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Artigo de método

Detecção de vírus e proteínas salivares de um vetor cigarrinha no hospedeiro vegetal

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DOI:

10.3791/63020

14 de setembro de 2021

Neste artigo

Resumo

Este protocolo demonstra como utilizar o hospedeiro vegetal para detectar proteínas salivares de cigarrinhas e proteínas virais de plantas liberadas por vetores cigarrinhas.

Resumo

Insetos vetores transmitem horizontalmente muitos vírus de plantas de importância agrícola. Mais da metade dos vírus de plantas são transmitidos por insetos hemípteros que têm partes bucais sugadoras de perfuração. Durante a transmissão viral, a saliva do inseto faz a ponte vírus-vetor-hospedeiro porque os vírus vetores da saliva e as proteínas do inseto desencadeiam ou suprimem a resposta imune das plantas dos insetos para os hospedeiros das plantas. A identificação e análise funcional de proteínas salivares estão se tornando uma nova área de foco no campo de pesquisa das interações arbovírus-hospedeiro. Este protocolo fornece um sistema para detectar proteínas na saliva de cigarrinhas usando o hospedeiro da planta. O vetor cigarrinha Nephotettix cincticeps infectado com o vírus anão do arroz (RDV) serve como exemplo. A vitelogenina e a proteína P8 do capsídeo externo principal do RDV vetorado pela saliva de N. cincticeps podem ser detectadas simultaneamente na planta de arroz da qual N. cincticeps se alimenta . Este método é aplicável para testar as proteínas salivares que são temporariamente retidas no hospedeiro da planta após a alimentação do inseto. Acredita-se que este sistema de detecção beneficiará o estudo das interações hemiptera-vírus-planta ou hemiptero-planta.

Introdução

O modo de transmissão vetor-hospedeiro das arboviroses, um problema fundamental, está na fronteira das ciências biológicas. Muitos vírus de plantas de importância agrícola são transmitidos horizontalmente por insetos vetores1. Mais da metade dos vírus de plantas são vetores por insetos hemípteros, incluindo pulgões, moscas-brancas, cigarrinhas, cigarrinhas e tripes. Esses insetos possuem características distintas que lhes permitem transmitir eficientemente vírus de plantas1. Possuem partes bucais sugadoras de piercing e se alimentam da seiva do floema e do xilema, e secretam sua saliva 1,2,3,4.

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Protocolo

As cigarrinhas adultas não virulíferas foram propagadas no Centro de Pesquisa de Vírus Transmitidos por Vetores da Universidade de Agricultura e Florestas de Fujian, China.

1. Criação de insetos não virulíferos

  1. Recuar os adultos em mudas de arroz em uma gaiola cúbica de 40 cm x 35 cm x 20 cm (comprimento x largura x altura). Mantenha um lado da gaiola coberto com uma rede à prova de insetos para ventilação.
    1. Mantenha as gaiolas com cigarrinhas em uma incubadora que contenha um controlador de umidade embutido a 26 °C com uma umidade relativa de 60-75% sob um fotoperíodo de 16 h claro e 8 h escuro.
  2. Use um....

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Resultados

A Figura 1 ilustra todas as etapas desse protocolo: criação de insetos, aquisição de vírus, coleta de proteínas salivares via alimentação do arroz e western blot. Os resultados de western blots mostraram que bandas específicas e esperadas de aproximadamente 220 kDa foram observadas nas amostras de arroz alimentado e glândulas salivares de insetos na membrana incubada com anticorpos contra Vg. Em contraste, nenhuma banda foi observada na amostra de arroz não alimentado. O resultado d.......

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Discussão

A saliva secretada diretamente pelas glândulas salivares dos insetos perfurocortantes desempenha um papel fundamental, pois predigere e desintoxica os tecidos do hospedeiro e os fatores biológicos cruzados dos vetores nos hospedeiros 1,3,4. Os fatores biológicos entre reinos, incluindo eliciadores, efetores e pequenos RNAs, são críticos para a comunicação inseto-hospedeiro14,15,16

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado por subsídios da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (31772124 e 31972239) e da Fujian Agriculture and Forestry University (Grant KSYLX014).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Reagents
Tris baseRocheD609K69032Para 5× Tampão de tris-glicina e 10 vezes; Preparação de tampão TBS
glicinaSigma-AldrichWXBD0677VPara 5&vezes; Preparação de tampão de tris-glicina
SDSSigma-AldrichSLCB4394Para 5&vezes; Reagente
NaClSinopharm da10019318para 10×
KClSinopharm da10016318para 10× TBS preparação de tampão
ß-mercaptoetanolXiya ReagenteB14492Para 4&vezes; preparação de tampão de amostra de
proteína azul de bromofenolSigma-AldrichSHBL3668Para 4&vezes; preparação de tampão de amostra de proteína
glicerolSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10010618Para 4&vezes; preparação de tampão de amostra de proteína
metanolSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10014118para preparação do tampão de transferência
Tween 20Coolaber CIÊNCIA & TeCHNoLoGYCT30111220Para preparação de TBST
em pó desnatadoBecton.Dickinso e companhia252038Para bloqueio de membrana, diluição de anticorpos
cabra anti-coelho IgGSangon BiotechD110058-0001Reconhecimento do kit ocidental ECL primário
ThermoFisher Scientific32209Substrato quimioluminescente
nitrocelulose membranaPall Corporation25312915Para transferência de proteínas
Buffers and Solutions
BufferComposiçãoComentários/Descrição
  5&vezes; Tampão tris-glicina15,1 g Tris base
94 g glicina
  5 g de SDS em 1 L de água
  Solução de estoque
1 e vezes; Tampão Tris-glicina200 mL de 5× Tampão de tris-glicina
800 mL de água
Solução de trabalho, para SDS-PAGE
10&vezes; Tampão salino tamponada com Tris (TBS)80 g NaCl
30 g Tris base
2 g KCl
em 1 L de água
Solução de estoque
TBS com solução Tween 20 (TBST)100 mL 10&vezes; Solução TBS
3 mL Tween 20
900 mL de água
Solução de trabalho
4× tampão de amostra de proteína8 g SDS
4 mL de ß-mercaptoetanol
0,02 g azul de bromofenol
40 mL de glicerol
em 40 mL 0,1 M Tris-HCl (pH 6,8)
Para extração de proteínas
Tampão de transferência800 mL Tampão trisglicina
200 mL de metanol
Para transferência de
proteínasInstruments
Bromophenol blueSigma-AldrichSHBL3668Para preparação de tampão de amostra de proteína 4x
Incubadora de temperatura constanteNingbo Saifu Experimental Instrument Co., Ltd.PRX-1200BPara criação de cigarrinhas
EletroforeseTanon Science & Tecnologia Co., Ltd.Tanon EP300Para SDS-PAGE
Módulo de núcleo de transferência eletroforéticaBIO-RAD1703935Para SDS-PAGE
glicerolSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10010618Para 4x preparação de tampão de amostra de proteína
glicinaSigma-AldrichWXBD0677VPara 5x preparação de tampão de tris-glicina
cabra anti-coelho IgGSangon BiotechD110058-0001Reconhecimento do instrumento de
moagem de tecido passa-altade corpo de alta qualidade Shanghai Jingxin Industrial Development Co., Ltd.JXFSIPRP-24Para moagem de tecidos vegetais
KClSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10016318Para 10x TBS preparação de
tampão metanolSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10014118Para preparação de tampão de transferência
Mini calha de transferência de calor úmidoBIO-RAD1703930Para SDS-PAGE
NaClSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10019318Para 10x TBS tampão preparação
membrana de nitrocelulosePall Corporation25312915Para transferência de proteínas
em pó desnatadoBecton.Dickinso e companhia252038Para bloqueio de membrana, diluição de anticorpos
Pierce ECL Western kitThermoFisher Scientific32209Substrato quimioluminescente
Instrumento de cor de proteínaGE Biociências da saúde ABAmersham lmager 600Para detectar proteínas
SDSSigma-AldrichSLCB4394Para 5x preparação de tampão de tris-glicina
Base de trisRoche D609K69032Para 5x tampão de tris-glicina e 10&vezes; Preparação do tampão TBS
Tween 20Coolaber SCIENCE& CT30111220 de TeCHNoLoGYpara preparação de TBST
Tanque de eletroforese de placa verticalBIO-RAD1658001para SDS-PAGE Banho-maria
Shanghai Jinghong Experimental equipment Co., Ltd.XMTD-8222Para ferver as amostras de proteínas
β-mercaptoetanolReagente XiyaB14492Para preparação de tampão de amostra de proteína 4x
químico Co. de preparação do tampão do Tris-glicina, Ltd Reagente químico Co. de preparação do amortecedor de TBS, Ltd leite estéril estéril estéril estéril primário leite

Referências

  1. Hogenhout, S. A., Ammar el, D., Whitfield, A. E., Redinbaugh, M. G. Insect vector interactions with persistently transmitted viruses. Annual Review of Phytopathology. 46, 327-359 (2008).
  2. Cranston, P. S., Gullan, P. J. Phylogeny of insects. Encyclopedia of Insects. Resh, V. H., Carde, R. T. , Academic. Amste....

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

Detecção de Vírus de PlantasVírus do Nanismo do ArrozWestern BlotSDS-PAGETransmissão por HemípterosDetecção de VitelogeninaInteração Vírus-PlantaExtração de Proteínas