O uso de porcos em pesquisas tem aumentado nos últimos anos. No entanto, os porcos são caracterizados pela anatomia difícil das vias aéreas. Ao demonstrar como realizar a intubação endotraqueal guiada endoscopicamente, o presente protocolo visa aumentar ainda mais a segurança dos animais de laboratório para evitar o sofrimento dos animais e a morte desnecessária.
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Artigo de método
Intubação endotraqueal usando um endoscópio de intubação flexível como modelo padronizado para o manejo seguro das vias aéreas em suínos
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Resumo
Resumo
A intubação endotraqueal é muitas vezes um requisito básico para a pesquisa translacional em modelos suínos para várias intervenções que requerem uma via aérea segura ou altas pressões de ventilação. A intubação endotraqueal é uma habilidade desafiadora, exigindo um número mínimo de intubações endotraqueais bem-sucedidas para alcançar uma alta taxa de sucesso em condições ideais, o que muitas vezes é inatingível para pesquisadores não anestesiologistas. Devido à anatomia específica das vias aéreas suínas, uma via aérea difícil geralmente pode ser assumida. A impossibilidade de estabelecer uma via aérea segura pode resultar em ferimentos, eventos adversos ou morte do animal de laboratório. Usando uma abordagem de avaliação prospectiva, randomizada e controlada, demonstrou-se que a intubação endotraqueal assistida por fibra óptica leva mais tempo, mas tem uma taxa de sucesso de primeira passagem maior do que a intubação convencional sem causar quedas clinicamente relevantes na saturação de oxigênio. Este modelo apresenta um esquema padronizado para intubação endotraqueal guiada endoscopicamente, proporcionando uma via aérea segura, especialmente para pesquisadores que são inexperientes na técnica de intubação endotraqueal via laringoscopia direta. Espera-se que este procedimento minimize o sofrimento animal e as perdas desnecessárias de animais.
Introdução
A intubação endotraqueal é frequentemente um requisito básico para a pesquisa translacional em modelos suínos para várias intervenções que requerem uma via aérea segura ou altas pressões ventilatórias (como ventilação durante a ressuscitação cardiopulmonar1 ou síndrome do desconforto respiratório agudo2) ou exigem que o fluxo sanguíneo cerebral não seja comprometido por compressão interna por dispositivos de vias aéreas supraglóticas3 , que são ocasionalmente propagadas como alternativas no contexto de uma via aérea difícil prevista em suínos 4,5.
Embora a fisiologia pulmonar dos suínos apresente características semelhantes às dos seres humanos6, a fixação das vias aéreas é, por vezes, significativamente mais difícil7 devido a diferenças específicas na anatomia orotraqueal suína. O focinho de um porco tem uma abertura estreita com uma língua muito grande, a laringe é extremamente móvel e a epiglote é relativamente grande, com uma extremidade livre que se estende até o palato mole. Caudally, a laringe forma um ângulo obtuso com a traqueia. As cartilagens aritenóides são grandes8. A parte mais estreita da via aérea encontra-se no nível subglótico9, comparável à anatomia das vias aéreas de crianças10. Como a laringe em suínos é muito móvel, existe o risco de que a extremidade do tubo endotraqueal passe pelas pregas vocais, mas a laringe só seja deslocada caudalmente em até vários centímetros, o que pode ser confundido com uma intubação correta 8,11. Além disso, a intubação esofágica é um risco comum quando se lida com o manejo das vias aéreas suínas12.
As taxas de intubações endotraqueais difíceis ou impossíveis com impacto negativo correspondente no experimento ou mortalidade precoce não têm sido sistematicamente registradas, mas vários relatos de casos têm sido publicados13,14. Em humanos, existe a possibilidade de utilização de um endoscópio de intubação flexível no contexto de uma intubação convencional inesperadamente difícil15. Várias intubações falsas muitas vezes precedem essa medida. Essas repetidas tentativas de intubação estão associadas a eventos adversos em humanos16,17, especialmente complicações das vias aéreas 18. Tais eventos são deletérios em animais de teste, uma vez que, no caso mais simples, representam uma variável de confusão no experimento; na pior das hipóteses, podem levar à perda desnecessária do animal.
O presente estudo desenvolveu um modelo baseado nas diretrizes para o manejo difícil esperado das vias aéreas em humanos 15,19,20,21,22,23,24. Anteriormente, uma técnica semelhante foi descrita para o aprendizado da intubação por fibra óptica em estudos com humanos25,26. O protocolo apresentado neste relatório tem como objetivo fornecer um modelo de intubação padronizado e fácil de adaptar que também permita que especialistas não aéreos realizem intubação endotraqueal bem-sucedida e segura em suínos.
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Protocolo
Os experimentos deste protocolo foram aprovados pelo Comitê Estadual e Institucional de Cuidados com os Animais (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, Koblenz, Alemanha; aprovação nº G20-1-135). Os experimentos foram conduzidos seguindo as diretrizes do ARRIVE. No geral, 10 suínos machos anestesiados (Sus scrofa domestica) com peso médio de 30 kg ± 2 kg e 12-16 semanas de idade foram utilizados para o presente estudo.
1. Preparação animal
- Mantenha um ambiente normal para os animais para minimizar o estresse. Reter alimentos 6 h antes do experimento programado para diminuir o risco de aspiração, mas permitir o acesso à água.
- Sedato os suínos com uma injeção combinada de midazolam (0,5 mg/kg) e azaterona (2-3 mg/kg) (ver Tabela de Materiais) no músculo glúteo ou pescoço com uma agulha (20 G) para injeção intramuscular. Deixe os animais intactos até que a sedação se estabeleça (15-20 min).
NOTA: Dependendo da regulamentação nacional, a administração de agentes sedativos pode estar sujeita a escrutínio e pode ou não exigir a supervisão de um veterinário treinado. Consulte as autoridades locais antes de planear as experiências. - Transporte os animais sedados dos estábulos para o laboratório. O tempo de transporte não deve exceder o tempo de sedação adequado (aqui, 30-60 min). Garantir uma retenção de calor suficiente para que o animal não fique hipotérmico (ou seja, abaixo de 38 °C), por exemplo, cobrindo o corpo com um cobertor, dependendo da temperatura externa.
- Usando um sensor (ver Tabela de Materiais) preso à orelha ou cauda, monitore a saturação periférica de oxigênio (SpO2).
- Desinfete a pele com um desinfetante (alcoólatra) antes de inserir uma cânula venosa periférica (22 G) em uma veia da orelha. Pulverize a área, limpe uma vez, depois pulverize novamente e deixe o desinfetante secar. Prenda a cânula auricular com um band-aid (Ver Tabela de Materiais).
2. Anestesia e ventilação mecânica
- Administrar analgesia através de uma injeção intravenosa de 4 μg/kg de fentanil. Induzir anestesia com uma injeção intravenosa de 3 mg/kg de propofol (ver Tabela de Materiais).
NOTA: Devido à aplicação em bolus, a droga inunda rapidamente o compartimento ativo, proporcionando um rápido início de anestesia profunda. - Coloque o porco em uma maca em decúbito dorsal e fixe-o com ataduras. Aplicar relaxante muscular através de uma injeção intravenosa de 0,5 mg/kg de atracúrio (ver Tabela de Materiais).
- Inicie instantaneamente a ventilação não invasiva através de uma máscara de ventilação para cães (ver Tabela de Materiais) ou modelos semelhantes. Para garantir um ajuste apertado da máscara, coloque a eminência tenar e os polegares de ambas as mãos em cima da máscara enquanto realiza o impulso da mandíbula com os dedos restantes.
NOTA: Parâmetros ventilatórios: FiO 2 (fração inspiratória de oxigênio) = 100%, pressão inspiratória de pico = <20cmH 2 0, frequência respiratória = 18-20 respirações/min, PEEP (pressão expiratória final positiva) = 5 cmH2 0. - Manter a anestesia através de infusão contínua de 0,1-0,2 mg/kg/h de fentanil e 8-12 mg/kg/h de propofol. Comece a infundir com 5 mL/kg/h de solução eletrolítica balanceada (ver Tabela de Materiais) continuamente. Manter constantemente uma profundidade adequada de anestesia.
NOTA: Os parâmetros substitutos para isso são a ausência de movimento, a falta de esforços respiratórios próprios após a intubação e a ausência de um aumento súbito da frequência cardíaca. Se possível, evite o relaxamento muscular permanente para permitir reações motoras como um sinal de profundidade insuficiente da anestesia.
3. Intubação endotraqueal
- Tenha um assistente no lado esquerdo da cabeça. Peça à mão esquerda do assistente que abra a boca e aperte a língua para fora e saia com uma compressa. Peça ao assistente para pressionar o lábio superior direito com o dedo indicador direito para proporcionar uma melhor abertura da boca.
- Realizar laringoscopia direta. Para fazer isso, insira o laringoscópio (consulte Tabela de Materiais) no lado direito da boca e empurre-o para a frente enquanto empurra a língua para a esquerda. Avance a ponta do laringoscópio até que ele descanse na valécula epiglótica.
NOTA: A epiglote geralmente obscurece a glote aderindo ao palato mole. - Empurre cuidadosamente a epiglote para o lado com um fio guia de tubo (ver Tabela de Materiais) com um movimento suave de colagem do recesso piriforme direito para a esquerda ao longo do palato mole.
- Passe a alça do laringoscópio para o assistente para fixá-lo na posição atual.
- Agora, pegue o endoscópio de intubação flexível no qual um tubo endotraqueal já foi montado e que está conectado a um monitor de vídeo. Insira o endoscópio por via oral e avance-o sobre a base da língua até que a glote seja visualizada.
NOTA: Para evitar o embaçamento da câmera, recomenda-se a aplicação prévia de agentes antiembaçantes (consulte Tabela de materiais). - Avançar o endoscópio entre os ligamentos vocais para a traqueia. Confirme a anatomia da traqueia identificando visualmente os anéis cartilaginosos e a pars membranacea. Avance o endoscópio até que ele descanse acima da carina. Tente não tocar a mucosa sensível com a ponta do endoscópio para evitar inchaço e sangramento.
- Enquanto mantém a posição do endoscópio, avance o tubo endotraqueal até que ele se torne visível na imagem da câmera.
NOTA: Se o tubo endotraqueal não pode ser avançado através do plano glótico, existe a possibilidade de que ele tenha ficado preso na cartilagem aritenóidea. Neste caso, o tubo endotraqueal deve ser retirado 1 cm e girado em 90° antes de avançar suavemente novamente. Se necessário, esta manobra pode ser repetida. Calibres semelhantes de endoscópio de intubação flexível e tubo endotraqueal podem minimizar o risco de ocorrência desse problema. Se o tubo endotraqueal não puder ser avançado apesar dessa manobra, é provável que a estreiteza subglótica - a parte mais estreita da laringe suína - não possa ser ultrapassada. Neste caso, um tamanho menor do tubo endotraqueal precisa ser selecionado. Tubos endotraqueais regulares comercialmente disponíveis nos tamanhos 6,5 cm ou 7,0 cm ID devem ser capazes de passar pela glote, desde que não haja anormalidades anatômicas. Os requisitos de tamanho do tubo endotraqueal variam dependendo do tamanho e da raça do leitão. - Retire o endoscópio de intubação flexível, mantendo a posição do tubo endotraqueal.
- Usando uma seringa de 10 mL, insufle o manguito com 10 mL de ar. Controle a pressão do manguito com um gerenciador de manguito (valor-alvo: 30 cmH2O, consulte Tabela de Materiais).
- Confirmar a correta colocação do tubo endotraqueal e ventilação adequada por exalação periódica e regular de dióxido de carbono via capnografia24 e ventilação frente e verso via ausculta 15.
- Iniciar a ventilação mecânica após a conexão do tubo com um ventilador (PEEP = 5 cmH 2 O, frequência respiratória = variável para atingir um CO 2 final de maré de <6 kPa, geralmente 30-50 min−1, FiO 2 = 0,4, I:E (relação inspiração-expiração) = 1:2, volume corrente = 6-8 mL/kg).
- Expandir a monitorização (por exemplo, o estabelecimento de uma medida da pressão arterial intra-arterial, a instalação de um cateter arterial venoso ou pulmonar central27) ou continuar com a intervenção.
NOTA: Dependendo da questão dos experimentos futuros, definir valores-limite para os parâmetros vitais e opções de intervenção e estabelecer o monitoramento de acordo com o protocolo de estudo.
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Resultados
A intubação endotraqueal foi realizada em 10 suínos machos (idade de 12 a 16 semanas, peso 30 kg ± 3 kg) em um ambiente de estudo prospectivo, randomizado e controlado. Os suínos foram randomizados em dois grupos: um foi convencionalmente intubado laringoscopicamente (grupo IC), e o outro grupo foi intubado assistido por meio de endoscópio de intubação flexível, conforme descrito no protocolo (grupo FIE). A atribuição do grupo foi feita puxando envelopes lacrados. O investigador foi designado aleatoriamente em u...
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Discussão
Em estudos anteriores, nosso grupo de pesquisa já descreveu detalhes específicos sobre os benefícios translacionais do modelo suíno 2,27,32,33. Geralmente, a redução do nível de estresse do animal e a dor desnecessária devem ser parte integrante de qualquer protocolo de estudo e é fundamental para gerar dados reprodutíveis de forma confiável. Portanto, a intubação guiada endoscopicamente acorda...
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Divulgações
O endoscópio de intubação flexível e seus acessórios foram fornecidos incondicionalmente pelo fabricante apenas para fins de pesquisa. Os autores declaram não haver mais conflitos de interesse financeiros ou outros.
Agradecimentos
Os autores querem agradecer a Dagmar Dirvonskis por seu excelente suporte técnico.
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Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Ambu aScope Regular | Ambu GmbH, Medizinprodukte, Bad Nauheim, Alemanha | Diâmetro externo de fibra óptica descartável 5 mm | |
| Ambu aView Monitor | Ambu GmbH, Medizinprodukte, Bad Nauheim, Alemanha | monitor | |
| Atracurium Hikma 50 mg/5mL | Hikma Pharma GmbH, Martinsried | atracurium | |
| Azaperone (Stresnil) 40mg/mL | Lilly Deutschland GmbH, Bad Homburg, Alemanha | azaperona | |
| BD Discardit II Spritze 2, 5, 10, 20 mL | Becton Dickinson S.A. Carretera, Mequinenza Fraga, Espanha | seringa | |
| BD Luer Connecta | Becton Dickinson Infusion Therapy, AB Helsingborg, Schweden | 3-way-stopcock | |
| BD Microlance 3 20 G | Becton Dickinson S.A. Carretera, Mequinenza Fraga, Espanha | cânula | |
| Curafix i.v. clássicos | Lohmann & Rauscher International GmbH & Co. KG, Rengsdorf, Alemanha | Curativo de retenção de cânula | |
| Engströ m Carestation | GE Heathcare, Madison USA | ventilador | |
| Fentanyl-Janssen 0,05 mg/mL | Janssen-Cilag GmbH, Neuss | fentanil | |
| Fü hrungsstab, Durchmesser 4.3 | Rü | introdutor de tubo endotraqueal | |
| IBM SPSS Statistics for Windows, Versão 20 | IBM SPSS Statistics for Windows, Versão 20.0. Armonk, NY: IBM Corp.) | Software estatístico | |
| Incetomat-line 150 cm | Fresenius, Kabi Deutschland, GmbH | perfusor line | |
| Intrafix Primeline | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | Linha de infusão | |
| JOZA Einmal Nitril Untersuchungshandschuhe | JOZA, Mü nchen, Alemanha | descartáveis | |
| Laringoscópio, 45.48.50, KL 2000 | Medicon | Cabo de laringoscópio | |
| Littmann Classic III Estetoscópio | 3M Deutschland GmbH, Neuss, Alemanha | estetoscópio | |
| Luer Lock | B.Braun Melsungen AG, Alemanha | ||
| Mutilado Vlieskompresse | Maimed GmbH, Neuenkirchen, Alemanha | Compressa de lã para fixar a língua | |
| Masimo LNCS Adtx SpO2 sensor | Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 EUA | clipe de saturação para a cauda | |
| Masimo LNCS TC-I SpO2 sensor de clipe de orelha | Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 EUA | Clipe de saturação para a orelha | |
| Masimo Radical 7 | Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 EUA | saturação de oxigênio perifêneo | |
| Midazolam 15 mg/3 mL | Hameln Pharma GmbH, Hameln, Alemanha | midazolam | |
| Midmark Máscara Canina Pequeno Plástico com Diafragma FRSCM-0005 | Midmark Corp., Dayton, Ohio, EUA | máscara de ventilação para cães | |
| Octeniderm farblos | Schü lke & Mayr GmbH, Nordenstedt, Alemanha | Desinfetante alcoólico | |
| Seringa Perfusor original 50 mL | B.Braun Melsungen AG, Alemanha | seringa perfusor | |
| Perfusor FM Braun | B.Braun Melsungen AG, Alemanha | bomba de seringa | |
| Propofol 2% 20 mg/mL (frascos de 50 mL) | Fresenius, Kabi Deutschland, GmbH | propofol | |
| RÜ SCH Fü hrungsstab fü r Endotraquealtubus (ID 5,6 mm) | Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malásia | Fio guia de tubo revestido de PVC | |
| Rü schelit Super Safety Clear >ID 6/6.5 /7.0 mm | Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malásia | tubo endotraqueal | |
| Aço inoxidável Macintosh Grö ß e 4 | Welch Allyn69604 | lâmina para laringoscópio | |
| Sterofundin | B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Alemanha | Solução eletrolítica balanceada | |
| Ultrastop Frasco antibeschlagmittel com conta-gotas 25 mL | Sigmapharm Arzneimittel GmbH, Wien, Áustria | Agente antiembaçante | |
| Vasofix Safety 22 G-16 G | B.Braun Melsungen AG, Alemanha | cateter | |
| venosoManômetro de manguito VBM | VBM Medizintechnik GmbH, Sulz a.N., Alemanha | manômetro de manguito | |
| Zelette | Lohmann & Rauscher International GmbH & Co. KG, Rengsdorf, Alemanha | Cotonete de tecido |
Referências
- Kleinman, M. E., Oh, W., Stonestreet, B. S. Comparison of intravenous and endotracheal epinephrine during cardiopulmonary resuscitation in newborn piglets. Critical Care Medicine. 27 (12), 2748-2754 (1999).
- Rissel, R., et al. Bronchoalveolar lavage and oleic acid-injection in pigs as a double-hit model for acute respiratory distress syndrome (ARDS). Journal of Visualized Experiments. (159), e61358(2020).
- Segal, N., et al. Impairment of carotid artery blood flow by supraglottic airway use in a swine model of cardiac arrest. Resuscitation. 83 (8), 1025-1030 (2012).
- Goldmann, K., Kalinowski, M., Kraft, S. Airway management under general anaesthesia in pigs using the LMA-ProSeal: A pilot study. Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 32 (5), 308-313 (2005).
- Wemyss-Holden, S. A., Porter, K. J., Baxter, P., Rudkin, G. E., Maddern, G. J. The laryngeal mask airway in experimental pig anaesthesia. Lab Animal. 33 (1), 30-34 (1999).
- Kobayashi, E., Hishikawa, S., Teratani, T., Lefor, A. T. The pig as a model for translational research: overview of porcine animal models at Jichi Medical University. Transplantation Research. 1 (1), 8(2012).
- Judge, E. P., et al. Anatomy and bronchoscopy of the porcine lung. A model for translational respiratory medicine. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 51 (3), 334-343 (2014).
- Dondelinger, R. F., et al. Relevant radiological anatomy of the pig as a training model in interventional radiology. European Radiology. 8 (7), 1254-1273 (1998).
- Nickel, R., Schummer, A., Seiferle, E. Lehrbuch der Anatomie der Haustiere, Band I: Bewegungsapparat. , Parey. Singhofen, Germany. (2003).
- Wani, T. M., Rafiq, M., Akhter, N., AlGhamdi, F. S., Tobias, J. D. Upper airway in infants-A computed tomography-based analysis. Paediatric Anaesthesia. 27 (5), 501-505 (2017).
- Chum, H., Pacharinsak, C. Endotracheal intubation in swine. Lab Animal. 41 (11), 309-311 (2012).
- Ettrup, K. S., et al. Basic surgical techniques in the Göttingen minipig: Intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion. Journal of Visualized Experiments. (52), e2652(2011).
- Steinbacher, R., von Ritgen, S., Moens, Y. P. S. Laryngeal perforation during a standard intubation procedure in a pig. Laboratory Animals. 46 (3), 261-263 (2012).
- Iliff-Sizemore, S. A., Chrisp, C. E., Rush, H. G. Peritracheolaryngeal abscess: An iatrogenic complication of endotracheal intubation in swine. Laboratory Animal Science. 39 (5), 455-458 (1989).
- Piepho, T., et al. S1 guidelines on airway management. Der Anaesthesist. 64 (11), 859-873 (2015).
- Mort, T. C. Emergency tracheal intubation: Complications associated with repeated laryngoscopic attempts. Anesthesia & Analgesia. 99 (2), 607-613 (2004).
- Hasegawa, K., et al. Association between repeated intubation attempts and adverse events in emergency departments: An analysis of a multicenter prospective observational study. Annals of Emergency Medicine. 60 (6), 749-754 (2012).
- Martin, L. D., Mhyre, J. M., Shanks, A. M., Tremper, K. K., Kheterpal, S. 3,423 emergency tracheal intubations at a university hospital: airway outcomes and complications. Anesthesiology. 114 (1), 42-48 (2011).
- Ahmad, I., et al. Difficult Airway Society guidelines for awake tracheal intubation (ATI) in adults. Anaesthesia. 75 (4), 509-528 (2020).
- Frerk, C., et al. Difficult Airway Society 2015 guidelines for management of unanticipated difficult intubation in adults. British Journal of Anaesthesia. 115 (6), 827-848 (2015).
- Cook, T. M., et al. Consensus guidelines for managing the airway in patients with COVID-19: Guidelines from the Difficult Airway Society, the Association of Anaesthetists the Intensive Care Society, the Faculty of Intensive Care Medicine and the Royal College of Anaesthetists. Anaesthesia. 75 (6), 785-799 (2020).
- Kornas, R. L., Owyang, C. G., Sakles, J. C., Foley, L. J., Mosier, J. M. Evaluation and management of the physiologically difficult airway: Consensus recommendations from Society for Airway Management. Anesthesia & Analgesia. 132 (2), 395-405 (2021).
- Higgs, A., et al. Guidelines for the management of tracheal intubation in critically ill adults. British Journal of Anaesthesia. 120 (2), 323-352 (2018).
- Apfelbaum, J. L., et al. American Society of Anesthesiologists Practice Guidelines for Management of the Difficult Airway. Anesthesiology. 136 (1), 31-81 (2022).
- Doyle, D. J. GlideScope-assisted fiberoptic intubation: A new airway teaching method. Anesthesiology. 101 (5), 1252(2004).
- Lenhardt, R., et al. Is video laryngoscope-assisted flexible tracheoscope intubation feasible for patients with predicted difficult airway? A prospective, randomized clinical trial. Anesthesia & Analgesia. 118 (6), 1259-1265 (2014).
- Ruemmler, R., Ziebart, A., Garcia-Bardon, A., Kamuf, J., Hartmann, E. K. Standardized model of ventricular fibrillation and advanced cardiac life support in swine. Journal of Visualized Experiments. (155), e60707(2020).
- Dodge, Y. Kolmogorov-Smirnov Test. The Concise Encyclopedia of Statistics. , Springer. New York, NY. 283-287 (2008).
- Ross, A., Willson, V. L. Independent Samples T-test. Basic and Advanced Statistical Tests: Writing Results Sections and Creating Tables and Figures. , SensePublishers. Rotterdam, The Netherlands. 13-16 (2017).
- Mann, H. B., Whitney, D. R. On a test of whether one of two random variables is stochastically larger than the other. The Annals of Mathematical Statistics. 18 (1), 50-60 (1947).
- Spearman, C. The proof and measurement of association between two things. American Journal of Psychology. 100 (3-4), 441-471 (1987).
- Ziebart, A., et al. Standardized hemorrhagic shock induction guided by cerebral oximetry and extended hemodynamic monitoring in pigs. Journal of Visualized Experiments. (147), e59332(2019).
- Kamuf, J., et al. Oleic acid-injection in pigs as a model for acute respiratory distress syndrome. Journal of Visualized Experiments. (140), e57783(2018).
- Kurita, T., Kawashima, S., Morita, K., Nakajima, Y. Assessment of the benefits of head-up preoxygenation using near-infrared spectroscopy with pulse oximetry in a swine model. Journal of Clinical Monitoring and Computing. 35 (1), 155-163 (2021).
- Ruemmler, R., Ziebart, A., Ott, T., Dirvonskis, D., Hartmann, E. K. Flexible fibreoptic intubation in swine - Improvement for resident training and animal safety alike. BMC Anesthesiology. 20 (1), 206(2020).
- Cook, J. A., Ramsay, C. R., Fayers, P. Using the literature to quantify the learning curve: A case study. International Journal of Technology Assessment in Health Care. 23 (2), 255-260 (2007).
- Buis, M. L., Maissan, I. M., Hoeks, S. E., Klimek, M., Stolker, R. J. Defining the learning curve for endotracheal intubation using direct laryngoscopy: A systematic review. Resuscitation. 99, 63-71 (2016).
- Knapp, S., et al. The assessment of four different methods to verify tracheal tube placement in the critical care setting. Anesthesia & Analgesia. 88 (4), 766-770 (1999).
- Schmidt, R. F. Physiologie des Menschen. 31, Springer. New York, NY. (2010).
- Eberlein, C. M., Luther, I. S., Carpenter, T. A., Ramirez, L. D. First-pass success intubations using video laryngoscopy versus direct laryngoscopy: A retrospective prehospital ambulance service study. Air Medical Journal. 38 (5), 356-358 (2019).
- Lohse, J., Noppens, R. Awake video laryngoscopy - An alternative to awake fiberoptic intubation. Anasthesiologie, Intensivmedizin, Notfallmedizin, Schmerztherapie. 51 (11-12), 656-663 (2016).
- Johnson, C., Roberts, J. T. Clinical competence in the performance of fiberoptic laryngoscopy and endotracheal intubation: A study of resident instruction. Journal of Clinical Anesthesia. 1 (5), 344-349 (1989).
- Geovanini, G. R., Pinna, F. R., Prado, F. A., Tamaki, W. T., Marques, E. Standardization of anesthesia in swine for experimental cardiovascular surgeries. Revista Brasileira de Anestesiologia. 58 (4), 363-370 (2008).
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Reimpressões e permissões
Errata
Formal Correction: Erratum: Endotracheal Intubation Using a Flexible Intubation Endoscope As a Standardized Model for Safe Airway Management in Swine
Posted by JoVE Editors on 4/03/2023. Citeable Link.
An erratum was issued for: Endotracheal Intubation Using a Flexible Intubation Endoscope As a Standardized Model for Safe Airway Management in Swine. The Protocol, Representative Results, and Discussion sections were updated.
In the Protocol, step 1.5 was updated from:
Disinfect the skin with a disinfectant (alcoholic) before inserting a peripheral vein cannula (22 G) into an ear vein. Spray the area, wipe once, then spray again, and allow the disinfectant to dry.
to:
Disinfect the skin with a disinfectant (alcoholic) before inserting a peripheral vein cannula (22 G) into an ear vein. Spray the area, wipe once, then spray again, and allow the disinfectant to dry. Secure the ear cannula with a band-aid (See Table of Materials).
In the Protocol, step 3.7 was updated from:
While maintaining the position of the endoscope, advance the endotracheal tube until it becomes visible in the camera image.
NOTE: If the endotracheal tube cannot be advanced through the glottic plane, there is a possibility that it has become caught on the arytenoid cartilage. In this case, the endotracheal tube must be withdrawn 1 cm and rotated by 90° before gently advancing again. If necessary, this maneuver can be repeated. Similar calibers of flexible intubation endoscope and endotracheal tube can minimize the risk of this issue occurring. If the endotracheal tube cannot be advanced despite this maneuver, it is likely that the subglottic narrowness-the narrowest part of the porcine larynx-cannot be passed. In this case, a smaller endotracheal tube size needs to be selected. Regular commercially available endotracheal tubes in sizes 6.5 cm or 7.0 cm ID should be able to pass the glottis as long as no anatomic abnormalities are present.
to:
While maintaining the position of the endoscope, advance the endotracheal tube until it becomes visible in the camera image.
NOTE: If the endotracheal tube cannot be advanced through the glottic plane, there is a possibility that it has become caught on the arytenoid cartilage. In this case, the endotracheal tube must be withdrawn 1 cm and rotated by 90° before gently advancing again. If necessary, this maneuver can be repeated. Similar calibers of flexible intubation endoscope and endotracheal tube can minimize the risk of this issue occurring. If the endotracheal tube cannot be advanced despite this maneuver, it is likely that the subglottic narrowness-the narrowest part of the porcine larynx-cannot be passed. In this case, a smaller endotracheal tube size needs to be selected. Regular commercially available endotracheal tubes in sizes 6.5 cm or 7.0 cm ID should be able to pass the glottis as long as no anatomic abnormalities are present. Endotracheal tube size requirements vary depending on the piglet size and breed.
In the Representative Results, the sixth paragraph was updated from:
Statistical analyses were performed using commercially available software (see Table of Materials). Normal distribution was examined using the Kolmogorov-Smirnoff test28. If a normal distribution was determined, group differences were analyzed using t-tests of independent samples29 or the Mann-Whitney U test30 for the non-parametric version. Data are presented as mean (± standard deviation). Correlations of ordinal-scale data were examined using Spearman's correlation coefficient31. A significance level of p < 0.05 was assumed.
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Statistical analyses were performed using commercially available software (see Table of Materials). Normal distribution was examined using the Kolmogorov-Smirnoff test28. If a normal distribution was determined, group differences were analyzed using t-tests of independent samples29 or the Mann-Whitney U test30 for the non-parametric version. Data are presented as mean (± standard deviation). Correlations of ordinal-scale data were examined using Spearman's correlation coefficient31. A significance level of p < 0.05 was assumed. All tests were performed with exploratory intention; therefore p-values are descriptive. Nevertheless, p < 0.05 was accepted as indicative of statistical significance.
In the Representative Results, the legend for figure 1 was updated from:
Figure 1: Number of intubation attempts in group comparison. For the group that was intubated using a flexible intubation endoscope, every intubation attempt was successful; in the group that was conventionally intubated, it took an average of 1.4 attempts before the endotracheal tube could be placed correctly. Error bars show the standard deviation. Please click here to view a larger version of this figure.
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Figure 1: Number of intubation attempts in group comparison. For the group that was intubated using a flexible intubation endoscope, every intubation attempt was successful; in the group that was conventionally intubated, it took an average of 1.4 attempts before the endotracheal tube could be placed correctly. Error bars show the standard deviation. n = 5 (for each group). Please click here to view a larger version of this figure.
In the Representative Results, figure 2 was updated from:
Figure 2: Time until CO2 detection in group comparison. For the group that was intubated using a flexible intubation endoscope, it took significantly longer until end-tidal CO2 could be detected, depicted as mean and standard deviation. Please click here to view a larger version of this figure.
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Figure 2: Time until CO2 detection in group comparison. For the group that was intubated using a flexible intubation endoscope, it took significantly longer until end-tidal CO2 could be detected, depicted as mean and standard deviation. n = 5 (for each group). Please click here to view a larger version of this figure.
In the Discussion, the fifth paragraph was updated from:
The increased duration had no clinical significance in this cohort. At no time was the termination criterion-a saturation of less than 93%-reached. This is shown in the results because a procedure change was unnecessary at any time. Prior adequate mask ventilation is a critical step to allow sufficient time for fiberoptic endotracheal tube placement to avoid rapid desaturation34. These results are consistent with previous studies comparing conventional intubation and endoscopically assisted intubations with inexperienced providers35.
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The increased duration had no clinical significance in this cohort. At no time was the termination criterion-a saturation of less than 93%-reached. This is shown in the results because a procedure change was unnecessary at any time. Prior adequate mask ventilation is a critical step to allow sufficient time for fiberoptic endotracheal tube placement to avoid rapid desaturation34. These results are consistent with previous studies comparing conventional intubation and endoscopically assisted intubations with inexperienced providers35. We attribute the prolonged duration of fiberoptic intubation to the fact that one must first reorient again after insertion, whereas with conventional intubation, one retains a view of the glottis. It is also important to avoid contact with the mucosa with the flexible intubation endoscope during advancement. This requires occasional corrective maneuvers. Last but not least, after successful placement, retraction of the relatively long endoscope is required, which increases the time to CO2 detection slightly.
