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Artigo de método

Determinação da Duração da Fase S Usando a Incorporação de 5-Etil-2'-desoxiuridina em Saccharomyces cerevisiae

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DOI:

10.3791/64490

21 de outubro de 2022

Neste artigo

Resumo

Descrevemos dois protocolos complementares para determinar com precisão a duração da fase S em S. cerevisiae usando EdU, um análogo da timidina, que é incorporado in vivo e detectado usando a química Click por microscopia e citometria de fluxo. Ele permite a fácil caracterização da duração da replicação do DNA e defeitos de replicação negligenciados em mutantes.

Resumo

A replicação do DNA eucariótico é um processo altamente regulado que garante que o modelo genético de uma célula seja corretamente duplicado antes da segregação cromossômica. Como os defeitos de síntese de DNA estão subjacentes aos rearranjos cromossômicos, o monitoramento da replicação do DNA tornou-se essencial para entender a base da instabilidade do genoma. Saccharomyces cerevisiae é um modelo clássico para estudar a regulação do ciclo celular, mas os principais parâmetros de replicação do DNA, como a fração de células na fase S ou a duração da fase S, ainda são difíceis de determinar. Este protocolo utiliza pulsos curtos e não tóxicos de 5-etil-2'-desoxiuridina (EdU), um análogo da timidina, em células de levedura TK-hENT1 modificadas, seguidas de sua detecção por reação Click para permitir a visualização e quantificação da replicação do DNA com alta resolução espacial e temporal nos níveis de célula única e populacional por microscopia e citometria de fluxo. Este método pode identificar defeitos anteriormente negligenciados na fase S e na progressão do ciclo celular de mutantes de levedura, permitindo assim a caracterização de novos players essenciais para garantir a estabilidade do genoma.

Introdução

A estabilidade do genoma através da divisão mitótica é assegurada pela transmissão de um conjunto completo e igual de cromossomos para as duas progênies celulares produzidas. Isso depende da conclusão precisa de uma série de eventos que ocorrem em um determinado tempo em cada fase do ciclo celular. No G 1, as origens de replicação são licenciadas mediante o recrutamento de vários fatores de licenciamento, incluindo o Cdc61. Na fase S, a duplicação do genoma inteiro é iniciada a partir de múltiplas origens de replicação ativas e executada por máquinas de replicação que se reúnem em focos microscopicamente visíveis chamados fábricas de....

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Protocolo

1. Cultura de células de S. cerevisiae

NOTA: As estirpes de levedura utilizadas estão listadas no quadro 1

NOTA: A duração da fase S pode ser monitorada de diferentes maneiras. Dependendo da questão a ser abordada, as células podem ser cultivadas de forma assíncrona ou síncrona após a parada do G1 .

  1. De células de S. cerevisiae de crescimento assíncrono
    NOTA: Este método permite a determinação da percentagem de células na fase S numa população de células em crescimento assíncrono. Ao determinar o tempo de duplicação, a duração da fase S (e....

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Resultados

Para determinar a duração da fase S e, de forma mais ampla, a duração de G 1 e G2 + M (etapa do protocolo 1.1), células selvagens do tipo S. cerevisiae W303 (WT, Tabela 1) foram cultivadas de forma assíncrona em meio SC por 7 h. A cada hora, a concentração celular foi monitorada para determinar o tempo de duplicação (Figura 2B). Nessas condições de crescimento, o tempo de duplicação calculado foi de 120 min ± 13 min a 25 °C (Tabela 2

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Discussão

A levedura é um organismo modelo primordial para estudos do ciclo celular, mas a caracterização de sua fase S tem sido dificultada por sua incapacidade de incorporar nucleosídeos exógenos, como o BrdU, que são usados como traçadores da replicação do DNA. Equipar leveduras com alta expressão de herpes simplex timidina quinase (TK) e a adição de um transportador de nucleosídeos humanos (hENT) resolveram em grande parte esse problema15,16. O EdU é mais versátil que .......

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Divulgações

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Agradecimentos

Os autores desejam agradecer à Agence Nationale de la Recherche (ANR) e à Association pour la Recherche sur le Cancer (ARC) pelas bolsas de doutoramento ao J.d.D.B.T. e à Agence Nationale pour la Recherche (ANR) pelo apoio financeiro (subvenção ANR-18-CE12-0018-01). A citometria e a microscopia foram realizadas no centro de imagem BioCampus da RM de Montpellier.

....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
&alfa;-fator GenescriptRP01002
Albumina de Soro Bovino (BSA)Euromedex04-100--812-E
Sulfato de cobreSigmaC1297
DAPISigmaD9542
Di-sulfo-Cyanine5 azida (Cy5 azide)InterchimFP-JV6320Alternativa para Alexa647-Azide
Dy-530 azideDyomics  530-10
EdU (5-etinil-2'-desoxiuridina)CarbosynthNE08701
Etanol absolutoCarlo Erba reagentesP013A10D16ou equivalente
Ácido L-ascórbicoSigmaA4544
Iodeto de propídioSigmaP4864
Proteinase KEuromedexEU0090
RnaseSIGMAR5000
Sytox GreenInvitrogenS-7020
EquipmentContador de
célulasOLSCASY
Citômetro de fluxoAgilentNovoSampler Pro
Incubadora de agitaçãoInfors444-4230ou equivalente
agitada banhoJulaboSW22ou equivalente
SonicatorSonicsVibra cell
Microscopia de campo amploLeicaTHUNDER Imagerou equivalente
Água

Referências

  1. Bell, S. P., Labib, K. Chromosome duplication in Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 203 (3), 1027-1067 (2016).
  2. Kitamura, E., Blow, J. J., Tanaka, T. U. Live-cell imaging reveals replication of individual replicons in eukaryotic replication factories. Cell. 125....

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

Incorporação de EdUReplicação do DNARegulação do Ciclo CelularCitometria de FluxoReação ClickSincronização de LevedurasColoração com Sytox GreenEstabilidade do Genoma