófica ( ELA) in vitro. As gravações de matriz de múltiplos eletrodos (MEA) são um meio de registrar potenciais de campo elétrico de grandes populações de neurônios e analisar a atividade da rede ao longo do tempo. Foi demonstrado anteriormente que a presença de hiPSC-A que são diferenciados usando técnicas para promover um fenótipo de astrócitos da medula espinhal melhorou a maturação e a atividade eletrofisiológica dos neurônios hiPSC-motores (MN) da medula espinhal regionalmente específicos quando comparados àqueles cultivados sem hiPSC-A ou na presença de astrócitos de roedores. Descrito aqui é um método para co-cultura de hiPSC-A da medula espinhal com hiPSC-MN e registrar a atividade eletrofisiológica usando registros de MEA. Embora os protocolos de diferenciação descritos aqui sejam específicos de astrócitos e neurônios que são regionalmente específicos da medula espinhal, a plataforma de co-cultura pode ser aplicada a astrócitos e neurônios diferenciados com técnicas específicas para outros destinos, incluindo hiPSC-A cortical e hiPSC-N. Esses protocolos visam fornecer um ensaio eletrofisiológico para informar sobre as interações glia-neurônio e fornecer uma plataforma para testar drogas com potencial terapêutico na ELA.
Astrócitos e neurônios derivados de células-tronco pluripotentes humanas (hiPSC-A) (hiPSC-N) são ferramentas poderosas para modelar a fisiopatologia da Esclerose Lateral Amiotrófica (ELA) in vitro e fornecem um paradigma translacional para estratégias de descoberta de medicamentos1. Pesquisadores demonstraram que a cocultura de hiPSC-A com hiPSC-N aumenta a maturação morfológica, molecular, eletrofisiológica e farmacológica de ambos os tipos celulares, gerando redes neuronais complexas e interações astrócitos-neurônios que se assemelham às suas contrapartes in vivo 2,3....
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1. Preparação do meio de cultura celular
2. Manutenção e passagem de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos não confluentes (hiPSC)
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O protocolo de padronização da medula espinhal para a geração de hiPSC-MN e hiPSC-A da medula espinhal está descrito na Figura 1. Nesse protocolo, as hiPSCs são mantidas e passadas como colônias não confluentes (Figura 2A). A neurogênese é iniciada (indução neural) através da inibição dupla do SMAD pela adição de LDN193189 e SB431542, inativando as vias da proteína morfogenética óssea (BMP) e do fator de crescimento transformador-beta (TGF-β), respectivamente. U.......
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Até o momento, métodos baseados em hiPSC e MEA para registros eletrofisiológicos de coculturas de astrócitos-neurônios encontraram aplicação limitada no campo da ELA6 e ainda não em plataformas totalmente humanas, em contraste com seu uso mais difundido para modelagem in vitro da epilepsia9. Esta plataforma, no entanto, tem o potencial de abordar questões patofisiologicamente relevantes na pesquisa da ELA, como os mecanismos de hiperexcitabilidade neuronal, a contr.......
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Os autores não têm nada a revelar.
Este manuscrito foi apoiado pelo seguinte: 2019 MSCRFF 5119 (AT). K08NS102526 NIH/NINDS (CWH), 2020 Prêmio de Desenvolvimento de Carreira de Cientista Clínico (CWH) da Doris Duke Charitable Foundation. 1R01NS117604-01NIH/NINDS (NJM), DOD ALSRP W81XWH2010161 (NJM), 2019 MSCRFD 5122 (NJM). Agradecemos ao Dr. Raha Dastgheyb e ao Dr. Norman Haughey por fornecerem a plataforma MEA e o software de análise de dados que utilizamos para validar a plataforma eletrofisiológica descrita. Gostaríamos de agradecer a Khalil Rust por sua assistência com a demonstração do protocolo e filmagem.
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Placas de cultura estéreis de 10 cm | Falcon | 353003 | |
| frascos de cultura estéreis de 25 cm2 | Falcon | 353136 | |
| 2-Mercaptoethanol (β-ME) | Thermofisher | 21985023 | Concentração de trabalho 110 µ M |
| 500 mL 0,2 µ m Sistema de Filtro CA | Corning | 430769 | |
| pipeta de 5 mL | Falcon | 357543 | |
| placas de cultura estéreis de 6 poços | Falcon | 3046 | |
| Anfotericina B | Gibco | 15290018 | Concentração de trabalho 2,0 μ g/mL |
| Detergente aniônico com enzima protease - Terg-A-Zyme | Sigma-Aldrich | Z273287 | Concentração de trabalho 1% m/v |
| Ácido ascórbico (ASAC) | Sigma | A4403 | Dissolva 100 mg em 250 mL de dH2O para obter estoque de 0,4mg/ml. Filtro estéril através de um 0,22 µ m filtrar, alíquota e congelar a -80 °C. Diluir a 1:1000 para uso. (concentração de trabalho 0,4 µ g/mL). |
| Placas Axion CytoView MEA 24 (M384-tMEA-24W) | Axion | OPT-24 | |
| Axion Edge Plataforma MEA | Matriz de | Maestro Edge | |
| - Matrigel | Corning | 354277 | Detalhes no protocolo |
| Microscópio de bancada (estéril sob a capa de cultura de células) | Zeiss | 415510-1100-000 | Primo Vert |
| Bicuculline | Sigma Aldrich | 14340 | Concentração de trabalho10 μ |
| M Fator neurotrófico ciliar (CNTF) | Peprotech | 450-13 | Dissolve 100 µ g em 1mL de PBS estéril e, em seguida, adicione 9 mL de BSA-PBS estéril a 0,1% a 10 µ g/mL. Alíquota e congelar a -80 ° C. Diluir a 1: 1000 para uso. (concentração de trabalho 10 ng/mL). |
| Tanques e regulador de CO2 para Axion Edge | AirGas/Harris | 9296NC | |
| Compound E | Abcam | ab142164 | Dissolve 250 µ g em 2,0387 mL de DMSO para obter um 250 µ Estoque M. Alíquota e congelar a -80 °C. Diluir 1:2000 para uso. (concentração de trabalho 125 nM). |
| Cianquixalina (CNQX) | Sigma Aldrich | C239 | Concentração de trabalho 50 μ |
| M Ácido di-hidrocaínico (DHK) | Tocris | 111 | Concentração de trabalho 50 μ M e 300 μ M |
| DMEM/F12 | Thermofisher | 113300 | Concentração de trabalho 1x |
| Essential 8 Médio + Suplemento Essencial 8 | Thermofisher | A1517001 | Combine 10 mL de suplemento Essential 8 (10x) com 500 mL de Essential 8 Meio de Crescimento (1x) |
| Soro Fetal Bovino (FBS) | Thermofisher | 16140071 | Concentração de trabalho 1x |
| Neurotrófico derivado de linha de células gliais (GDNF) | Peprotech | 450-10 | Dissolver 100 µ g em 1mL de PBS para 100 µ g/mL e, em seguida, adicione 9 mL de BSA-PBS estéril a 0,1% a 10 µ g/mL. Alíquota e congelar a -80 ° C. Diluir a 1: 1000 para uso. (concentração de trabalho 10 ng/mL). |
| Microscopia Eleitoral | Hemocitômetro | 63510-20 | |
| Heparina | Millipore-sigma | H3149-100KU | Dissolva 200 mg em 100 mL de PBS para obter 2 mg/mL de solução estoque. Alíquota do estoque em 15 mL e 500 µ Tubos L. Diluir 1:1000 para uso. (concentração de trabalho 2 µ g/mL). |
| Incubadora de cultura de células com umidade controlada | ThermoFisher | 370 | ajustada para 37 º C, 5 % CO2 |
| Fator de crescimento semelhante à insulina 1 (IGF-1) | R& D systems | 291-G1-200 | Dissolver 200 µ g em 2 mL de PBS para 100 µ g/mL, em seguida, adicione 18 mL de 0,1% BSA-PBS para fazer 10 µ g / mL de estoque e armazene a -80 & C. Alíquota e congele a -80 & C. Dilua 10 & micro; g/mL de estoque a 1: 1000 para uso. (concentração de trabalho 10 ng/mL). |
| Ácido Kainc | Abcam | ab144490 | Concentração de trabalho 5 μ M |
| Knockout Serum Replacement (KSR) | Thermofisher | 10828 | Concentração de trabalho 1x |
| Laminin | Thermofisher | 23017-015 | Solução estoque 1 mg/mL, concentração de trabalho 10 µ g/mL (revestimento), 1 µ g/mL (meio celular) |
| LDN193189 | Stemgent | 04-0074 | Dissolver 2 mg de LDN em 500 µ L de clorofórmio para obter estoque de 10 mM. Alíquota e congele a -80 ° C. Para usar, dilua o estoque de 1 a 10 em DMSO [para 1 mM] primeiro, depois dilua 1:5000 de 1 mM na mídia desejada para obter 0,2 µ Solução de trabalho |
| M L-Glutamina | Thermofisher | 25030 | Concentração de trabalho 100x |
| placas de vidro MEA | Sistemas Multicanal | 60MEA200/30iR-Ti-gr | |
| Pipeta Multicanal P200 | Gilson | PJ22224 | |
| Neurobasal | Thermofisher | 21103049 | Concentração de trabalho 1x |
| Aminoácidos Não Essenciais (NEAA) | Thermofisher | 11140050 | Concentração de trabalho 100x |
| Pencillin/Streptomycin | Thermofisher | 15140122 | Concentração de trabalho 100x |
| Poliornitina (PLO) | Sigma-Aldrich | P3655 | Dissolva 100 mg em 1 mL de ddW para obter 100 mg/mL de solução estoque. Alíquota do estoque em 100 µ Tubos L. (concentração de trabalho 100 µ g / mL) |
| Cloreto de potássio (KCl) | NA | NA | Concentração de trabalho 100 mM |
| Purmorlamina (PMN) | Millipore-Sigma | 540223 | Dissolva 5 mg em 9,6 mL de DMSO para obter uma solução de 1 mM. Alíquota e congelar a -80 °C. Diluir 1:1000 para uso. (concentração de trabalho 1 µ M). |
| Fator neurotrófico recombinante derivado do cérebro humano (BDNF) | Peprotech | 450-02 | Centrífuga brevemente antes da reconstituição. Dissolver 100 µ g em 1 mL de PBS para 100 µ g/mL e, em seguida, adicione 9 mL de BSA-PBS estéril a 0,1% a 10 µ g/mL. Alíquota e congelar a -80 ° C. Diluir a 1: 1000 para uso. (concentração de trabalho 10 ng/mL). |
| Ácido retinóico (RA) | Sigma | R2625 | Dissolva 100 mg em 3,3 mL de DMSO para obter uma solução estoque de 100 mM. Aliquot o estoque 100 µ L/tubo e congelar a -80 °C. Pegue 200 µ L de estoque de 100 mM e diluir 10x (adicionar 1,8 mL de DMSO) para fazer estoque de 10 mM. Alíquota 50 µ L/tubo e armazene a -80 ° C. Dilua a 1: 10000 para uso. (concentração de trabalho 2 µ M). |
| Inibidor ROCK-I | Peprotech | 1293823 | Dissolver 5 mg em 1480 µ L de dH2O para obter estoque de 10 mM, alíquota e congelar a -80 &C. Diluir a 1: 500 para uso. (concentração de trabalho 20 µ M). |
| SB431542 | Sigma | S4317 | Dissolva 5 mg em 1,3 mL de DMSO para obter uma solução estoque de 10 mM. Alíquota e congelar a -80 ° C. Diluir a 1:1000 para uso. (funcionando com 10 µ M) |
| Capas de cultura de células estéreis | Baker Company | SG-600 | |
| Suplemento B - B27 | Thermofisher | 21985023 | Concentração de trabalho 50x |
| Suplemento N - N2 Suplemento | Thermofisher | 17502048 | Concentração de trabalho 100x |
| Centrífuga de cultura de células de mesa | ThermoFisher | 75004261 | Sorvall Legend X1R |
| Termoplástico filme plástico - | Parafilm PARAFILM | P7793 | |
| Protease de dissociação tecidual - Dispase | StemCell Technologies | 7923 | Concentração de trabalho 1x |
| Inibidor de tripsina | Sigma | T6522-1G | Dissolva 1g em 100mL ddH2O para obter estoque de 10 mg/mL. Alíquota e armazenar a 4 °C. Diluir 1:10 de volume de tripsina para uso. (concentração de trabalho 1 mg/mL). |
| Tripsina-EDTA (0,05%) | Thermofisher | 2530054 | Concentração de trabalho 1x |
| Banho-maria | ThermoFisher | 2332 | Isotemp |
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