A metilação do DNA, uma forma de regulação genética epigenética, é importante para a função celular normal. Nas células, as proteínas chamadas DNA metiltransferases (DNMTs) estabelecem e mantêm o padrão de metilação do DNA. Mudanças no padrão normal de metilação do DNA estão ligadas ao desenvolvimento e progressão do câncer, tornando os DNMTs potenciais alvos de medicamentos contra o câncer. Assim, identificar e caracterizar novos inibidores de pequenas moléculas dessas enzimas é de grande importância. Este trabalho apresenta um protocolo que pode ser utilizado para o rastreamento de inibidores da DNA metiltransferase. O ensaio de cinética acoplada contínua permite que as velocidades iniciais de metilação do DNA sejam determinadas na presença e ausência de potenciais inibidores de moléculas pequenas. O ensaio usa a endonuclease sensível à metila Gla I para acoplar a metilação de um substrato de DNA hemimetilado à geração de fluorescência.
Este ensaio contínuo permite que a atividade enzimática seja monitorada em tempo real. A realização do ensaio em pequenos volumes em placas de microtitulação reduz o custo dos reagentes. Usando este ensaio, uma pequena tela de exemplo foi conduzida para inibidores de DNMT1, a isoenzima DNMT mais abundante em humanos. O produto natural de antraquinona altamente substituído, o ácido lacáico A, é um potente inibidor competitivo de DNA da DNMT1. Aqui, examinamos três potenciais inibidores de moléculas pequenas - antraquinonas ou moléculas semelhantes à antraquinona com um a três substituintes - em duas concentrações para descrever o protocolo de ensaio. As velocidades iniciais são usadas para calcular a porcentagem de atividade observada na presença de cada molécula. Um dos três compostos examinados exibe inibição dependente da concentração da atividade DNMT1, indicando que é um inibidor potencial da DNMT1.