Method Article

Usando Microfluidos e Microscopia de Fluorescência para Estudar a Dinâmica de Montagem de Filamentos e Pacotes de Actin Único

DOI:

10.3791/63891

May 5th, 2022

In This Article

Summary

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Apresentamos protocolos para ensaios microfluidos de filamento de actina simples, em combinação com microscopia de fluorescência, que permitem monitorar com precisão filamentos de actina individuais em tempo real, expondo-os sequencialmente a diferentes soluções proteicas.

Abstract

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A fim de decifrar os complexos mecanismos moleculares que regulam a montagem e desmontagem de filamentos actin, é um grande trunfo monitorar reações individuais que vivem em condições bem controladas. Para isso, experimentos de filamento único ao vivo surgiram nos últimos 20 anos, principalmente usando microscopia total de fluorescência interna (TIRF) e forneceram uma série de resultados-chave. Em 2011, a fim de ampliar ainda mais as possibilidades desses experimentos e evitar artefatos problemáticos recorrentes, introduzimos microfluidos simples nesses ensaios. Este estudo detalha nosso protocolo básico, onde filamentos de actina individuais são ancorados por uma extremidade à superfície passivated de deslizamento de cobertura, alinhados com o fluxo, e podem ser sucessivamente expostos a diferentes soluções proteicas. Também apresentamos os protocolos para aplicações específicas e explicamos como forças mecânicas controladas podem ser aplicadas, graças ao arrasto viscoso da solução de fluxo. Destacamos as ressalvas técnicas desses experimentos e apresentamos brevemente possíveis desenvolvimentos com base nessa técnica. Esses protocolos e explicações, juntamente com a disponibilidade atual de equipamentos de microfluidos fáceis de usar, devem permitir que não especialistas implementem este ensaio em seus laboratórios.

Introduction

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A montagem e desmontagem de filamentos de actin e redes de filamentos de actin são controladas por diversas reações bioquímicas e dependem do contexto mecânico. Para obter uma visão desses mecanismos complexos, é inestimável ser capaz de observar reações individuais em filamentos individuais (em números suficientemente grandes). Ao longo das últimas décadas, a observação de filamentos dinâmicos de actina em tempo real, principalmente usando microscopia total de fluorescência interna (TIRF), emergiu como uma técnica-chave e forneceu uma lista impressionante de resultados que não poderiam ter sido obtidos com ensaios bioquímicos de solução em massa1

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Protocol

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1. Preparação da câmara microfluídica

  1. Selecione um molde mestre SU-8 com vários padrões de câmara. As câmaras típicas são em forma de cruz com três entradas e uma tomada, 20 μm de altura e 800 μm de largura (Figura 1). Tais moldes mestres podem ser adquiridos de empresas externas ou feitos em laboratórios acadêmicos (por exemplo, Gicquel, Y. et al.5).
  2. Coloque fita adesiva ao redor da borda do molde.
    1. Coloque ~50 cm de comprimento, 19 mm de largura, fita de escritório transparente padrão (ver Tabela de Materiais) em um banco, lado pegajoso para cima. Coloq....

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Results

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Para todos os experimentos descritos acima, filamentos de actina fluorescentemente rotulados devem ser claramente visíveis, com bom contraste, indicativo de baixa fluorescência de fundo da superfície (Figura 4, ver Arquivo Suplementar 1 para solução de problemas comuns). Os filamentos actinados também não devem ficar na superfície: quando a taxa de fluxo dominante é baixa, as flutuações laterais dos filamentos actina devem ser perceptíveis ao observá-las ao vivo e permitir q.......

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Discussion

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Comparado aos métodos padrão de filamento único, onde filamentos de actina são ancorados na superfície por vários pontos ao longo de seu comprimento ou mantidos perto dele por um agente de aglomeração como metilcelulose, os microfluidos oferecem uma série de vantagens. Como as interações com a superfície são mínimas, as pausas artificiais que essas interações podem induzir durante o alongamento e a despomerização são evitadas. Os filamentos são alinhados pelo fluxo, paralelos uns aos outros, facilitando seu monitoramento.......

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Disclosures

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Os autores não declaram conflitos de interesse.

Acknowledgements

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Somos gratos ao B. Ladoux e R.-M. Laboratório Mège para o uso de seus equipamentos de limpeza UV, e J. Heuvingh e 0. du Roure para o treinamento inicial que recebemos na preparação de moldes em wafers de silício e fornecendo dicas sobre microfluidos. Reconhecemos o financiamento do Conselho Europeu de Pesquisa Grant StG-679116 (para A.J.) e Agence Nationale de la Recherche Grants Muscactin and Conformin (para G.R.-L.).

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
β-CaseínaMerckC6905Usado a 8 mg/mL
Punção de biópsia (com êmbolo)Ted Pella15115-2ID 0,75 mm, OD 1,07 mm
Biotina-BSAMerckA8549Usado a 1 mg/mL
BSAMerckA8022Usado a 50 mg/mL
Coverslip Mini-Rack
Suporte de teflon
InvitrogenC14784para 8 lamínulas
Lamínulas 22x40mm
Espessura #1.5
Menzel Glä ser631-1370
DABCOMerckD27802componente em f-buffer
DTTEuromedexEU0006-Dcomponente em f-buffer
Éster NHS Alexa Fluor 488InvitrogenA20000Fluoróforo para marcação de actina em Lys328.
EZ-Link Sulfo-NHS-BiotinaThermo Scientific21338Para biotinilato de actina em Lys328
Hellmanex IIIHellma9-307-011-4-507Detergente para limpeza de vidros
ImageJNIHN / Asoftware de código aberto
LaboportKNF811kn.18bomba de vácuo (vácuo final: 240 mbar)
Fita mágica invisívelScotch7100024666fita de escritório transparente padrão
MicrewtubeSimportT341-6T2 mL tubos de reservatório microfluídico
Dispositivo microfluídico Parte 1: Unidade de fluxo SFluigente FLUIGENTFLU-S-D-PCKBMedidor de vazão
Dispositivo microfluídico Parte 2: Fluiwell-4C-2 mLFluigent14002001PCKSuporte de reservatório
Dispositivo microfluídico Parte 3: MFCS-EZFluigentEZ-11000001
EZ-00345001 Controlador de
pressão
modelo 42 - UVO-CleanerJelight Inc.42-220Limpador ultravioleta
N6-(6-Aminohexil)-ATP-ATTO-488Jena BioscienceNU-805-488ATP-ATTO usado para rotular a actina
neutravidinaThermo Scientific31000
PLL-PEGSuSoSPLL(20)-g[3.5]- PEG(2)Use a 1 mg/mL em PBS.
Polidimetilsiloxano (PDMS) Sylgard 184 Elastômero de SilícioDow Corning1673921Contém base PDMS e agente de cura
Tubulação de polieteretercetona (PEEK)MerckZ226661" Azul" : I.D. = 0,25 mm
Pistola de sopro de segurançaCoilhose Pneumatics700-Sar filtrado
Tubo de silícioVWR228-0701Pconecta PEEK ao acoplador
Acoplador de cateter em aço inoxidávelPrime BioscienceSC22/15Inserido nas entradas e saídas do PDMS para conectar ao tubo PEEK
Filme termoplásticoSigma AldrichPM996"parafilme" padrão
Etanol ultrapuroVWR64-17-5
Banho de limpeza ultrassónicoVWRUSC200THPara acomodar copos de 1 L
Exsicador a vácuoSP Bel-ArtF42022-0000para desgaseificar o PDMS ou soluções

References

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  1. Wioland, H., Jégou, A., Romet-Lemonne, G. Celebrating 20 years of live single-actin-filament studies with five golden rules. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 119 (3), 2109506119(2022).
  2. Kuhn, J. R., Pollard, T. D.

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Actin Filament AssemblyMicrofluidics AssayFluorescence MicroscopyTIRF MicroscopyActin BundlesFilament PolymerizationFilament DepolymerizationSurface PassivationActin Binding ProteinsMechanical Forces

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