Artigo de método

Microscopia Raman coerente: da instrumentação às aplicações

DOI:

10.3791/64882

20 de janeiro de 2023

Neste artigo

Resumo

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ARTIGOS DISCUTIDOS:

Clark, M. G., Brasseale III, K. A., Gonzalez, G. A., Eakins, G., Zhang, C. Comparação direta de espalhamento Raman estimulado hiperespectral e microscopia coerente de espalhamento Raman anti-Stokes para imagens químicas. Jornal de Experimentos Visualizados. (182), e63677 (2022)

De la Cadena, A. et al. Imagens químicas multiplex baseadas em Raman estimulado por banda larga

microscopia de espalhamento. Jornal de Experimentos Visualizados. (185), e63709 (2022).

Shi, L., Wei, M., Min, W. Imagem de tecido altamente multiplexada com corantes Raman. Jornal de Experimentos Visualizados. (182), e63547 (2022).

Espinoza, R., Wong, B., Fu, D. Imagem de espalhamento Raman estimulada em tempo real, em duas cores, do cérebro de camundongo para diagnóstico de tecido. Jornal de Experimentos Visualizados. (180), e63484 (2022).

Miao, K., Lin, L. E., Qian, C., Wei, L. Imagens de super-resolução sem rótulos habilitadas por imagens vibracionais de tecido inchado e análise. Jornal de Experimentos Visualizados. (183), e63824 (2022).

Yuan, Y., Lu, F. Uma câmara flexível para imagens de células vivas com lapso de tempo com microscopia de espalhamento Raman estimulada. Jornal de Experimentos Visualizados. (186), e64449 (2022).

Wu, W., Li, X., Qu, J. Y., He, S. Imagem in vivo de tecidos biológicos com fluorescência combinada de dois fótons e microscopia de espalhamento Raman estimulada. Jornal de Experimentos Visualizados. (178), e63411 (2021).

Editorial

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Na última década, há um aumento no interesse na aplicação de microscopia Raman coerente (CRM) a imagens de células e tecidos 1,2. O CRM é uma poderosa técnica de imagem química com duas variantes populares: microscopia coerente anti-espalhamento Raman de Stokes (CARS) e microscopia de espalhamento Raman estimulado (SRS). O SRS é cada vez mais popular em comparação com o CARS porque é menos afetado pela interferência de fundo não Raman e tem uma dependência linear da concentração3. O CRM adquire informações de vibração molecular semelhantes à espectroscopia Raman, mas oferece velocidade de aquisição significativamente melhorada4. Isso é obtido por excitação vibracional coerente por meio de um par de lasers pulsados com alta intensidade de pico. Como o CRM fornece mapeamento químico espacialmente resolvido em alta resolução espacial e temporal, ele encontrou aplicações importantes no diagnóstico de câncer, metabolismo lipídico, metabolismo celular, transporte de drogas e muitos outros 5,6,7,8. No entanto, um grande gargalo que dificulta a adoção generalizada da técnica é sua complexidade técnica e falta de protocolos padronizados. Embora lasers e microscópios comerciais já estejam disponíveis, quase todos os sistemas usados atualmente no campo envolvem vários níveis de personalização de lasers, ópticas, microscópios e detectores, o que cria uma barreira significativa para pesquisadores interessados em entrar no campo ou adotar essa tecnologia. A falta de acesso impede ainda mais as aplicações biológicas. O objetivo desta coleção de métodos é fornecer exemplos detalhados e orientações sobre instrumentação, novas abordagens de imagem e aplicações de imagem de células ou tecidos in vitro / in vivo. Incluímos sete publicações de especialistas na área que estão resumidas aqui.

Clark et al. apresentam uma comparação lado a lado de SRS hiperespectral e CARS em termos de sensibilidade, resolução espacial e resolução espectral9. Ambas as técnicas são implementadas com foco espectral de lasers de femtossegundo, uma abordagem comumente empregada que usa os lasers de femtossegundo de banda larga espectralmente chirped para obter resolução Raman de banda estreita. Uma comparação direta permite a avaliação das diferenças de detecção e a seleção ideal da modalidade para diferentes aplicações de imagens químicas.

De la Cadena et al. publicam um novo método SRS multiplex que pode adquirir imagens SRS de banda largarapidamente 10. A técnica é baseada em uma detecção de amplificador de bloqueio multicanal diferencial personalizado, que permite a detecção de até 32 canais simultaneamente. Além disso, a caracterização detalhada do ruído é mostrada e um método de detecção balanceado é demonstrado para eliminar o ruído do laser. Este protocolo fornece orientação prática para usuários interessados em construir sistemas SRS multiplex.

Shi et al. demonstram o uso de corantes Raman altamente multiplexados em imagens SRS11. Com o realce pré-ressonância, eles demonstram que a SRS pode fornecer sensibilidade comparável à imunofluorescência padrão. Este método contorna o limite de canais espectralmente solúveis na imunofluorescência convencional e permite o monitoramento de muitas proteínas simultaneamente e o estudo de suas interações. Orientações detalhadas sobre o processamento da amostra e a coloração com corante Raman são fornecidas para facilitar a adoção desse método poderoso.

Miao et al. apresentam imagens vibracionais de tecido inchado e análise (VISTA), uma técnica de imagem de super-resolução que combina SRS com microscopia de expansão12. O VISTA contorna os obstáculos associados à imagem fluorescente e obtém imagens volumétricas de super-resolução sem rótulos em amostras biológicas com resolução espacial de até 78 nm. Eles exploram ainda um algoritmo de aprendizado profundo para alcançar a segmentação de vários componentes, incluindo agregados de proteínas em células e tecidos cerebrais.

Espinoza et al. apresentam o uso de imagens SRS em duas cores em tempo real de proteínas e lipídios para aplicações diagnósticasteciduais 13. A imagem SRS de duas cores pode gerar imagens equivalentes a H & E para aplicações de patologia. Este protocolo descreve os detalhes da implementação de uma técnica de modulação ortogonal e foco espectral para imagens SRS simultâneas em duas cores. A conversão de imagens SRS de duas cores em imagens pseudo-H & E também é demonstrada com tecido cerebral de camundongo para ilustrar aplicações de diagnóstico de tecidos.

Yuan et al. publicam um sistema de câmara flexível para imagens SRS de longo prazo de células vivas14. A maioria das câmaras de observação de células vivas existentes são projetadas para imagens de campo claro e fluorescência. Eles são incompatíveis com a detecção de SRS devido à necessidade de uma objetiva e condensador de alta NA. Os autores demonstram imagens SRS de lapso de tempo de 24 h com a câmara flexível, que manteve temperatura, CO2 e umidade constantes.

Por fim, Wu et al. demonstram fluorescência simultânea de dois fótons in vivo (TPEF) e imagens SRS15. Dois sistemas de laser separados são combinados para obter a sensibilidade ideal para ambas as modalidades de imagem para fornecer informações complementares. In vivo A imagem SRS do tecido tem desafios únicos devido à necessidade de epidetecção de luz despolarizada e retroespalhada. Este protocolo discute os detalhes da configuração ideal de um microscópio TPEF-SRS e como ele pode ser usado para imagens in vivo da medula espinhal do camundongo.

Esta coleção de publicações representa o estado da arte atual em instrumentação de CRM e avanços técnicos. Pesquisadores interessados no desenvolvimento de métodos e aplicações acharão esta coleção útil para comparar configurações e estabelecer benchmarks (sensibilidade, resolução, etc.) para construir ou otimizar seus próprios sistemas. As diretrizes e melhores práticas fornecidas nesses protocolos informarão as aplicações in vitro e in vivo existentes e futuras. A adoção em larga escala da tecnologia de CRM ainda aguarda aplicações importantes e inovadoras e a comercialização de soluções completas de CRM. No entanto, a padronização de abordagens e benchmarks de imagem é essencial para garantir a reprodutibilidade e confiabilidade e facilitar a implementação mais ampla do CRM16.

O campo do CRM está crescendo em alta velocidade. Os desenvolvimentos técnicos que empurram a sensibilidade, especificidade e limite de resolução continuam a levar a tecnologia a novos territórios. Por exemplo, a resolução espacial do SRS está começando a ultrapassar o limite de difração17,18. A sensibilidade da SRS de pré-ressonância eletrônica está agora se aproximando da fluorescência19. Em comparação com a fluorescência, o CRM tem vantagens distintas. Por exemplo, o uso do traçado de deutério permitiu o estudo in vivo da dinâmica metabólica de pequenas moléculas em uma resolução subcelular pela primeira vez20. Com tags pequenas, é possível realizar a detecção Raman altamente multiplexada de 24 ou mais alvos rotulados21. Os avanços na inteligência artificial permitem novos recursos para CRM, aproveitando seu alto conteúdo de informações e recursos moleculares específicos para segmentar e classificar objetos com diferenças sutis de características espaciais e espectrais22. Juntos, esses avanços técnicos em CRM estão prontos para acelerar e ampliar as aplicações em imagens biológicas e biomédicas.

Divulgações

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O autor não tem nada a divulgar.

Agradecimentos

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O autor agradece o apoio financeiro do National Institute of Health (NIH R35 GM133435) e do Eli Lilly Young Investigator Award.

Referências

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  1. Cheng, J. -X., Xie, X. S. Vibrational spectroscopic imaging of living systems: An emerging platform for biology and medicine. Science. 350 (6264), (2015).
  2. Hill, A. H., Fu, D. Cellular imaging using stimulated Raman scattering microscopy. Analytical Chemistry. 91 (15), 9333-9342 (2019).
  3. Min, W., Freudiger, C. W., Lu, S., Xie, X. S. Coherent nonlinear optical imaging: Beyond fluorescence microscopy. Annual Review of Physical Chemistry. 62 (1), 507-530 (2011).
  4. Freudiger, C. W., et al. Label-Free biomedical imaging with high sensitivity by stimulated Raman scattering microscopy. Science. 322 (5909), 1857-1861 (2008).
  5. Hollon, T. C., et al. Near real-time intraoperative brain tumor diagnosis using stimulated Raman histology and deep neural networks. Nature Medicine. 26 (1), 52-58 (2020).
  6. Yue, S., et al. Cholesteryl ester accumulation induced by PTEN loss and PI3K/AKT activation underlies human prostate cancer aggressiveness. Cell Metabolism. 19 (3), 393-406 (2014).
  7. Fu, D., et al. In vivo metabolic fingerprinting of neutral lipids with hyperspectral stimulated Raman scattering microscopy. Journal of the American Chemical Society. 136 (24), 8820-8828 (2014).
  8. Fu, D., et al. Imaging the intracellular distribution of tyrosine kinase inhibitors in living cells with quantitative hyperspectral stimulated Raman scattering. Nature Chemistry. 6 (7), 614-622 (2014).
  9. Clark, M. G., Brasseale, K. A., Gonzalez, G. A., Eakins, G., Zhang, C. Direct comparison of hyperspectral stimulated Raman scattering and coherent anti-Stokes Raman scattering microscopy for chemical imaging. Journal of Visualized Experiments. (182), e63677(2022).
  10. Dela Cadena, A., et al. Multiplex chemical imaging based on broadband stimulated Raman scattering microscopy. Journal of Visualized Experiments. (185), e63709(2022).
  11. Shi, L., Wei, M., Min, W. Highly-Multiplexed tissue imaging with Raman dyes. Journal of Visualized Experiments. (182), e63547(2022).
  12. Miao, K., Lin, L. E., Qian, C., Wei, L. Label-Free super-resolution imaging enabled by vibrational imaging of swelled tissue and analysis. Journal of Visualized Experiments. (183), e63824(2022).
  13. Espinoza, R., Wong, B., Fu, D. Real-Time, two-color stimulated Raman scattering imaging of mouse brain for tissue diagnosis. Journal of Visualized Experiments. (180), e63484(2022).
  14. Yuan, Y., Lu, F. A flexible chamber for time-lapse live-cell imaging with stimulated Raman scattering microscopy. Journal of Visualized Experiments. (186), e64449(2022).
  15. Wu, W., Li, X., Qu, J. Y., He, S. In vivo imaging of biological tissues with combined two-photon fluorescence and stimulated Raman scattering microscopy. Journal of Visualized Experiments. (178), e63411(2021).
  16. Manifold, B., Fu, D. Quantitative stimulated Raman scattering microscopy: Promises and pitfalls. Annual Review of Analytical Chemistry. 15 (1), 269-289 (2022).
  17. Qian, C., et al. Super-resolution label-free volumetric vibrational imaging. Nature Communications. 12 (1), 3648(2021).
  18. Graefe, C. T., et al. Far-Field super-resolution vibrational spectroscopy. Analytical Chemistry. 91 (14), 8723-8731 (2019).
  19. Wei, L., Min, W. Electronic preresonance stimulated Raman scattering microscopy. The Journal of Physical Chemistry Letters. 9 (15), 4294-4301 (2018).
  20. Zhang, L., et al. Spectral tracing of deuterium for imaging glucose metabolism. Nature Biomedical Engineering. 3 (5), 402-413 (2019).
  21. Wei, L., et al. Super-multiplex vibrational imaging. Nature. 544 (7651), 465-470 (2017).
  22. Manifold, B., Men, S., Hu, R., Fu, D. A versatile deep learning architecture for classification and label-free prediction of hyperspectral images. Nature Machine Intelligence. 3, 306-315 (2021).

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Hyperspectral Stimulated Raman ScatteringCoherent Anti Stokes Raman ScatteringChemical ImagingMultiplex Chemical ImagingStimulated Raman Scattering MicroscopyTissue ImagingVibrational ImagingLive cell ImagingIn Vivo ImagingReal time ImagingSuper resolution Imaging

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