É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Estabelecimento de modelo de camundongo xenoenxerto derivado de pacientes com tecidos de osteossarcoma humano

2.1K visualizações

⸱

DOI:

10.3791/66491

⸱

22 de março de 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

O presente protocolo descreve o método para estabelecer um modelo de camundongo xenoenxerto derivado do paciente (PDX) usando tecido de osteossarcoma humano.

Resumo

O osteossarcoma é o tumor ósseo maligno primário mais comum em crianças e adolescentes. Apesar do desenvolvimento de novos planos de tratamento nos últimos anos, o prognóstico para pacientes com osteossarcoma não melhorou significativamente. Portanto, é crucial estabelecer um modelo pré-clínico robusto com alta fidelidade. O modelo de xenoenxerto derivado do paciente (PDX) preserva fielmente as características genéticas, epigenéticas e heterogêneas das malignidades humanas para cada paciente. Consequentemente, os modelos PDX são considerados modelos in vivo autênticos para estudar vários tipos de câncer em estudos de transformação. Este artigo apresenta um protocolo abrangente para criar e manter um modelo de camundongo PDX que espelha com precisão as características morfológicas do osteossarcoma humano. Isso envolve o transplante imediato de tecido de osteossarcoma humano recém-ressecado em camundongos imunocomprometidos, seguido de passagem sucessiva. O modelo descrito serve como uma plataforma para estudar o crescimento, resistência a drogas, recidiva e metástase do osteossarcoma. Além disso, auxilia na triagem da terapêutica alvo e no estabelecimento de esquemas de tratamento personalizados.

Introdução

O osteossarcoma é uma malignidade óssea primária derivada de células do lobo interósseo e é mais comum em adolescentes e crianças. Ocorre frequentemente na epífise da diáfise longa e é caracterizada por alta malignidade, metástase precoce e mau prognóstico 1,2. A metástase pulmonar é a principal causa de morte em pacientes com osteossarcoma. A taxa de sobrevida em 5 anos de pacientes com osteossarcoma não metastático é de 65% a 70%3. No entanto, nos últimos 40 anos, a taxa de sobrevida em 5 anos (apenas 20%) dos pacientes com osteossarcoma metastático não melhorou significativamente, e 25% dos pacientes com osteossarcoma apresentam metástases no momento do diagnóstico4. Atualmente, as drogas de primeira linha para o tratamento do osteossarcoma chegaram a um consenso, mas ainda existem diferenças significativas no esquema quimioterápico e no tempo de tratamento5. É importante realizar experimentos pré-clínicos baseados em modelos animais apropriados para obter regimes de quimioterapia mais eficazes.

Atualmente, os modelos comumente usados para experimentos pré-clínicos de osteossarcoma incluem cultura de células in vitro baseada em linhagem celular e xenoenxertos derivados de células in vivo (CDX), bem como xenoenxertos derivados de pacientes (PDX)6,7.

As linhagens celulares são convenientes para cultura e uso em estudos in vitro , ou para transplante em camundongos imunodeficientes para estabelecer modelos de CDX8. No entanto, as linhagens celulares cultivadas in vitro podem não refletir com precisão a heterogeneidade das malignidades e as características individuais dos pacientes devido a possíveis mutações que ocorrem para se adaptar ao ambiente de cultura in vitro durante passagens repetidas. Além disso, eles não possuem o microambiente e o sistema imunológico necessários para o crescimento e desenvolvimento do tumor in vivo. Embora os modelos de CDX ofereçam algumas vantagens sobre a cultura de células in vitro , eles ainda podem não refletir totalmente as características individuais dos pacientes com osteossarcoma, embora os tecidos tumorais obtidos a partir de modelos de CDX tenham heterogeneidade intratumoral e representação do sistema imunológico limitadas em comparação com as linhagens celulares cultivadas in vitro9. Portanto, estabelecer um modelo pré-clínico com alta fidelidade é crucial.

Os modelos PDX envolvem o transplante imediato de tecidos cancerígenos humanos recém-ressecados em camundongos imunodeficientes. Esse método permite a preservação fiel das características genéticas, epigenéticas e heterogêneas das neoplasias malignas humanas para cada paciente, mesmo após passagens sucessivas em camundongos. Além disso, os modelos PDX são conhecidos por prever com precisão resultados clínicos posteriores10, tornando-os ferramentas valiosas para a criação de tratamentos individualizados e o avanço da pesquisa em medicina de precisão11.

Este trabalho descreve o procedimento para estabelecer um modelo PDX em camundongos imunodeficientes por meio do transplante de tecido de osteossarcoma humano. Esses modelos servem como plataformas para a realização de experimentos pré-clínicos para osteossarcoma.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

Todos os estudos envolvendo tecidos humanos foram aprovados pelo Comitê de Revisão de Ética Institucional do Hospital Longhua, afiliado à Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Xangai (Xangai, China) (2013LC52), e o consentimento informado por escrito foi obtido dos pacientes de acordo com a Declaração de Helsinque. O número IACUC para este estudo em animais é PZSHUTCM221017013. Camundongos CAnN.Cg-Foxn1nu/Crl machos com quatro semanas de idade receberam dieta para roedores irradiados com leão duplo GB 14924.3 e água estéril, e foram alojados em gaiolas de camundongos IVCs com cinco camundongos por gaiola, sob condições de FPS com um ciclo claro/escuro de 12 horas. A Tabela de Materiais inclui informações detalhadas sobre todos os materiais, reagentes e instrumentos usados neste protocolo.

1. Preparação do tecido de osteossarcoma humano

NOTA: Neste estudo, o tecido do osteossarcoma humano foi ressecado12 da lesão do fêmur de um paciente com osteossarcoma de 15 anos antes da quimioterapia.

  1. Armazene imediatamente o tecido de osteossarcoma recém-ressecado em uma solução protetora de tecido para maximizar a preservação da ativação das células do osteossarcoma após o enxágue com solução salina fisiológica estéril.
    NOTA: Os tecidos de osteossarcoma recém-ressecados devem ser transplantados para camundongos o mais rápido possível. Eles podem ser armazenados na solução protetora tecidual por no máximo 24 horas antes do transplante. Os tecidos de osteossarcoma usados para modelagem devem ser de pacientes que não receberam quimioterapia. A atividade das células tumorais de pacientes que receberam quimioterapia será pobre, levando à falha no estabelecimento do modelo e perda de alta fidelidade.
  2. Transfira os tecidos de osteossarcoma recém-ressecados armazenados na solução protetora tecidual para o laboratório o mais rápido possível.
  3. Preparar instrumentos e materiais experimentais para o estabelecimento do modelo PDX: bisturis (Figura 1A); pinça oftálmica (Figura 1B,C); tesoura oftálmica (Figura 1D); agulha de sutura (Figura 1E); linha de sutura (Figura 1F); porta-agulha reto (Figura 1G); caneta de marcação (Figura 1H).
    NOTA: Certifique-se de que todos os instrumentos cirúrgicos sejam esterilizados em autoclavagem antes do uso.
  4. Enxágue os tecidos do osteossarcoma duas vezes com soro fisiológico estéril pré-resfriado em um capuz estéril.
  5. Remova áreas do tecido osteossarcoma com sangramento e necrose.
  6. Corte o tecido de osteossarcoma limpo em 3 mm3 pedaços com um bisturi em uma placa de cultura contendo solução salina fisiológica estéril pré-resfriada e mantenha-o no gelo.

2. Estabelecimento de modelos PDX por transplante de tecido de osteossarcoma na região do flanco de camundongos

  1. Administrar analgesia pré-operatória de meloxicam (5 mg/kg/24 h) por injeção subcutânea em ratinhos e colocar os ratinhos nus em campos cirúrgicos estéreis. Forneça suporte térmico durante todo o procedimento.
  2. Induza a anestesia em camundongos, expondo-os a 3% de isoflurano e 97% de oxigênio. Depois que os camundongos estiverem completamente anestesiados, transfira-os para o cone do nariz e mantenha a anestesia com isoflurano a 1,5% e oxigênio a 98,5%.
  3. Aperte os dedos dos pés para garantir que os ratos estejam completamente anestesiados e espere mais tempo se ainda houver espasmos ou reações convulsivas.
    NOTA: Todos os procedimentos devem ser realizados com equipamento estéril em capuz estéril. Evite o ressecamento dos camundongos durante a anestesia, aplicando pomada oftálmica nos olhos.
  4. Prenda o mouse em decúbito lateral (Figura 2A). Desinfete um lado da região do flanco do camundongo para transplante de tecido de osteossarcoma 3 vezes com rodadas alternadas de iodopovidona e bolas de algodão desinfetante com etanol a 70%.
    NOTA: A desinfecção cirúrgica é realizada em um padrão circular, começando no centro e espiralando para fora.
  5. Marque o local da incisão cirúrgica na pele com um marcador.
  6. Faça uma incisão de 5 mm da pele aos tecidos subcutâneos com bisturi (Figura 2B).
  7. Levante a pele do lado superior da margem da incisão com uma pinça oftálmica usando a mão esquerda e faça a dissecção romba para cima sob a derme dos camundongos com um porta-agulha reto usando a mão direita (Figura 2C).
  8. Segure a pele da parte superior da incisão com a pinça oftálmica usando a mão esquerda e coloque o tecido do osteossarcoma sob a pele aproximadamente 5 mm acima da margem da incisão com uma pinça oftálmica usando a mão direita para transplantar o tecido do osteossarcoma (Figura 2C).
    NOTA: Certifique-se de que o tecido do osteossarcoma seja transplantado logo abaixo da derme da pele. A dissecção romba é realizada com uma pinça de dissecção reta e romba, como um porta-agulha reto, para evitar penetrar na cavidade torácica do camundongo enquanto encontra a camada dérmica da pele do camundongo.
  9. Suturar a incisão com sutura absorvível com 2-3 pontos para uma incisão de 5 mm (Figura 2D).
  10. Retorne os camundongos para gaiolas limpas e monitore-os até que se recuperem completamente da anestesia.
    NOTA: O PDX estabelecido pelo transplante do tecido do osteossarcoma humano é designado como passagem 0 (P0), o PDX estabelecido pelo transplante do tecido PDX em P0 é designado como passagem 1 (P1), seguido por P2 e P3.

3. Coleta de tecidos tumorais PDX

  1. Meça o volume do tumor uma vez por semana. Quando o tamanho do tumor atingir 1500 mm3, eutanasiar os camundongos usando o método de luxação cervical após a inalação de CO2 . Os desfechos humanos incluem ulceração tumoral ou problemas com a mobilidade dos membros anteriores.
    NOTA: Meça o diâmetro longo (a) e o diâmetro curto (b) do tumor usando um paquímetro. Calcule o volume do tumor (V) usando a fórmula: V = 1/2 × a × b2.
  2. Posicione o camundongo lateralmente para expor o tumor e desinfete a pele no local do tumor com uma bola de algodão embebida em álcool.
  3. Use uma tesoura oftálmica para separar todo o tumor. Pese a massa tumoral usando uma balança eletrônica.

4. Exame patológico de tecidos clínicos primários e tumorais PDX

  1. Fixe os tecidos tumorais13 em um tubo de 50 mL contendo 30 mL de solução de formalina tamponada neutra a 10% por 24 h. Enxágue bem os tecidos tumorais com água corrente para remover o fixador.
  2. Desidrate e incorpore os tecidos tumorais em parafina14.
  3. Corte os tecidos tumorais e faça o exame histológico de rotina15.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

Este protocolo descreve o procedimento detalhado para estabelecer um modelo de camundongo PDX, preservando as características morfológicas do osteossarcoma humano após o transplante imediato de tecido de osteossarcoma humano recém-ressecado e passagens sucessivas em camundongos. Aqui, um modelo de camundongo PDX foi estabelecido com sucesso usando tecido de osteossarcoma humano.

A Figura 3A mostra um camundongo representativo de PDX em P0, dois meses após o transp...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

Os modelos PDX podem simular as características dos cânceres humanos e manter mais semelhança com o tumor primário, incluindo alterações genéticas e genômicas, histologia, heterogeneidade e perfil de expressão gênica 16,17,18,19. Portanto, eles preservam os fenótipos moleculares e genótipos de pacientes com câncer, fornecendo abordagens inovadoras para estudar ...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Os autores declaram não haver interesses financeiros concorrentes.

Agradecimentos

Este trabalho é apoiado por doações de (1) National Nature Science Foundation (81973877 e 82174408); (2) Projeto de construção do Centro de Pesquisa de Alta Prioridade de Xangai (2022ZZ01009); (3) Programa Nacional de P&D da China (2020YFE0201600); (4) Centro de Inovação Colaborativa de Xangai de Transformação Industrial da Preparação da MTC Hospitalar e (5) Projetos de Pesquisa dentro do Orçamento da Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Xangai (2021LK047).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Solução neutra de formalina a 10%Wuhan Saiweier Biotechnology Co., LtdG1101-500mlFixe os tecidos
AutoclaveJapão Hiryama CompanyHVE-50Instrumentos cirúrgicos de esterilização
CAnN.Cg-Foxn1nu/CrlShanghai SLAC Laboratory Animal Co, Ltd./
PaquímetroYantai Green Forest Tools Co., Ltd.034180AMeça o volume do tumor
Prato (60 mm)Shanghai NianYue Biotechnology Co., Ltd430166, CorningAmostra de amostra durante o transplante
Bolas de algodão desinfetanteShanghai Honglong Industrial Co., Ltd.20230627Desinfetar a pele de camundongos
Luvas estéreis descartáveisGuilin Hengbao Health Protection Co., Ltd.YT21131Operação estéril
Leão duplo irradiado dieta para roedores SuzhouShuangshi Experimental Animal Feed Technology Co., Ltd.GB 14924.3Balança eletrônica de alimentação animal
Shanghai NianYue Biotechnology Co., Ltd1-2000Pese o peso do tumor
EosinShanghai Gengyun Biotechnology Co., LtdE4009-25GHematoxilina eosina corante
HematoxilinaGengyun Biotechnology Co., LtdH3136-25GHematoxilina eosina corante
IsofluranoShenzhen RWD Vida Technology Co., LtdVETEASYAnestesia com camundongos 
Gaiola de camundongos IVCsSuzhou Monkey King Animal Experimental Equipment Technology Co., Ltd.HH-MMB-2de marca de barreira animal
Zebra Trading (Shenzhen) Co., Ltd.YYST5Marque a incisão cirúrgica
Microscópio óptico OlympusJaponês EmpresaBH20Fatias de tecido
de varredura Pomada oftálmicaShanghai Gengyun Biotechnology Co., LtdSOICOEYEGRLEvite olhos secos de camundongos durante a anestesia
Tesoura oftálmicaShanghai NianYue Biotechnology Co., LtdY00030 JZCorte a pele
Pinças oftálmicasShanghai NianYue Biotechnology Co., LtdBS-ZER-S-100 BiosharpSegure tecidos de osteossarcoma durante o transplante
ParafinaJiangsu Shitai Experimental Equipment Co., Ltd.80200-0015enterrado da parafina do tecido do osteossarcoma
Lyca Microsystem (Shanghai) que troca Co., Ltd.RM2235Osteossarcoma seção de tecido
fisiológicosolução salina Guangzhou Jinsheng Biotechnology Co., Ltd.605-004057Enxágue e armazenamento temporário de tecido de osteossarcoma
BisturisFábrica de instrumentos cirúrgicos de Xangai Medical Devices (Group) Co., Ltd.J11010-10# JZSeparação do tecido do osteossarcoma e fazer incisões cirúrgicas
Capuz estérilThermo Fisher Technology (China) Co., Ltd.ECO0.9Mesa de operação cirúrgica
estéril HenanHuayu Medical Equipment Co., Ltd.20160090Fornecer área de cirurgia estéril
Suporte de agulha retaShanghai Gengyun Biotechnology Co., LtdJ31050 JZSuturar a
ferida Linha de suturaShanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., LtdF3124Suturar a ferida
Agulha de suturaShanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., LtdF3124Suturar a
ferida Solução protetora de tecidoNanjing Shenghang Biotechnology Co., LTDBC-CFM-03Manter a atividade das células teciduais
Tubo (50 mL)Shanghai Baisai, Biotechnology Co., Ltd.BLD-BL2002500Instale a solução de fixação de formalina
animal Shanghai Caneta Máquina de corte

Referências

  1. Saraf, A. J., Fenger, J. M., Roberts, R. D. Osteosarcoma: accelerating progress makes for a hopeful future. Front Oncol. 8, 4(2018).
  2. Ligon, J. A., et al. Pathways of immune exclusion in metastatic osteosarcoma are associated with inferior patient outcomes. J Immunother Cancer. 9 (5), e001772(2021).
  3. Miwa, S., et al. Current and emerging targets in immunotherapy for osteosarcoma. J Oncol. 2019, 7035045(2019).
  4. Eaton, B. R., et al. Osteosarcoma. Pediatr Blood Cancer. 68 (2), e28352(2021).
  5. Ritter, J. Osteosarcoma. Ann Oncol. 21, 320-325 (2010).
  6. Lowery, C. D., et al. Broad spectrum activity of the checkpoint kinase 1 inhibitor prexasertib as a single agent or chemo potentiator across a range of preclinical pediatric tumor models. Clin Cancer Res. 25 (7), 2278-2289 (2019).
  7. Hingorani, P., et al. Trastuzumab deruxtecan, antibody-drug conjugate targeting Her2, is effective in pediatric malignancies: a report by the pediatric preclinical testing consortium. Mol Cancer Ther. 21 (8), 1318-1325 (2022).
  8. Brennecke, P., et al. CXCR4 antibody treatment suppresses metastatic spread to the lung of intratibial human osteosarcoma xenografts in mice. Clin Exp Metastasis. 31 (3), 339-349 (2014).
  9. Pan, B., Wei, X., Xu, X. Patient-derived xenograft models in hepatopancreatobiliary cancer. Cancer Cell Int. 22 (1), 41(2022).
  10. Tentler, J. J., et al. Patient-derived tumor xenografts as models for oncology drug development. Nat Rev Clin Oncol. 9 (6), 338-350 (2012).
  11. Yoshida, G. J. Applications of patient-derived tumor xenograft models and tumor organoids. J Hematol Oncol. 13 (1), 4(2020).
  12. Stitzlein, R. N., Wojcik, J., Sebro, R. A., Balamuth, N. J., Weber, K. L. Team approach: Osteosarcoma of the distal part of the femur in adolescents. JBJS Rev. 5 (12), 5(2017).
  13. Kai, K., et al. Formalin fixation on Her-2 and PD-l1 expression in gastric cancer: A pilot analysis using the same surgical specimens with different fixation times. World J Clin Cases. 7 (4), 419-430 (2019).
  14. Yang, T. S., et al. A practical protocol to prepare paraffin-embedded whole tick histology sections. Ticks Tick Borne Dis. 14 (4), 102162(2023).
  15. Chang, J., et al. Matrine inhibits prostate cancer via activation of the unfolded protein response/endoplasmic reticulum stress signaling and reversal of epithelial to mesenchymal transition. Mol Med Rep. 18 (1), 945-957 (2018).
  16. de Alava, E. Ewing sarcoma, an update on molecular pathology with therapeutic implications. Surg Pathol Clin. 10 (3), 575-585 (2017).
  17. Hidalgo, M., et al. Patient-derived xenograft models: An emerging platform for translational cancer research. Cancer Discov. 4 (9), 998-1013 (2014).
  18. Eoh, K. J., et al. Comparison of clinical features and outcomes in epithelial ovarian cancer according to tumorigenicity in patient-derived xenograft models. Cancer Res Treat. 50 (3), 956-963 (2018).
  19. Stewart, E. L., et al. Clinical utility of patient-derived xenografts to determine biomarkers of prognosis and map resistance pathways in EGFR-mutant lung adenocarcinoma. J Clin Oncol. 33 (22), 2472-2480 (2015).
  20. Kresse, S. H., Meza-Zepeda, L. A., Machado, I., Llombart-Bosch, A., Myklebost, O. Preclinical xenograft models of human sarcoma show nonrandom loss of aberrations. Cancer. 118 (2), 558-570 (2012).
  21. Dobrolecki, L. E., et al. Patient-derived xenograft (PDX) models in basic and translational breast cancer research. Cancer Metastasis Rev. 35 (4), 547-573 (2016).
  22. Abdolahi, S., et al. Patient-derived xenograft (PDX) models, applications and challenges in cancer research. J Transl Med. 20 (1), 206(2022).
  23. Deng, N., et al. Deep whole-genome sequencing identifies recurrent genomic alterations in commonly used breast cancer cell lines and patient-derived xenograft models. Breast Cancer Res. 24 (1), 63(2022).
  24. Chen, F., et al. Generation and characterization of patient-derived xenografts from patients with osteosarcoma. Tissue Cell. 79, 101911(2022).
  25. Fortuna-Costa, A., et al. An association between successful engraftment of osteosarcoma patient-derived xenografts and clinicopathological findings. Histol Histopathol. 35 (11), 1295-1307 (2020).
  26. Beck, J., et al. Canine and murine models of osteosarcoma. Vet Pathol. 59 (3), 399-414 (2022).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Explorar mais artigos

Modelo de OsteossarcomaTecido de Osteossarcoma HumanoModelo de Câncer Pré-clínicoTransplante de TumorCamundongos ImunodeficientesResistência a MedicamentosMetástase TumoralTerapia Personalizada contra o Câncer