A injeção intracameral é uma rotina de administração padrão em oftalmologia. A aplicação da injeção intracameral em roedores para pesquisa é desafiadora devido às dimensões limitantes e anatomia do olho, incluindo o pequeno volume de humor aquoso, a curvatura do cristalino e a espessura do cristalino. Danos potenciais durante injeções intracamerais introduzem efeitos adversos e variabilidade experimental. Este protocolo descreve um procedimento para injeção intracameral em ratos, permitindo precisão e reprodutibilidade.
Ratos Sprague-Dawley foram usados como modelos experimentais. Como a posição do cristalino em ratos se projeta para a câmara anterior, a injeção da periferia, como feito em humanos, é desfavorável. Portanto, uma incisão é criada na região central da córnea usando uma lâmina de estilete de calibre 31 de 0,8 mm para formar um túnel autovedante na câmara anterior. Uma incisão em um ângulo próximo ao plano permite criar um túnel longo, o que minimiza a perda de humor aquoso e o raso da câmara anterior. Uma nanoagulha de calibre 34 é inserida no túnel para injeção. Isso permite a penetração com resistência mínima ao atrito e evita tocar na lente. A injeção de azul de tripano permite visualizar por microscopia de fenda a presença do corante na câmara anterior e excluir vazamentos. A biodisponibilidade para a camada endotelial da córnea é demonstrada pela injeção do corante Hoechst, que corou os núcleos das células endoteliais da córnea após a injeção.
Em conclusão, este protocolo implementa um procedimento para injeção intracameral precisa em ratos. Este procedimento pode ser usado para entrega intracameral de vários medicamentos e compostos em modelos experimentais de ratos, aumentando a eficiência e a reprodutibilidade da pesquisa oftalmológica.