Espectroscopia de infravermelho próximo durante hiperemia reativa para avaliação da função vascular de membros inferiores

A doença cardiovascular (DCV) é o principal contribuinte para a mortalidade global¹. Embora o infarto do miocárdio e o acidente vascular cerebral sejam as manifestações mais comuns das DCV, as doenças vasculares dos membros inferiores, como a doença arterial periférica (DAP) e a doença do pé diabético, contribuem substancialmente para a sobrecarga pessoal, social e de saúde das DCV2,3,4. É importante ressaltar que esses estados de doença são caracterizados por disfunção microvascular e macrovascular⁵ que contribuem para sintomas (por exemplo, claudicação intermitente), comprometimento funcional, baixa mobilidade, bem como isolamento social e redução da qualidade de vida⁶. Historicamente, as técnicas de avaliação vascular dos membros superiores têm sido usadas como uma medida da função vascular sistêmica e do risco cardiovascular associado; no entanto, esses métodos são potencialmente não sensíveis a comprometimentos locais na função vascular dos membros inferiores ^7,8. Embora atualmente exista uma variedade de técnicas usadas para avaliar a função vascular no membro inferior, como dilatação mediada por fluxo (FMD) e ultrassom com contraste, cada método tem desvantagens e limitações, como custo do equipamento, habilidade do operador ou necessidade de acesso venoso invasivo. Por essas razões, há necessidade de técnicas padronizadas e eficazes para avaliar a (dis)função vascular dos membros inferiores que possam ser mais prontamente implementadas em ambientes clínicos e de pesquisa.

A espectroscopia de infravermelho próximo de onda contínua (CW-NIRS) é um método não invasivo, de baixo custo e portátil que quantifica as mudanças relativas na oxigenação da hemoglobina in vivo. Como os sinais da hemoglobina oxigenada e desoxigenada NIRS são derivados dos pequenos vasos (<1 mm de diâmetro), o metabolismo do músculo esquelético local e a função microvascular podem ser avaliados⁹. Especificamente, o índice de saturação tecidual (TSI) [TSI = hemoglobina oxigenada/ (hemoglobina oxigenada + hemoglobina desoxigenada) x 100], fornece uma medida quantitativa da oxigenação tecidual⁹. Quando medidas antes, durante e após a oclusão e hiperemia reativa, as alterações no TSI indicam responsividade vascular de 'órgão-alvo', em relação à linha de base pré-oclusão. É importante ressaltar que esse método é sensível a alterações na capacidade de resposta e perfusão microvascular muscular associadas ao^{envelhecimento10}, progressão da^doença11 e intervenções clínicas (por exemplo, cirurgia de revascularização12,13 ou reabilitação por exercícios14,15,16,17) em indivíduos com ou em risco de disfunção microvascular.

A disponibilidade de sistemas NIRS levou a um rápido aumento no número de estudos de pesquisa relatando a função microvascular¹⁸. No entanto, as diferenças nos protocolos de teste de hiperemia reativa, a omissão de métodos NIRS detalhados e repetíveis, bem como a falta de uniformidade na descrição, apresentação e análise dos parâmetros de resposta NIRS, tornam as comparações entre ensaios individuais desafiadoras. Isso limita a coleta de dados para metanálise e a formulação de recomendações de avaliação clínica ^9,15.

Portanto, neste artigo, descrevemos os protocolos padronizados de teste NIRS e oclusão vascular de nosso laboratório para a avaliação da hiperemia reativa de membros inferiores. Ao disseminar esses métodos, pretendemos contribuir para a melhor padronização e repetibilidade dos procedimentos de coleta de dados e relatórios harmonizados.

Todos os métodos descritos aqui foram aprovados pelo comitê de ética em pesquisa humana da University of the Sunshine Coast. Além disso, todos os participantes assinaram o termo de consentimento livre e esclarecido para participar das medidas descritas neste protocolo. Observe que o teste de oclusão vascular no membro inferior é contra-indicado em indivíduos que já tiveram um procedimento de revascularização envolvendo enxerto vascular ou implante de stent nas artérias femoral ou poplítea. Após o preparo do equipamento, o participante é orientado a repousar em decúbito dorsal por 10 min. Neste ponto, a coleta de dados NIRS começa, com um período inicial de 2 minutos, permitindo que a estabilidade dos sinais NIRS seja alcançada. Os dados basais são então coletados por 1 min, momento em que um manguito localizado na coxa é prontamente inflado para atingir a oclusão arterial. A oclusão é mantida por 5 minutos antes que o manguito seja rapidamente esvaziado. A coleta de dados continua durante todo o período de hiperemia reativa até que os sinais se recuperem para a linha de base. A Figura 1 mostra uma visão geral do protocolo de hiperemia reativa e as etapas detalhadas são fornecidas abaixo. Os equipamentos utilizados para o estudo estão listados na Tabela de Materiais.

Figura 1: Esquema descrevendo o protocolo de medição de hiperemia reativa NIRS e os tempos. NIRS: espectroscopia de infravermelho próximo. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

1. Preparação do equipamento

NOTA: Vários NIRS, insuflação/oclusão do manguito e sistemas de coleta de dados podem ser usados para obter os resultados representativos descritos abaixo. É importante que os investigadores consultem seus próprios manuais de usuário específicos e estejam cientes do software exclusivo, calibração, luz ambiente e considerações específicas do participante/coorte.

1. Certifique-se de que todas as medições sejam realizadas em uma sala silenciosa e com temperatura controlada (21-23 °C).
2. Confirme se todos os equipamentos e materiais (consulte a Tabela de Materiais) estão disponíveis.
3. Certifique-se de que o dispositivo CW-NIRS e o computador para o qual o dispositivo está transmitindo estejam totalmente carregados e ligados.
4. Verifique se o dispositivo NIRS está emparelhado com o computador que exibe os dados NIRS via Bluetooth e se os parâmetros de medição da unidade NIRS são definidos de acordo com o local experimental e o projeto do estudo (um exemplo: defina o fator de comprimento de caminho diferencial (DPF) da luz infravermelha próxima).
   NOTA: A maioria das etapas do protocolo NIRS e configurações do sistema são baseadas em uma combinação de recomendações do fabricante, experiência dos pesquisadores e opinião de especialistas/consenso. Esteja ciente de que os valores gerados durante a medição dependem do dispositivo específico e das sondas usadas, bem como das configurações escolhidas no software do dispositivo. Também existe potencial para um alto grau de variabilidade interindividual nos sinais coletados. Além disso, para permitir uma melhor comparação entre os estudos, é importante relatar os detalhes da instrumentação NIRS (por exemplo, incluir o design da sonda, as distâncias de separação fonte-detector e os comprimentos de onda usados), configurações do sistema, posição/orientação da sonda em relação à geometria muscular e os parâmetros de análise/tratamento de dados ao publicar os resultados dessas medições.
5. Insira os dados do participante de acordo com os detalhes do software do dispositivo NIRS.
6. Conecte o inflador de manguito rápido às fontes de ar e energia.

2. Preparação dos participantes

1. Certifique-se de que o participante leu a declaração de informações do participante e o formulário de consentimento e deu seu consentimento para participar da medição antes do início.
2. Explique ao participante o que esperar durante a medição enquanto ele tira os sapatos e as meias e fica parado para as medidas antropométricas relevantes.
3. Faça uma medição das dobras cutâneas (em triplicata) sobre o local de medição NIRS planejado (por exemplo, no aspecto medial no ponto da circunferência máxima da panturrilha).
   NOTA: Isso permite que a profundidade da pele e do tecido adiposo (rotineiramente chamada de espessura do tecido adiposo - ATT) seja confirmada em relação à profundidade de penetração do sinal NIRS. Alternativamente, o ultrassom pode ser usado para determinar a espessura do tecido adiposo. Lembre-se sempre de que a profundidade do sinal/medição NIRS é aproximadamente metade da distância receptor-transmissor⁹.
4. Para maximizar a qualidade do sinal, verifique o local planejado da sonda transmissora/receptora NIRS para ver se há pêlos que possam absorver luz e remova os pêlos raspando, se necessário.
   NOTA: Se a pele estiver comprometida, por exemplo, por celulite, ou se houver edema, considere a adequação da medição, pois esses problemas estão relacionados à qualidade do sinal potencialmente reduzida, profundidade de penetração do sinal/tecido do qual a medição é feita, bem como esterilidade da ferida do participante.
5. Faça medições e/ou marque a posição da colocação planejada da sonda NIRS em relação aos pontos anatômicos relevantes (por exemplo, superfície superior do côndilo medial) para permitir a colocação precisa da sonda NIRS entre e dentro dos participantes (dependendo do desenho do estudo e do projeto/forma da sonda), pois as respostas de oxigenação podem exibir grande heterogeneidade entre diferentes músculos ou mesmo dentro de regiões do mesmo músculo.
6. Peça ao participante para deitar em decúbito dorsal em um pedestal ou cama de exame. O participante então descansa por 10 min.
7. Coloque um manguito ao redor da coxa, proximal ao joelho, garantindo que os tubos não entrem em contato com a panturrilha ou com o dispositivo NIRS (Figura 2).
8. Eleve a perna (~10 cm) com o pé e o tornozelo sobre um suporte de espuma, deixando a perna estável e acessível para as medições (Figura 3).
   NOTA: Se o teste for necessário para ser realizado em ambas as pernas em várias ocasiões, a ordem do teste é aleatória (antes do teste inicial) e a ordem do teste é mantida para avaliações subsequentes para cada participante.
9. Ligue o módulo de enchimento rápido do manguito.
   NOTA: Certifique-se de que as configurações de modo e pressão do inflador rápido do manguito sejam consistentes com as instruções do fabricante e as especificações do protocolo de oclusão vascular.
10. Ligue a fonte de ar do inflador do manguito, verifique se o ar pode passar pela mangueira e conecte a mangueira ao manguito da coxa.
11. Certifique-se de que a mangueira do inflador de braçadeira ainda não esteja em contato com a panturrilha.
12. Fixe a sonda transmissora/receptora NIRS com segurança na pele sobrejacente ao(s) local(is) de medição (rotineiramente, o aspecto medial do gastrocnêmio; no entanto, outros locais, como o dorso do pé e o tibial anterior, também são utilizados, dependendo do estudo e das especificidades do participante).
    NOTA: Alguns sistemas NIRS permitem a possibilidade de várias medições do local simultaneamente.
13. Cubra a sonda com fita adesiva preta ou algo semelhante, tomando cuidado para vedar as bordas para evitar que a luz ambiente afete a qualidade/valores do sinal NIRS (Figura 3).
    NOTA: Ao fixar a sonda e a cobertura adesiva, certifique-se de eliminar o movimento da sonda, mas evite comprimir a pele/tecido adiposo/músculo.

Figura 2: Exemplo da colocação do manguito oclusivo na coxa. (A) De cima. (B) De lado. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3: Exemplo de posição da sonda de espectroscopia de infravermelho próximo. (A) Sonda conectada à pele raspada no gastrocnêmio medial. (B) Colocação da sonda enquanto o tornozelo estiver em suporte de espuma para permitir o acesso e garantir a estabilidade. (C) Blindagem contra luz ambiente no lugar. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

3. Coleta de dados de linha de base

1. Peça ao participante que permaneça relaxado, evite falar e mantenha a(s) perna(s) imóvel(is) durante a coleta de dados.
2. Inicie a gravação do dispositivo NIRS através da interface do computador.
   NOTA: Se a coleta de dados offline estiver habilitada e preferida, inicie o dispositivo NIRS diretamente.
3. Permita que pelo menos 2 minutos de dados sejam adquiridos antes de iniciar o início da medição. Isso garante que os sinais de estado estacionário sejam alcançados antes da aquisição de dados.
4. Monitore a tela do computador para garantir a integridade do sinal de dados e valores fisiologicamente plausíveis. Por exemplo, os valores de aquisição de dados (DAQ) fornecem informações sobre a qualidade do sinal e a quantidade de luz ambiente detectada pelo dispositivo NIRS. Eles devem ser mantidos em uma faixa aceitável durante toda a medição.
5. Se, após 2 min, nenhuma flutuação no sinal NIRS for observada (por exemplo, devido a um artefato de movimento), defina a linha de base de dados NIRS pressionando o botão correspondente no computador/dispositivo/unidade de sincronização. Esta linha de base reflete o ponto de partida comparativo da medição. As alterações na hemoglobina oxigenada e desoxigenada serão interpretadas em relação a esta linha de base.
   NOTA: Durante a coleta de dados, insira marcadores de eventos baseados em software de marcos específicos, ou seja, início e fim da linha de base, início e fim da oclusão do manguito, etc., para auxiliar na análise dos dados.
6. Colete pelo menos 1 minuto de dados de linha de base, garantindo novamente que nenhuma flutuação ou artefato de movimento ocorra durante esse período.
   NOTA: As flutuações nos dados basais afetarão a interpretação de algumas variáveis potenciais, como a reserva hiperêmica (consulte a seção de resultados representativos).

4. Oclusão vascular

1. Defina a pressão do manguito para 200 mmHg no inflador rápido do manguito antes de mudar para o modo de manguito (ou configuração relevante em sistemas alternativos).
   NOTA: Embora alguns autores recomendem a insuflação para 250 mmHg na coxa ^9,19, em nossa experiência, isso não é bem tolerado por alguns participantes, levando à descontinuação da medição. A insuflação para 200 mmHg é suficiente, na maioria dos grupos de participantes, para ocluir o influxo arterial em repouso, embora seja tolerável e não resulte em hematomas na pele. Para garantir que a oclusão efetiva seja alcançada a 200 mmHg, nosso grupo usa rotineiramente a pletismografia de strain gauge simultaneamente com o NIRS para confirmar a ausência de fluxo sanguíneo a jusante durante o período de insuflação do balonete.
2. Aconselhe o participante sobre o que esperar (desconforto, sensações de formigamento, etc.) durante o processo de inflar o manguito a 200 mmHg por um período de 5 min, seguido de uma desinsuflação total do manguito. Lembre o participante novamente de permanecer relaxado, abster-se de falar e manter a(s) perna(s) imóvel(is) durante a coleta de dados.
   NOTA: É nossa experiência que os primeiros 30-60 s do período de oclusão são os menos confortáveis para os participantes. Quando os participantes deixam as pernas relaxarem, eles tendem a achar a oclusão mais tolerável.
3. Quando estiver pronto para iniciar a inflação do manguito, marque o fim do período de linha de base no software NIRS.
4. Infle o manguito da coxa a uma pressão suprassistólica de 200 mmHg ou, alternativamente, a 220 mmHg em casos raros em que 200 mmHg se mostraram ineficazes.
5. Monitore o computador ou a tela para garantir a integridade dos dados durante o período de oclusão.
6. À medida que o final dos 5 minutos de oclusão do manguito se aproxima, prepare o participante lembrando-o de manter a perna o mais imóvel possível e abster-se de falar por aproximadamente 3 minutos após a desinsuflação do manguito (enquanto os dados das respostas vasculares à hiperemia reativa estão sendo coletados).
   NOTA: Este lembrete para o participante permanecer imóvel é importante, pois os participantes podem ficar tentados a mover o membro para aliviar/aliviar o desconforto à medida que a circulação é restaurada.

5. Hiperemia reativa

1. Após 5 minutos de oclusão, esvazie rapidamente o manguito da coxa completamente (até 0 mmHg). Simultaneamente, marque o fim do período oclusivo no software NIRS. A resposta de hiperemia reativa, devido à retomada do fluxo sanguíneo e fatores relacionados, será visível no display do software NIRS (Figura 4).
2. Após um mínimo de 3 minutos após a oclusão, ou alternativamente, após os dados NIRS retornarem à linha de base, marque o fim do período de recuperação no software NIRS e interrompa a medição.
   NOTA: A duração da recuperação depende, em parte, da investigação ou da questão clínica que está a ser investigada e, portanto, dos parâmetros NIRS específicos escolhidos para análise, bem como do potencial para medidas concomitantes (como a febre aftosa) que podem exigir uma duração de recuperação mais longa.
3. Inicie o salvamento de dados e a exportação dos resultados do NIRS para tratamento e análise de dados.

6. Procedimentos de acompanhamento

1. Remova o(s) dispositivo(s) NIRS e a braçadeira do participante.
2. Se necessário, limpe o dispositivo NIRS (e o manguito de oclusão) seguindo as instruções do fabricante e os padrões de higiene relevantes.
3. Inspecione o dispositivo NIRS para garantir a integridade do transmissor/receptor e o desempenho da bateria para medições futuras.

Espectroscopia de infravermelho próximo
Dispositivos de espectroscopia de infravermelho próximo de onda contínua medem mudanças relativas na hemoglobina oxigenada (O2Hb) e desoxigenada (HHb), que refletem a entrega e utilização local de O2 por meio de fontes emissoras de luz e fotodetectores, separando distâncias específicas. Comprimentos de onda de luz entre ~ 700 nm e 850 nm são emitidos, correspondendo ao pico de absorção de O2Hb e HHb. Uma vez que a luz infravermelha próxima penetrou no músculo esquelético, a dispersão e a absorção da luz dependem do comprimento de onda. O músculo esquelético é um tecido heterogêneo e, portanto, os coeficientes de dispersão e absorção, bem como o comprimento do caminho fornecido pelo qual a luz viaja, não podem ser quantificados. Portanto, a tecnologia CW-NIRS usa a Lei de Lambert-Beer modificada, que inclui um fator diferencial de comprimento de caminho (DPF) e permite que as concentrações relativas de O2Hb e HHb sejam calculadas. Além de O2Hb e HHb, as medidas derivadas do CW-NIRS incluem hemoglobina total (THb = O2Hb + HHb), um marcador de volume sanguíneo / força total do sinal e índice de saturação tecidual (TSI = O2Hb / THb * 100). O TSI é gerado pela tecnologia de espectroscopia espacialmente resolvida (SRS), onde os fótons são medidos em vários espaçamentos da fonte, melhorando a precisão9 e fornecendo uma medida quantitativa da oxigenação do tecido. Além disso, devido às múltiplas distâncias fonte-detector, o SRS aumenta a contribuição de tecidos mais profundos, enquanto reduz a contribuição de tecidos mais superficiais, como pele / tecido adiposo, para os sinais NIRS. Também é importante notar que o TSI é alternadamente referido como saturação regional de oxigênio (rSO2), índice de oxigenação tecidual (TOI) ou saturação de oxigênio do tecido muscular (StO2) na literatura. Sugere-se, portanto, que, no futuro, um único termo seja adotado para padronizar a nomenclatura e reduzir a confusão.

Recomenda-se ainda que todos os traços NIRS coletados durante a pesquisa sejam analisados e relatados9. Também é importante observar que os espectrômetros CW não fornecem concentrações absolutas de cromóforos nos tecidos interrogados porque o comprimento real do caminho da luz é desconhecido. Em vez disso, esses dispositivos fornecem alterações em relação a uma linha de base predeterminada. Portanto, como observado por Cornelis et al.15, recomenda-se que os sinais NIRS sejam analisados como mudanças a partir de um ponto de interesse no tempo. Recomenda-se, adicionalmente, que as amplitudes e inclinações das respostas sejam o foco do relato e da interpretação, pois essas variáveis são menos sensíveis a questões de confusão, como espessura do tecido adiposo ou relação sinal-ruído.

Sinais NIRS durante a oclusão e hiperemia reativa
Este artigo se concentrará predominantemente na descrição das respostas do sinal TSI durante a oclusão e hiperemia reativa, pois essa medida de SRS é menos propensa a alterações nas contribuições do sinal cutâneo e erro de medição quando comparada aos sinais brutos deO2Hb e HHb.

Uma seleção das variáveis do NIRS TSI avaliadas durante a oclusão e hiperemia reativa está representada na Figura 4. O TSI basal representa o TSI médio antes do início da oclusão vascular (insuflação do manguito), rotineiramente por 1 min. A taxa de dessaturação durante a oclusão é representada por Slope 1. Devido à oclusão arterial, as reduções no TSI indicadas pela Inclinação 1 podem ser atribuídas à utilização de oxigênio/taxa metabólica do músculo de repouso. O TSIMIN é o valor mais baixo do TSI obtido durante a oclusão. O TSIIMAG (diferença entre o TSI basal e o TSIMIN) representa a magnitude da isquemia induzida pela oclusão (e o estímulo para vasodilatação e hiperemia pós-oclusão). A inclinação 2 indica a taxa de reperfusão após a liberação do balonete e representa a resposta de hiperemia reativa/reatividade microvascular. Alternativamente, a inclinação de reperfusão pode ser descrita como um meio tempo. O TSIMAX é o valor mais alto de TSI obtido após a liberação do manguito. A magnitude da reperfusão é calculada como a diferença entre o TSIMAX e o TSIMIN, e o tempo para o TSIMAX é calculado como a diferença no tempo (s) do TSIMIN para o TSIMAX. A área de hiperemia reativa do TSI sob a curva (AUC) é calculada a partir do retorno à linha de base após a liberação do manguito por 1 min, 2 min, ou 3 min. Por fim, a reserva hiperêmica, representando a mudança no TSI acima da linha de base, pode ser calculada como a diferença entre o TSIMAX e o TSI basal, expressa em porcentagem 9,10,12,20.

Figura 4: Sinal do índice de saturação tecidual (TSI) durante um teste de oclusão vascular NIRS com variáveis TSI de interesse durante a hiperemia reativa. O TSI basal representa o TSI médio antes do início da insuflação do manguito. A inclinação 1 representa a taxa de dessaturação durante a oclusão. O TSIMIN é o valor mais baixo do TSI obtido durante a oclusão. O TSIIMAG (diferença entre o TSI basal e o TSIMIN) representa a magnitude da isquemia induzida pela oclusão. A inclinação 2 indica a taxa de reperfusão após a liberação do balonete. O TSIMAX é o valor mais alto de TSI obtido após a liberação do manguito. A magnitude da reperfusão é calculada como a diferença entre TSIMAX e TSIMIN, e o tempo para TSIMAX é calculado como a diferença de tempo (s) de TSIMIN para TSIMAX. A área de hiperemia reativa sob a curva (AUC) do TSI é calculada a partir do retorno à linha de base após a liberação do manguito por 1 min, 2 min ou 3 min. A reserva hiperêmica, que representa a mudança no TSI acima da linha de base, pode ser calculada como a diferença entre o TSIMAX e o TSI basal, expressa em porcentagem. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Além das variáveis do TSI, também é possível estimar o consumo de oxigênio tecidual (mVO2) durante a oclusão do manguito arterial, dada a ausência de alterações no volume sanguíneo, calculando as inclinações de mudança em HHb eO2Hb durante a porção linear inicial das respostas desses parâmetros à oclusão (S lope 1), com base na suposição de que a taxa de desaparecimento de O2Hb (e/ou a taxa de aparecimento de HHb) equivale à taxa de utilização de oxigênio pelo músculo sob interrogatório.

Utilizando NIRS para avaliar a capacidade de resposta microvascular em populações clínicas
É importante ressaltar que as medições do NIRS durante o teste de hiperemia reativa podem diferenciar as respostas microvasculares de participantes aparentemente saudáveis daqueles com vários graus de disfunção. As diferenças na capacidade de resposta entre um indivíduo aparentemente saudável e um indivíduo com DAP são vistas na Figura 5. Especificamente, taxas mais lentas de reperfusão, tempos de recuperação mais longos, respostas hiperêmicas máximas menores e diferenças em variáveis como tempo para TSIMAX eTSI AUC são observadas em um participante representativo com DAP, em comparação com o controle saudável20. É importante observar que variáveis NIRS, como as descritas neste artigo, também são usadas durante o exercício clínico padronizado e testes de oclusão para avaliar respostas (micro)vasculares a um tratamento específico ou estímulo de atividade física ou para determinar o resultado do treinamento físico de rotina em populações saudáveis17 e DCV21. Para um resumo recente dos parâmetros de medição do NIRS e resultados de estudos utilizando NIRS na doença vascular periférica de membros inferiores durante hiperemia reativa e exercício, consulte a revisão sistemática de Joseph et al.18.

Por fim, ao projetar pesquisas que incorporem medidas NIRS, como as exibidas na Figura 4 e na Figura 5, esteja ciente de que uma grande variabilidade interindividual em valores absolutos foi demonstrada em populações aparentemente saudáveis e clínicas, tornando difícil, por exemplo, definir valores absolutos para o diagnóstico de DAP com base nos dados NIRS22.

Figura 5: Sinal do índice de saturação tecidual (TSI) durante o teste de hiperemia reativa. Sinal de índice de saturação tecidual (TSI) evidenciando a capacidade do NIRS de distinguir entre a capacidade de resposta vascular de um participante do sexo masculino aparentemente saudável e um participante do sexo masculino com doença arterial periférica (Índice Tornozelo-Braquial = 0,5) durante o teste de hiperemia reativa. *Início da linha de base NIRS; #Início da oclusão arterial; ^ Fim da oclusão arterial. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Medições abaixo do ideal
Conforme descrito na seção de protocolo acima, uma vez que os sinais NIRS estão sendo registrados, é importante inspecionar visualmente os traços de dados em busca de artefatos de movimento antes de definir a linha de base NIRS para todos os rastreamentos. A Figura 6 mostra artefatos de movimento nostraços deO2, Hb e THb.

Figura 6: Exemplo de artefato de movimento no sinal NIRS durante o período de coleta de dados pré-linha de base. #Início do período pré-linha de base NIRS. THb: Hemoglobina total. O2Hb: Hemoglobina oxigenada. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

O protocolo descrito acima utiliza uma pressão de 200 mmHg para ocluir o fluxo arterial no membro inferior. Muito ocasionalmente, essa pressão não é suficiente para ocluir o fluxo sanguíneo, o que compromete a resposta hiperêmica. Isso pode ocorrer, por exemplo, em um participante com hipertensão grau 3. Além de usar outras tecnologias, como pletismografia por strain gauge, para confirmar a cessação do fluxo sanguíneo, é importante estar atento a qualquer variação das respostas NIRS previstas após a oclusão do manguito (por exemplo, Figura 7, Painel B: O 2Hb sinal aumentando (não diminuindo devido à hipóxia e utilização de oxigênio tecidual conforme esperado) e THb também aumentando (não permanecendo relativamente linear devido ao volume sanguíneo estável). Observar esses desvios das respostas esperadas permite que a intervenção precoce interrompa a medição atual/permite que a pressão de oclusão seja aumentada até que seja evidente que a artéria foi ocluída nas medições subsequentes.

Figura 7: Exemplo de traços de hemoglobina total (THb) e hemoglobina oxigenada (O2Hb). (A) Oclusão arterial bem-sucedida e (B) oclusão arterial malsucedida. #Início da oclusão arterial. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Os autores não têm divulgações ou interesses conflitantes.