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A epilepsia, a quarta família mais comum de distúrbios neurológicos nos Estados Unidos1, é caracterizada por um desequilíbrio de excitação e inibição no SNC que leva a convulsões recorrentes. Convulsões febris (SF) ou febre associada podem ocorrer na população geral, na maioria das vezes em crianças de 3 meses a 6 a 7 anos de idade. No entanto, em alguns indivíduos com mutações genéticas, na maioria das vezes em um gene de canal de sódio, fs pode persistir além da idade de 7 anos até a idade adulta. Esta condição é referida como convulsões febris mais ou FS+. Avanços rápidos no sequenciamento do genoma identificaram mais de 1.300 mutações no gene do canal de íons de sódio humano SCN1A, tornando-se um ponto de acesso para mutações de epilepsia. As mutações SCN1A têm sido ligadas a um amplo espectro de distúrbios convulsivos, incluindo convulsões febris (SF), epilepsia genética com convulsões febris mais (GEFS+) e Síndrome de Dravet (DS)2,3,4,5,6. Cerca de 20% das mutações missenses SCN1A levam a GEFS+5,7,8. A história pediátrica de FS complexo ou prolongado na infância pode, posteriormente, desenvolver-se em formas mais debilitantes de epilepsia, como a epilepsia do lobo temporal (TLE)9,10,11. A Síndrome de Dravet surge devido a mutações de truncação ou perda de mutações de função no SCN1A e é uma forma grave de epilepsia intratável, com início infantil de convulsões febris que se desenvolvem em convulsões refratárias, e muitas vezes está associada a prejuízos cognitivos, de desenvolvimento e motores2,5,12 . Como muitos indivíduos com GEFS+ e/ou DS exibem convulsões febris, torna-se imperativo desenvolver novas terapias para combater melhor esses distúrbios convulsivos.
Modelos animais de epilepsia associada ao SCN1A têm se mostrado inestimáveis na caracterização de diferentes tipos de convulsões (febril versus generalizada) e dissecando o mecanismo neuronal da geração convulsão13,14,15,16,17,18. Embora o estudo de convulsões espontâneas via gravações de EEG/EMG em cérebros de roedores seja bem estabelecido e seja uma ferramenta muito útil, apenas alguns estudos tentaram imitar convulsões febris em modelos de camundongos14,16,19,20,21,22,23 . Estudos anteriores usaram um jato de ar seco aquecido, ou um cilindro de metacrilato equipado com um sistema térmico, ou lâmpadas de calor com um controlador de temperatura em arenas de teste fechadas9,16,21,22,23,24 para induzir convulsões via hipertermia. A fim de aumentar a temperatura corporal em um ambiente mais controlado, o protocolo descrito aqui usa uma câmara personalizada com um sistema de aquecimento controlado pela temperatura que permitiu taxas reprodutíveis de aumento da temperatura corporal de um rato dentro da câmara. A câmara de calor foi construída a partir de madeira (comprimento de 40 cm x largura 34 cm x altura 31 cm) e foi equipada com um controlador de temperatura digital com um termopar K. Um pequeno ventilador axial equipado com um aquecedor no painel traseiro da câmara direciona o ar aquecido para a câmara regulado por um controlador de temperatura digital. Este sistema de aquecimento de ar forçado permite controlar a taxa em que a temperatura da câmara aumenta. (Figura 1A,B). O termopar K localizado dentro da câmara de calor de madeira envia feedback ao controlador de temperatura digital, para manter temperaturas constantes dentro da caixa durante o ensaio. Definir a temperatura no controlador de temperatura digital, permite que o ventilador elétrico envie ar forçado aquecido através de aberturas para aquecer uniformemente a câmara (Figura 1A). O painel frontal da câmara de calor é uma folha clara de plexiglass para permitir a gravação de vídeo fácil dos ensaios.
Camundongos adultos (P30-P40), heterozigosos para uma mutação missense em SCN1A que faz com que gefs+ e um número igual de companheiros de lixo do tipo selvagem sirvam como o grupo controle, foram selecionados para cada experimento. Os animais, tanto machos quanto fêmeas, utilizados nestes estudos pesavam pelo menos 15 g, pois os camundongos do tipo selvagem que pesavam menos eram mais sensíveis a convulsões induzidas pelo calor do que animais mais pesados da mesma idade. No estudo piloto, tanto os camundongos mutantes quanto os selvagens foram observados para procurar os cantos mais frios da câmara na parte de trás e permaneceram lá por longos períodos de tempo. Para contornar isso, o tamanho efetivo do piso dentro da arena de teste da câmara de calor foi reduzido ao comprimento de 16,5 cm x largura 21,5 cm x altura 27,5 cm colocando um bloco de madeira B (dimensões 20 cm x 8cm x 7,2 cm) no lado direito da câmara (Figura 1A). A câmara de calor foi construída a partir de madeira compensada de 1,9 cm de espessura (comprimento de 40 cm x largura 34 cm x altura 31 cm) coberta com laminado branco e equipada com um controlador de temperatura digital com um termopar K. A superfície laminada das paredes da câmara é impermeável e pode ser facilmente higienizada entre os ensaios, eliminando-se com 70% de etanol. A temperatura da câmara de calor foi inicialmente fixada em 50 °C e pré-aquecido por pelo menos 1 h antes do início do experimento, para garantir o aquecimento uniforme dentro da câmara. Cada rato foi equipado com um termômetro retal para monitoramento contínuo da temperatura corporal durante todo o experimento. Um único rato foi colocado na câmara de cada vez e a temperatura foi mantida em 50 °C entre 1º e 10º minuto. A temperatura foi então elevada para 55 °C durante o 11º-20º minuto, e finalmente aumentou para 60 °C para 21-30 minutos. Isso resultou em uma taxa reprodutível de aumento na temperatura corporal do mouse (Figura 2A). Cada ensaio foi gravado em vídeo e a análise comportamental foi realizada offline.
O protocolo de aquecimento pode ser facilmente modificado para alterar a temperatura inicial da câmara de calor e a taxa que a câmara é aquecida, o que por sua vez muda a rapidez com que a temperatura corporal do mouse é elevada durante o ensaio. Assim, este método proporciona mais flexibilidade em relação aos métodos tradicionais na configuração das telas comportamentais envolvendo convulsões induzidas pelo calor. O protocolo de convulsão induzido pelo calor também pode ser usado para rastrear drogas antiepilépticas que tornam os camundongos mutantes mais resistentes a convulsões induzidas pelo calor ou aumentam a temperatura limiar na qual as convulsões são observadas. Da mesma forma, os efeitos benéficos de regimes alimentares restritivos, como a dieta ceto em convulsões induzidas pelo calor, podem ser examinados em camundongos alimentados com chow normal versus ceto.

Figura 1: Descrição da câmara de calor do mouse personalizada. (A) O painel frontal da câmara de calor do mouse de madeira mostra o painel de controle lateral contendo o interruptor Power ON/OFF que liga o controlador de temperatura digital, o termopar K, o interruptor ON/OFF do aquecedor do ventilador e o indicador de calor. As dimensões externas da caixa e da arena de teste interna são mostradas em cm. Um bloco de madeira B usado para reduzir efetivamente a superfície da arena de teste também é mostrado. A parte inferior da arena de teste é coberta com roupa de cama de espiga para evitar que os ratos entrem em contato diretamente com superfícies de madeira aquecidas. (B) O painel traseiro da câmara de calor mostra o ventilador montado na ventilação superior e o cabo de alimentação para fornecer eletricidade à câmara. Este valor é modificado da Figura 3 em Das et al., 2021, eNeuro14. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.