Artigo de método

Análise e imagem de osteócitos

DOI:

10.3791/64699

29 de novembro de 2024

Neste artigo

Resumo

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este estudo descreve o método para visualizar e desenvolver modelos tridimensionais (3D) de osteócitos dentro da rede lacunar-canalicular (LCN) para análise de dinâmica de fluidos computacional (CFD). Os modelos gerados usando este método ajudam a entender a mecanosensação dos osteócitos em ossos saudáveis ou doentes.

Resumo

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Os osteócitos são as células ósseas que se acredita responderem a tensões mecânicas e tensão de cisalhamento de fluxo de fluido (FFSS), ativando várias vias biológicas em um processo conhecido como mecanotransdução. Modelos derivados de imagens confocais de redes de osteócitos são uma ferramenta valiosa para a realização de análises de Dinâmica de Fluidos Computacional (CFD) para avaliar tensões de cisalhamento na membrana dos osteócitos, que não podem ser determinadas por medição direta. A modelagem computacional usando essas imagens de alta resolução da arquitetura microestrutural do osso foi usada para simular numericamente a carga mecânica exercida no osso e entender a estimulação induzida pela carga dos osteócitos.

Este estudo elabora os métodos para desenvolver modelos 3D de osteócitos únicos usando imagens de microscópio confocal da Rede Lacunar-Canalicular (LCN) para realizar análises de CFD utilizando vários softwares de modelagem computacional. Antes da microscopia confocal, os ossos do camundongo são seccionados e corados com corante isotiocianato de fluoresceína (FITC) para marcar o LCN. Com resolução de 100x, as imagens Z-stack são coletadas usando um microscópio confocal e importadas para o software MIMICS (software de processamento baseado em imagem 3D) para construir um modelo de superfície do LCN e dos processos dendríticos dos osteócitos.

Essas superfícies são então subtraídas usando uma operação booleana no software 3-Matic (software de otimização de dados 3D) para modelar o espaço fluídico lacunar ao redor do corpo celular do osteócito e o espaço canalicular ao redor dos dendritos contendo fluido lacunocanalicular. A geometria volumétrica do fluido 3D é importada para o software ANSYS (software de simulação) para análise CFD. O ANSYS CFX (software CFD) é usado para aplicar carga fisiológica no osso como pressão de fluido, e as tensões de cisalhamento da parede nos osteócitos e processos dendríticos são determinadas. A morfologia do LCN afeta os valores de tensão de cisalhamento detectados pela membrana celular dos osteócitos e pelos processos celulares. Portanto, os detalhes de como os modelos baseados em imagens confocais são desenvolvidos podem ser valiosos para a compreensão da mecanosensação dos osteócitos e podem estabelecer as bases para estudos futuros nessa área.

Introdução

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Postula-se que os osteócitos regulam a massa óssea em resposta ao exercício físico1. A deformação da membrana dos osteócitos e seus processos dendríticos, devido à carga mecânica, os submete ao FFSS, que é detectado pelos osteócitos e desencadeia a sinalização intracelular 2,3,4. A microestrutura óssea sofre deterioração ou alterações em sua morfologia lacunar-canalicular devido ao envelhecimento ou doenças ósseas, como osteoporose e diabetes, e em condições como deficiência de perlecan, que causa comprometimento da mecan-responsividade dos osteócitos 5,6. Essas mudanças na arquitetura óssea fazem com que os osteócitos experimentem diferentes níveis de FFSS e cepas 7,8. É importante ressaltar que o FFSS experimentado pelos osteócitos em resposta à carga mecânica é difícil de quantificar in vivo porque eles estão embutidos na matriz óssea calcificada.

A modelagem confocal baseada em imagens é uma técnica poderosa para superar as limitações do estudo de osteócitos inacessíveis em seu ambiente natural, replicando modelos computacionais do LCN 9,10. Processar e modelar a rede interconectada de LCN em 3D tem sido um desafio. Existem várias técnicas de imagem, como microscopia eletrônica de transmissão (MET), microscopia eletrônica de varredura (MEV), seccionamento de face de bloco serial e microscopia eletrônica de varredura de feixe de íons focalizado em série (FIB/SEM)2,11,12. Uma técnica valiosa foi desenvolvida para visualizar o osso 13,14,15 e gerar modelos de osteócitos 3D por meio de microscopia confocal de varredura a laser (CLSM). O CLSM foi escolhido aqui para modelagem computacional em vez de outras técnicas de imagem devido à sua capacidade de obter imagens de todo o volume da lacuna e da maioria dos canalículos em 3D16,17. A geometria do LCN pode ser gerada usando CLSM para Análise de Elementos Finitos de Osteócitos (FEA) para prever deformações ósseas. No entanto, a análise de fluidos para prever o FFSS experimentado por osteócitos é mais complicada, pois requer modelagem da membrana celular do osteócito e seus dendritos dentro do LCN para permitir a modelagem do estreito espaço lacunar-canalicular, no qual o fluido intersticial se move18.

Neste protocolo, o corante isotiocianato de fluoresceína (FITC) é aplicado a seções ósseas espessas não descalcificadas antes da microscopia confocal para marcar o LCN dentro do osso, e as membranas dendríticas dos osteócitos são modeladas com base em dados de imagem do LCN. O espaço lacunar-canalicular é simulado usando modelagem computacional, e a carga fisiológica devido à atividade física é modelada usando uma abordagem CFD. Os osteócitos são submetidos a um gradiente de pressão de fluido no software CFD para analisar o perfil de fluido dentro do LCN e medir o FFSS nas membranas do osteócito e dendrítica. Além disso, uma abordagem FEA pode medir tensões ou tensões de osteócitos aplicando carga mecânica compressiva.

Uma técnica de modificação da geometria também foi desenvolvida para modificar as microestruturas derivadas de imagens de osso jovem e saudável, a fim de simular a morfologia lacunar-canalicular alterada em animais idosos ou com doença óssea. As alterações da microestrutura óssea incluíram a redução do número de canalículos com o envelhecimento, a redução da área do espaço lacunar-canalicular para modelar o que acontece na deficiência de perlecan e aumentá-la para modelar os efeitos do envelhecimento, e a redução da área da parede canalicular e dendrítica para modelar o osso diabético 5,6. A técnica de modificação da geometria nos permite comparar FFSS experimentados por osteócitos em ossos com diferentes microestruturas, como jovens versus idosos ou ossos em animais saudáveis versus doentes.

No geral, a modelagem baseada em imagens confocais é uma ferramenta valiosa para simular a morfologia dos osteócitos no osso saudável, bem como nas alterações associadas ao envelhecimento/doença na morfologia dos osteócitos. Além disso, os parâmetros morfológicos dos osteócitos, como área de superfície e volume do espaço lacunar-canalicular, podem ser medidos e comparados em vários ossos para prever respostas celulares à tensão mecânica.

Protocolo

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Os experimentos com animais foram realizados com a aprovação do Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Universidade de Missouri, Kansas City (UMKC), e em conformidade com as diretrizes federais relevantes.

1. Processo de preparação óssea

  1. Colete fêmures de camundongos C57BL6 fêmeas de 4 meses e 22 meses e fixe-os em paraformaldeído frio a 4% em PBS por 24 h a 4 ° C com balanço suave, depois enxágue-os em PBS e armazene-os em etanol a 70% antes de incorporá-los.
    NOTA: O volume do fixador deve ser cerca de 20x o volume do tecido
  2. Incorpore os ossos rapidamente em um acrílico de polimerização rápida (Tabela de Materiais) seguindo as instruções do fabricante.
    NOTA: É importante usar uma resina de polimerização rápida para esta etapa (~10 min). O objetivo é apoiar o tecido ósseo durante a seccionação usando a serra diamantada, mas sem que a resina penetre no LCN, o que impediria a penetração da mancha FITC.
  3. Corte fatias transversais grossas de 300 μm de espessura de um local padronizado acima do terceiro trocanter usando uma serra diamantada e armazene-as a 4 ° C em etanol a 70% antes da coloração FITC.
  4. Polir as seções usando uma lixa de grão 600, 800 e 1200 até obter uma espessura final de ~ 90-100 μm.
    NOTA: A obtenção da espessura adequada foi garantida usando um paquímetro digital.
  5. Enxágue as seções em etanol 70%, 95% e 100% por 5 min cada.
  6. Manchar-os em FITC a 1% em etanol 100% por 4 h em temperatura ambiente (RT) no escuro com agitação moderada.
  7. Lave as seções em etanol 100% por 30 min com agitação suave no escuro. Em seguida, seque-os ao ar durante a noite no escuro.
  8. Para montar, coloque a seção em uma gota de mídia de montagem em uma lâmina de microscópio de vidro. Use uma pinça para posicionar a seção o mais plana possível contra a lâmina, evitando gerar bolhas de ar e usando a resina circundante para manipular a amostra. Monte uma lamínula na amostra.

2. Microscopia confocal

  1. Use um microscópio confocal para obter imagens de fatias de osso coradas com FITC.
  2. Use uma objetiva de óleo de 100 x 1,44 NA com um zoom digital de 1,7 e um tamanho de passo de 0,126 μm para coletar pilhas Z detalhadas de 400 planos Z a 1024 x 1024 pixels, resolução de pixel de 0,089 μm.
  3. Use um laser de 488 nm para excitação, com uma janela de coleta de emissão de 496-596 nm. Colete as pilhas de imagens usando as configurações de compensação para corrigir a perda de sinal com o aumento da profundidade da imagem.
  4. Aumente a precisão e a resolução das imagens usando técnicas de coleta de imagens, como sobreamostragem e aumento da média da linha. Além disso, colete as imagens com uma resolução de 5x, 20x e 100x dos cortes transversais dos cortes do fêmur, conforme mostrado na Figura 1.
    NOTA: A imagem de baixa resolução (5x) na Figura 1 mostra a área completa da seção transversal do fêmur, com três regiões selecionadas para campos de imagem de 100x.
  5. Use as 100x Z-stacks para a modelagem computacional de osteócitos.

3. Modelagem computacional

  1. Importe as imagens 100x coletadas, no formato TIFF, para o software ImageJ para construir uma sequência de imagens do LCN na direção Z.
  2. Importe as pilhas Z para o software de processamento baseado em imagem 3D para construir uma máscara do LCN depois de definir a orientação da imagem.
  3. Limite a imagem original dos camundongos jovens e idosos entre 30.012-45.677 unidades Hounsfield e 15.000-46.701 unidades Hounsfield, respectivamente, para se assemelhar ao LCN. Ajuste o Limite no menu da seção para alterar os limites de intensidade de pixel para inclusão em uma máscara.
  4. Corte uma lacuna com seus canalículos como a região de interesse (ROI) da pilha usando a operação Crop Mask . Defina o ROI de modo que ele circunde a lacuna no centro do cubo e todos os seus canalículos conectados se estendam para os lados do cubo. Envolva a lacuna em um cubo maior imaginário com comprimentos laterais de 21 μm, 14 μm e 19 μm.
  5. Como o modelo é criado a partir de várias partes, execute uma operação de crescimento de região para selecionar as regiões de pixel conectadas, remover ruído e remover manchas para gerar um LCN uniforme.
  6. Converta a máscara lacunar-canalicular em um objeto usando a operação de peça calculada no software de processamento baseado em imagem 3D.
  7. Construa as membranas osteócitas e dendríticas reduzindo o volume do LCN usando a operação de suavização. Realizar esta operação várias vezes para obter uma espessura lacunar e canalicular de 0,75 μm e 0,08 μm, respectivamente 9,18.
  8. Exporte os objetos (formato STL) como a última etapa no software de processamento baseado em imagem 3D.
  9. Importe duas camadas do LCN e das membranas dendríticas dos osteócitos para o software de otimização de dados 3D para gerar uma malha de volume.
  10. Utilize a ferramenta Assistente de correção no software para identificar problemas de malha em cada peça. Verifique a qualidade da malha na seção de diagnóstico do Assistente de Correção após cada operação.
  11. Remova as peças normais invertidas, triângulos de interseção e contornos ruins usando a operação Correção automática no Assistente de correção.
  12. Substitua os triângulos sobrepostos manualmente definindo novos ou automaticamente através da operação Preencher furo normal .
  13. Melhore a qualidade da malha usando operações que incluem filtragem de triângulos agudos, arestas pequenas e cascas pequenas.
  14. Depois de melhorar a qualidade da malha, combine duas superfícies do LCN e das membranas dendríticas dos osteócitos em uma superfície (espaço fluídico lacunar-canalicular) que pertence a ambas as partes usando um conjunto não múltiplo.
  15. Crie um modelo volumétrico do espaço lacunar-canalicular usando a operação Remesh e, em seguida, exporte-o como um arquivo STL. Ajuste a escala do objeto para ficar em micrômetros na seção de exportação.

4. Técnica de modificação de geometria no software de processamento baseado em imagem 3D e software de otimização de dados 3D

NOTA: A técnica de modificação da geometria é usada para modelar mudanças na morfologia dos osteócitos, como densidade e diâmetro canalicular e espessura lacunar-canalicular devido ao envelhecimento ou doença óssea.

  1. Escolha o osteócito jovem como modelo base e modifique-o para construir outros modelos distintos de osteócitos aplicando alterações morfológicas.
  2. Gere um modelo de osteócitos com diferentes densidades canaliculares do modelo base, alterando o limite da imagem no software de processamento baseado em imagem 3D.
    1. Selecione um limite inferior para reduzir a intensidade da luz da imagem e obter uma lacuna com menos canalículos. A vantagem da técnica de limiar é que a forma e o tamanho da lacuna permanecem os mesmos, e apenas a influência da densidade canalicular é estudada. A Figura 2 mostra o modelo envelhecido simulado gerado a partir do osteócito jovem usando a técnica de modificação da geometria.
  3. Desenvolver modelos de osteócitos com diferentes espessuras de espaço lacunar-canalicular ou diâmetros dendrito/canalicular no software de processamento baseado em imagem 3D e software de otimização de dados 3D. Construa modelos de osteócitos maiores ou menores por meio de operações de Envolvimento ou Suavização , respectivamente. A Figura 3 mostra seis modelos de osteócitos com geometria alterada desenvolvidos a partir do osteócito jovem.

5. Análise de CFD

NOTA: Depois de gerar os modelos volumétricos de osteócitos, várias etapas, incluindo geometria, malha e configuração, são conduzidas no módulo CFX do software de simulação.

  1. Crie um Fluxo de Fluido no software de simulação para preparar os modelos para a análise CFD.
  2. Importe as geometrias baseadas em imagens confocais desenvolvidas para a seção de geometria do CFX, conhecida como ANSYS SpaceClaim (ferramenta de modelagem 3D). Defina as dimensões da unidade para nanômetros na configuração.
  3. A geometria aparece como duas facetas do LCN e dos processos dendríticos dos osteócitos. Clique em Faceta no menu superior e remova os erros geométricos, como interseções, arestas afiadas ou superconectadas e vértices, aberturas ou furos para cada faceta.
  4. Clique em Subtrair no menu Faceta para reduzir a faceta menor e os processos dendríticos dos osteócitos da faceta maior, o LCN, para obter um único corpo de espaço lacunar-canalicular. Em seguida, clique com o botão direito do mouse na faceta gerada e converta-a de facetas em um domínio sólido sem mesclar faces. A Figura 4 mostra a área de secção transversa do modelo de osteócitos jovens, que representa o espaço lacunar-canalicular.
  5. Clique na malha e selecione elementos tetraédricos lineares usando um tamanho de elemento de 0,06 μm. Refine a malha com um estudo de convergência de malha para ter elementos suficientes no minúsculo sistema dendrítico para garantir que os resultados sejam independentes do tamanho da malha.
  6. Selecione a superfície e escolha os canalículos na parte superior do cubo imaginário como entradas de fluido. Selecione os canalículos nas outras cinco faces como saídas de fluido usando a seleção de caixa .
  7. Exporte a malha (formato de arquivo fluente) à medida que ela carrega mais rápido na configuração na próxima etapa.
  8. Crie outro fluxo de fluido no software de simulação e importe a malha fluente para a seção de configuração do CFX. Defina duas condições de limite de entradas e saídas para as faces pré-selecionadas como entradas/saídas usando a opção Inserir limite .
  9. Para imitar as condições fisiológicas, exercer uma pressão de entrada de fluido de 300 Pa e 0 Pa nas entradas e saídas, respectivamente19,20. Trate as superfícies restantes como paredes com uma condição antiderrapante nesse fluido que tem velocidade zero na interface das paredes. O fluido flui das entradas ao redor dos dendritos e do corpo celular dos osteócitos e sai dos outros canalículos designados como saídas.
  10. Trate o fluido laminar intersticial como água9, escolhida na biblioteca de materiais. Defina as seções Transferência de calor, Combustão e Radiação térmica como Nenhuma, pois nenhuma transferência de calor é definida no problema. Selecione o modo Turbulência como a característica do fluido no LCN, que é um fluido laminar9.
  11. Execute o software usando Precisão Dupla e Início Direto como o tipo de envio. Monitore a massa e o momento até que os resíduos caiam e se tornem constantes. Após a convergência da solução, meça os dados FFSS usando a seção CFD-post do software CFD.

6. Pós-processamento CFD

  1. Para descrever o FFSS experimentado por osteócitos e seus dendritos, insira um novo contorno na seção de resultados do software CFD. Crie um contorno FFSS escolhendo o cisalhamento da parede nas membranas dendríticas dos osteócitos como a variável no domínio.
    NOTA: Para mostrar melhor o FFSS alto nas membranas dendríticas, o intervalo de FFSS é definido como Especificado pelo usuário para modificar os valores mínimos/máximos do FFSS.
  2. Insira um contorno de velocidade aerodinâmica dentro do domínio lacunar-canalicular a partir das entradas. Defina a amostragem para igualmente espaçada e selecione o número de pontos como 2500. Uma seção de animação no software CFD exibe com precisão em 3D como as partículas de fluido fluem dentro dos espaços lacunares-canaliculares usando o gráfico de velocidade aerodinâmica.
  3. Use a ferramenta Calculadora de Função no software CFD para analisar a magnitude do FFSS ou velocidade com base em parâmetros geométricos, especialmente onde existem vários modelos de osteócitos (ou seja, jovens vs. idosos). Meça o volume e a área de superfície do espaço lacunar-canalicular como parâmetros geométricos, juntamente com valores máximos, mínimos ou médios de FFSS.

Resultados

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Este protocolo descreve como desenvolver modelos de osteócitos derivados de confocal para investigar a quantidade de tensão de cisalhamento de fluxo de fluido a que um osteócito e seus processos dendríticos são submetidos devido à carga mecânica. Um camundongo C57BL6 idoso e um jovem foram selecionados para construir modelos de osteócitos baseados em imagens confocais jovens e envelhecidos. Seis outros modelos de osteócitos simulados foram gerados a partir do mesmo modelo de osteócitos jovens usando a técnica de modificação da geometria para estudar a alteração da morfologia do LCN devido ao envelhecimento ou doença óssea. Os parâmetros modificados pela geometria incluíram a espessura lacunar-canalicular, densidade canalicular e diâmetro. Modelos de osteócitos modificados foram desenvolvidos alterando um parâmetro de cada vez, mantendo os outros parâmetros iguais. Portanto, o efeito de cada um dos parâmetros morfológicos no FFSS é examinado isoladamente. Os resultados revelaram que a quantidade de FFSS experimentada por um osteócito foi diferente nesses modelos de osteócitos, mostrando a dependência do FFSS na morfologia do LCN. Os valores de FFSS foram previstos em várias partes do modelo de osteócitos, como o corpo celular do osteócito ou as membranas dendríticas. Os dendritos em todos os modelos experimentaram maiores valores de FFSS do que a membrana do corpo celular dos osteócitos.

A Figura 5 mostra os contornos FFSS para modelos de osteócitos jovens vs. idosos gerados diretamente a partir de pilhas de imagens FITC confocais e seis outros modelos de osteócitos desenvolvidos a partir do Modelo 1 usando a técnica de modificação de geometria. O FFSS médio em osteócitos e membranas dendríticas no modelo de osteócitos jovens (Modelo 1) foi de 0,42 Pa, o que é mais significativo do que o FFSS médio de 0,13 Pa no modelo de osteócitos envelhecidos (Modelo 2). Os dados obtidos mostram um aumento na FFSS média em osteócitos com maior espaço lacunar-canalicular (Modelo 7 e Modelo 8) e uma diminuição na FFSS em osteócitos com menor densidade canalicular (Modelo 3 e Modelo 4), enquanto a FFSS não mudou significativamente com a mudança do diâmetro dendrítico no Modelo 5 e Modelo 6. O Modelo 2 e o Modelo 4 apresentaram os menores valores de FFSS de 0,19 Pa e 0,13 Pa, respectivamente. A magnitude do FFSS no Modelo 8 é maior do que nos outros modelos de osteócitos. Não apenas a maioria dos dendritos está na cor vermelha no Modelo 8, mas o corpo celular dos osteócitos também experimenta FFSS mais alto do que em outros modelos.

O FFSS experimentado pelos osteócitos também foi apresentado com base no volume do espaço lacunar-canalicular e na área de superfície, que foram obtidos por pós-processamento no ANSYS CFX para descobrir a correlação entre o FFSS e a estrutura alterada do LCN. Também foi possível medir a área de superfície de cada modelo exposto ao FFSS maior que 0,8 Pa, que se acredita ser o nível de FFSS que causa a formação óssea21,22. A modelagem de osteócitos mostrou uma correlação entre o FFSS médio e o volume ou área de superfície do espaço lacunar-canalicular para todos os modelos de osteócitos, conforme mostrado na Tabela 1. O osteócito envelhecido (Modelo 2) e o osteócito simulado de meia-idade (Modelo 4) com a menor densidade canalicular tiveram a menor área de superfície lacunar-canalicular de 1372,7 μm2 e 1122,6 μm2. O Modelo 2 e o Modelo 4 também apresentaram o menor volume do espaço lacunar-canalicular de 229,4 μm3 e 203,5 μm3, respectivamente, o que pode ser correlacionado com suas baixas quantidades de FFSS. O modelo 6, com o maior diâmetro dendrítico, apresentou a maior área de superfície lacunar-canalicular. O modelo 8 apresentou o maior volume do espaço lacunar-canalicular e os maiores valores de FFSS.

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Figura 1: Imagens confocais de plano Z único de uma seção transversal de um fêmur corado com FITC tiradas com objetivas de óleo de 5x, 20x e 100x. A rede lacunar-canalicular é visível na imagem tirada com a objetiva 100x. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

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Figura 2: Modelos confocais baseados em imagens de um osteócito jovem (Modelo 1) e um osteócito envelhecido (Modelo 2) gerados a partir do fêmur corado com FITC de camundongo C57BL6 de 4 meses e 22 meses. A imagem ampliada mostra a espessura lacunar-canalicular (LC) para osteócitos jovens e o mesmo para o osteócito envelhecido. A imagem do modelo 1 foi modificada com permissão de Niroobakhsh et al.23. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

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Figura 3: Seis modelos de osteócitos desenvolvidos a partir do Modelo 1 usando a técnica de modificação da geometria. A densidade canalicular foi reduzida para gerar o Modelo 3 (meia-idade simulada) e o Modelo 4 (envelhecido simulado), enquanto o diâmetro dendrítico e a espessura LC foram os mesmos do Modelo 1. O Modelo 5 e o Modelo 6 foram desenvolvidos com a mesma densidade canalicular e espessura de LC do Modelo 1, enquanto seu diâmetro dendrítico foi duas e quatro vezes maior que o Modelo 1. O Modelo 7 e o Modelo 8 apresentaram espessura lacunar-canalicular duas vezes e quatro vezes maior, respectivamente, enquanto a densidade canalicular e o diâmetro dendrítico permaneceram os mesmos do Modelo 1. A imagem do modelo 1 foi modificada com permissão de Niroobakhsh et al.23. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

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Figura 4: Modelo de osteócitos jovens baseado em imagem confocal em 3D. Vista 3D da área da seção transversal do modelo de osteócito jovem baseado em imagem confocal representando a modelagem do espaço lacunar-canalicular, que é usado para análise de fluidos ao redor do osteócito e dendritos. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

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Figura 5: A distribuição do FFSS para todos os modelos de osteócitos mostra a dependência da magnitude do FFSS na morfologia dos osteócitos. As regiões vermelhas mostram os valores mais altos de FFSS, especialmente nas membranas dendríticas, e não no corpo celular dos osteócitos. Esta imagem foi modificada com permissão de Niroobakhsh et al.23. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

ModelosÁrea de superfície lacunar-canalicular (μm2)Volume do espaço lacunar-canalicular (μm3)Ave FFSS (Pa)
Modelos de osteócitos baseados em imagem confocalModelo 12652.92610.42
Jovem (4 meses de idade)
Modelo 21372.7229.40.19
Envelhecido (22 meses)
Modelos simulados de osteócitos gerados usando a técnica de modificação da geometriaModelo 31530.4242.60.27
(Simulado de meia-idade)
Modelo 41122.6203.50.13
(Simulado envelhecido)
Modelo 53724.9302.90.49
(2 x diâmetro do dendrito)
Modelo 647913370.57
(4 x diâmetro do dendrito)
Modelo 73116.3440.61.17
(2 x LC de espessura)
Modelo 83542.2658.21.89
(4 x LC de espessura)

Tabela 1: Comparação dos modelos de osteócitos. Comparação do FFSS médio, volume do espaço lacunar-canalicular e área de superfície em oito modelos distintos de osteócitos, incluindo dois modelos baseados em imagens confocais e seis modelos simulados gerados a partir do Modelo 1 usando a técnica de modificação de geometria.

Discussão

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Este protocolo descreve uma técnica de imagem confocal para visualização e modelagem computacional dos osteócitos. Antes da imagem confocal, é realizado o processo de preparação óssea para seccionamento e coloração de amostras ósseas. Imagens confocais de aumento de 100x são importadas para vários softwares para desenvolver modelos computacionais de osteócitos e do espaço lacunar-canalicular. Uma análise CFD é conduzida por último nos modelos baseados em imagens confocais para modelar FFSS ao redor dos osteócitos e membranas dendríticas devido à atividade física, o que é tecnicamente desafiador in vivo devido à inacessibilidade dos osteócitos na matriz óssea. O protocolo fornecido também é útil na determinação de outras tensões ou deformações usando uma abordagem de elemento finito ou interação fluido-estrutura (FSI) na modelagem multifísica.

A imagem confocal tem sido usada para visualizar o LCN 7,9,24,25 devido às imagens de alta resolução que podem ser obtidas usando a coloração FITC do osso. Embora o diâmetro dos canalículos esteja próximo do limite de resolução do microscópio, imagens confocais confiáveis dos canalículos podem ser obtidas, o que pode capturar a maioria dos canalículos. Devido ao menor diâmetro dos dendritos dos osteócitos, é tecnicamente mais desafiador capturar com precisão as imagens dos dendritos. Uma técnica útil foi, portanto, desenvolvida para modelar o osteócito e os dendritos a partir de imagens confocais do LCN, reduzindo seu volume usando uma operação de suavização no software. Alguns outros estudos publicados usaram uma abordagem semelhante para compensar o LCN para gerar a membrana dendrítica do osteócito9. O outro benefício da técnica de suavização é melhorar alguns erros de imagem no CLSM, como o alongamento do diâmetro canalicular que ocorre no eixo Z devido à menor resolução de imagem no eixo Z, que é uma característica da imagem óptica. A deconvolução também é considerada um método alternativo para diminuir o alongamento óptico na direção Z, uma vez que melhora a relação sinal-ruído no conjunto de dados original. O espaço lacunar-canalicular é modelado a partir do LCN e das membranas dendríticas dos osteócitos para analisar o perfil do fluido dentro do LCN.

Notavelmente, uma nova técnica foi introduzida em relação aos métodos existentes para desenvolver modelos de osteócitos modificados pela geometria sem sacrificar outro camundongo. A técnica de modificação da geometria também ajuda a simular a alteração da microestrutura óssea devido ao envelhecimento ou doenças ósseas como osteoporose, diabetes e condições como deficiência de perlecan, etc. Nesta técnica, um modelo de osteócito baseado em imagem confocal de um camundongo jovem foi usado para modelar a morfologia de osteócitos idosos ou outros doentes ósseos, modificando parâmetros como densidade canalicular, espaço lacunar-canalicular e diâmetro dendrítico). Essa abordagem foi validada pela semelhança dos dois modelos de osteócitos envelhecidos, um da modelagem baseada em imagem confocal de um osteócito real de um camundongo de 22 meses e o outro da modelagem de modificação da geometria de um osteócito originalmente fotografado de um camundongo de 4 meses de idade, reduzindo sua densidade canalicular. Esses dois modelos de osteócitos envelhecidos mostraram uma magnitude FFSS semelhante, que foi a mais baixa entre todos os modelos de osteócitos. A técnica de modificação da geometria pode ter muitas aplicações em diferentes campos biológicos, pois pode prever resultados comparáveis aos modelos de osteócitos gerados usando osteócitos reais de um animal. Algumas das limitações deste trabalho incluem a perda de alguns dos detalhes da rugosidade da superfície devido à técnica de alisamento e o fato de que os diâmetros canaliculares estão no limite de resolução dos microscópios confocais, o que poderia levar a alguma imprecisão para canalículos com diâmetros menores, e também idealização do fluxo de fluido em vez de modelagem usando fluxo oscilatório.

Para demonstrar a funcionalidade da técnica, os valores de FFSS dos osteócitos foram medidos para modelos distintos de osteócitos gerados a partir de um camundongo jovem e idoso ou usando a técnica de modificação da geometria. Uma das descobertas dignas de nota usando esses modelos de computador foi que o volume do espaço lacunar-canalicular é diretamente proporcional ao FFSS médio experimentado pelos osteócitos. Este novo achado, que não havia sido investigado antes, pode ter várias aplicações na determinação da mecano-responsividade dos osteócitos, pois pode correlacionar a morfologia da rede de osteócitos com o FFSS detectado pelos osteócitos e seus processos.

Divulgações

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Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

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Os autores gostariam de agradecer à National Science Foundation (NSF, número do prêmio NSF-CMMI-1662284 PI: T Ganesh), ao Instituto Nacional de Saúde (NIH - NIA P01 AG039355 PI: LF Bonewald) e (NIH / SIG S10OD021665 e S10RR027668 PI: SL Dallas) e ao Programa de Bolsas de Pesquisa da Escola de Pós-Graduação da Universidade de Missouri-Kansas City.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Lixa de grão 1.200Buehler30-5170-012-100
Software 3-MaticMaterializehttps://www.materialise.com/en/industrial/software/3-maticSoftware de otimização de dados 3D
Lixa de grão 600Buehler30-5118-600-100
Lixa de grão 800Buehler30-5170-800-100
SoftwareANSYSANSYShttps://www.ansys.com/software de simulação
Isotiocianato de Fluoresceína (FITC)Sigma-AldrichF7250
ImageJ softwarehttps://imagej.net/ij/
Óleo de Imersão para MicroscópiosLeica Microsystems195371-10-9
Leica TCS Sp5 II microscópio confocal Leica MicrosystemsTCS Sp5 II 
Serra de diamante de furo interno Leitz 1600Leica 
Software MIMICS Innovation SuiteMaterializehttps://www.materialise.com/en/healthcare/mimics-innovation-suitesoftware de processamento baseado em imagem 3D
Meio de montagem PermountFisher scientificSP15-500
Sampl-KwickBuehler20-3560
Confiável científico INCModelo 55S
Kit de Acrílico de Cura Rápida Agitador de Laboratório de Plataforma Única

Referências

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