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Artigo de método

Ensaio de plugue de gel de matriz in vivo modificado para estudos de angiogênese

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DOI:

10.3791/65567

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30 de junho de 2023

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* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

O método aqui apresentado pode avaliar o efeito dos reagentes na angiogênese ou permeabilidade vascular in vivo sem coloração. O método utiliza injeção de dextran-FITC através da veia caudal para visualizar neovasos ou extravasamento vascular.

Resumo

Vários modelos têm sido desenvolvidos para investigar a angiogênese in vivo. No entanto, a maioria desses modelos é complexa e cara, requer equipamentos especializados ou é de difícil execução para posterior análise quantitativa. Apresentamos aqui um ensaio de plugue de gel de matriz modificado para avaliar a angiogênese in vivo. Nesse protocolo, as células vasculares foram misturadas com gel de matriz na presença ou ausência de reagentes pró-angiogênicos ou antiangiogênicos e, em seguida, injetadas por via subcutânea no dorso dos camundongos receptores. Após 7 dias, tampão fosfato salino contendo dextran-FITC é injetado através da veia caudal e circulado nos vasos por 30 min. Os plugues de gel de matriz são coletados e embebidos com gel de incorporação de tecido, em seguida, cortes de 12 μm são cortados para detecção de fluorescência sem coloração. Neste ensaio, dextran-FITC com alto peso molecular (~150.000 Da) pode ser usado para indicar vasos funcionais para detectar seu comprimento, enquanto dextran-FITC com baixo peso molecular (~4.400 Da) pode ser usado para indicar a permeabilidade de neo-vasos. Em conclusão, este protocolo pode fornecer um método confiável e conveniente para o estudo quantitativo da angiogênese in vivo.

Introdução

A angiogênese, processo de formação de neovasos a partir de vasos pré-existentes, desempenha papel crítico em muitos processos fisiológicos e patológicos, como desenvolvimento embrionário, cicatrização de feridas, aterosclerose, desenvolvimento tumoral, etc.1,2,3,4,5. Esse processo dinâmico envolve várias etapas, incluindo a degradação da matriz, proliferação de células vasculares, migração e auto-organização para formar estruturas tubulares e a estabilização dos neovasos6. A promoçã....

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Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo animais foram aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC) da Wenzhou Medical University (XMSQ2021-0057, 19 de julho de 2021). Todos os reagentes e consumíveis estão listados na Tabela de Materiais.

1. Preparo do meio de cultura

  1. Meio de cultura 10x M199: Dissolver o pó M199 na concentração de 10x com 90 mL de água deionizada e adicionar 10 mL de soro fetal bovino (SFB), passando em seguida por um filtro de 0,22 μm. Conservar o meio a 4 °C até 2 meses.
  2. Meio de cultura endotelial completo: Adicionar 50 mL de SFB, 5 mL....

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Resultados

A Figura 1 é o fluxograma descrevendo como preparar a mistura de gel de matriz, células vasculares, meio de cultura e reagente. A mistura foi então injetada por via subcutânea no dorso de camundongos Nu/Nu e aquecida usando uma almofada de aquecimento para acelerar sua coagulação e, finalmente, formar plugue de gel.

A Figura 2A é o fluxograma para indicar vasos com dextrano marcado fluorescente. O dextran fluorescente marcado foi inje.......

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Discussão

Apresentamos um método confiável e conveniente para a avaliação quantitativa da angiogênese in vivo sem coloração. Nesse protocolo, as células vasculares foram misturadas com gel de matriz na presença de reagentes pró-angiogênicos ou antiangiogênicos e, em seguida, injetadas por via subcutânea no dorso de camundongos Nu/Nu para formar plugue de gel (Figura 1). Após 7 dias da formação do plugue de gel, o dextran-FITC foi injetado por via intravenosa e circulado por 30 min. O plugue d.......

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Divulgações

Os autores declaram a inexistência de conflitos de interesse.

Agradecimentos

Este trabalho foi financiado pela Fundação de Ciências Naturais da Província de Zhejiang (LY22H020005) e pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (81873466).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Lâminas de microscópio de adesãoCITOTEST188105
Sistema de anestesiaRWDR640-S1
Contador de célulasInvitrogenAMQAX1000
Placa de cultura de célulasCorning430167
CryoslicerThermo FisherCryoStar NX50
Dextrans-FITC-150kDaWEIHUA BIO
Dextrans-FITC-4kDaWEIHUA BIOWH007N0705
de IncorporaçãoCITOTEST80203-0007
Meio de Células EndoteliaisScienCell35809
Suplementos de Crescimento EndotelialScienCell1025
Soro Bovino FetalGibco10100147C
Fibroblasto Fator de Crescimento 1Microscópio de Fluorescência AtaGenix9043p-082318-A01FGF1
AlmofadaECLIPSE Ni
Seringa de Insulina
IsofluranoRWDR510-22-10
BalanceSartoriusBSA124S-CW
MatrigelCorning356234Matrix gel
Médio 199 póGibco31100-035
MicrotubosAxygenMCT-150-C
Temperatura de Corte Ótima (OCT) CompostoSUKURA4583Gel de inclusão de tecido
Palmitato ÁcidoKunChuangKC001
Penicilina-estreptomicina LíquidoSolarbioP1400
Tampão de fosfato SalinoSolarbioP1022
Instrumentos cirúrgicosRWDRWD
Instrumento de injeção de veia caudalKEW BASISKW-XXY
Solução de tripsina-EDTASolarbioT1320
Temperatura ultrabaixa FreezereppendorfU410
Fator de Crescimento Endotelial VascularCHAMOTCM058-5HPVEGF
WH007N07 de Aquecimento Nikon Boruida 30-50-30 BD 300841 Laboratório 

Referências

  1. Bikfalvi, A. History and conceptual developments in vascular biology and angiogenesis research: a personal view. Angiogenesis. 20 (4), 463-478 (2017).
  2. Carmeliet, P., Jain, R. Principles and mechanisms of vessel....

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Reimpressões e permissões

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