Detecção rápida de patógenos bacterianos que causam infecções do trato respiratório inferior por meio de amplificação isotérmica mediada por loop baseada em chip microfluídico

Resumo

Vários patógenos bacterianos podem causar infecções do trato respiratório e levar a sérios problemas de saúde se não forem detectados com precisão e tratados prontamente. A detecção rápida e precisa desses patógenos por meio de amplificação isotérmica mediada por loop fornece gerenciamento e controle eficazes de infecções do trato respiratório em ambientes clínicos.

Resumo

As infecções do trato respiratório (ITRs) estão entre os problemas mais comuns em ambientes clínicos. A identificação rápida e precisa de patógenos bacterianos fornecerá diretrizes práticas para o gerenciamento e tratamento de ITRs. Este estudo descreve um método para detectar rapidamente patógenos bacterianos que causam infecções do trato respiratório por meio de amplificação isotérmica mediada por loop multicanal (LAMP). O LAMP é uma ferramenta de diagnóstico sensível e específica que detecta rapidamente ácidos nucléicos bacterianos com alta precisão e confiabilidade. O método proposto oferece uma vantagem significativa sobre os métodos tradicionais de cultura bacteriana, que são demorados e muitas vezes requerem maior sensibilidade para detectar baixos níveis de ácidos nucléicos bacterianos. Este artigo apresenta resultados representativos da infecção por K. pneumoniae e suas múltiplas coinfecções usando LAMP para detectar amostras (escarro, lavado brônquico e lavado alveolar) do trato respiratório inferior. Em resumo, o método LAMP multicanal fornece um meio rápido e eficiente de identificar patógenos bacterianos únicos e múltiplos em amostras clínicas, o que pode ajudar a prevenir a disseminação de patógenos bacterianos e auxiliar no tratamento adequado de ITRs.

Introdução

As infecções do trato respiratório (ITRs) causadas por patógenos bacterianos contribuem principalmente para a morbidade e mortalidade em todo o mundo¹. É definida como qualquer sintoma respiratório superior ou inferior acompanhado de febre com duração de 2-3 dias. Embora a infecção respiratória superior seja mais comum do que a infecção respiratória inferior, as infecções crônicas e recorrentes do trato respiratório também são condições clínicas comuns, apresentando grandes riscos aos indivíduos e sobrecarregando significativamente os sistemas de saúde². Os patógenos bacterianos comuns de ITRs incluem Streptococcus pneumoniae³, Haemophilus influenzae⁴, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Stenotrophomonas maltophilia, entre outros. Essas bactérias patogênicas geralmente colonizam as superfícies mucosas da nasofaringe e do trato respiratório superior do hospedeiro, causando sintomas típicos de ITRs, como dor de garganta e bronquite. Causam pneumonia quando se espalham do trato respiratório superior para áreas estéreis do trato respiratório inferior e podem se espalhar de pessoa para pessoa através do trato respiratório⁵. Em casos graves, eles também podem levar a doenças bacterianas invasivas, especialmente pneumonia bacterêmica, meningite e sepse, que são as principais causas de morbidade e mortalidade em pessoas de todas as faixas etárias em todo o mundo.

Os testes tradicionais para ITRs envolvem cultura microbiológica usando swabs de garganta e amostras respiratórias de escarro⁶. Além disso, testes sorológicos, como ensaio imunoenzimático (ELISA), detectam anticorpos ou antígenos no soro, enquanto os testes de aglutinação observam a reação de aglutinação de anticorpos e antígenos para detectar infecção⁷. A cultura microbiana é considerada o padrão-ouro para o diagnóstico de ITRs, mas sua baixa taxa de positividade da cultura, baixa confiabilidade e longo ciclo de detecção limitam a eficiência diagnóstica⁸. Na realidade, o diagnóstico rápido e preciso de ITRs é crucial para a erradicação precisa do patógeno bacteriano. Métodos de detecção rápidos e eficazes podem ajudar a reduzir a taxa de transmissão de patógenos, encurtar a duração da infecção e diminuir o uso desnecessário de antibióticos ^9,10. Métodos baseados em biologia molecular aceleram significativamente a detecção, como a reação em cadeia da polimerase (PCR), que amplifica a sequência de DNA de um gene-alvo para detectar patógenos. No entanto, a PCR tradicional requer equipamentos complexos de ciclagem de temperatura, que são pesados e demorados. Além disso, toda amplificação de DNA usando PCR (exceto PCR em tempo real) termina com a separação eletroforética do produto, o que também leva tempo. A visualização do produto requer corantes, muitos dos quais são mutagênicos ou cancerígenos. Portanto, é imperativo desenvolver continuamente novos métodos e tecnologias para diagnosticar patógenos bacterianos RTI.

A Amplificação Isotérmica Mediada por Loop (LAMP) é uma tecnologia molecular nova e emergente inicialmente desenvolvida por Notomi et al. em 2000¹¹. O LAMP pode amplificar o DNA sob condições isotérmicas estáveis sem equipamentos complexos de ciclagem de temperatura, o que o torna adequado para detecção rápida e reduz a complexidade e o custo do equipamento¹². O LAMP pode detectar baixas concentrações de DNA alvo com alta sensibilidade¹³. Ele usa vários primers específicos para melhorar a seletividade das sequências-alvo e reduzir a possibilidade de falsos positivos¹⁴. O LAMP está sendo gradualmente amplamente utilizado em laboratórios clínicos devido à sua facilidade, velocidade e operação intuitiva, mesmo para detectar RTIs. Neste estudo, investigamos a eficácia do LAMP na detecção de ATRs inferiores em amostras clínicas (escarro, lavado brônquico e lavado alveolar), conforme mostrado na Figura 1. É evidente que o LAMP oferece vantagens como velocidade, sensibilidade e facilidade de uso em relação aos testes tradicionais na detecção de RTI mais baixa, tornando-o uma aplicação promissora.

Figura 1: Ilustração esquemática do método de detecção LAMP. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Protocolo

Todas as amostras para este estudo foram avaliadas e aprovadas pelo Comitê de Revisão de Ética do Hospital Popular da Província de Guangdong (Número de aprovação: KY2023-1114-01). Todos os participantes assinaram o termo de consentimento livre e esclarecido antes dos experimentos. Os reagentes e equipamentos utilizados para o estudo estão listados na Tabela de Materiais. As abreviaturas usadas no protocolo estão listadas na Tabela Suplementar 1.

1. Coleta de amostras clínicas do trato respiratório inferior

1. Coleta de escarro
   1. Limpe a cavidade oral e os dentes com água limpa, garantindo a remoção da prótese, se aplicável. Tossir com força para expelir o escarro respiratório profundo para um recipiente de escarro (mínimo 0,6 mL).
   2. Evite a contaminação com saliva ou secreção nasal. Se a tosse for difícil, administre a inalação de uma solução de NaCl a 100 g/L a 45 °C para facilitar a expectoração. Transfira a amostra para um recipiente estéril e lacrável.
      NOTA: Certifique-se de que as amostras de escarro sejam coletadas pela manhã e antes do uso de qualquer medicamento antibacteriano.
2. Fluido de lavagem brônquica (BLF)
   1. Insira a cabeça coletora na traqueia a partir da narina ou do local da traqueostomia (aproximadamente 30 cm de profundidade). Injete 5 mL de solução salina, estabeleça pressão negativa, gire a cabeça do coletor e retire lentamente.
   2. Recolha o muco extraído e lave o colector uma vez com uma solução de amostragem (soro fisiológico ou água estéril para injecção). Como alternativa, conecte um cateter urinário pediátrico a uma seringa de 50 mL como substituto da coleta.
3. Fluido de lavagem alveolar (IHA)
   1. Identificar a localização da lesão por meio de exames de imagem do tórax. Selecione a área mais significativa ou de progresso rápido para lavagem.
   2. Injetar 1-2 mL de lidocaína a 2% no segmento brônquico através do canal de biópsia durante a lavagem, fornecendo anestesia local para o segmento pulmonar lavado¹⁵. Para pacientes sob anestesia geral intravenosa que ainda apresentam fortes reações nas vias aéreas, injete 1-2 mL de lidocaína a 2%.
   3. Após a anestesia local, insira um broncoscópio de fibra óptica pela boca ou nariz, passando pela faringe para o brônquio do lobo médio direito ou para o segmento lingual do pulmão esquerdo. Coloque sua ponta na abertura do ramo brônquico e introduza lentamente solução salina fisiológica estéril.
   4. Administre 30-50 mL de solução salina por sessão, com volume de 100-250 mL (máx. 300 mL). Colete o muco extraído em um recipiente estéril lacrado.

2. Extração de DNA

1. Com base na viscosidade das amostras do trato respiratório inferior, adicione uma quantidade apropriada de 10% de NaOH. Para amostras com baixa viscosidade, adicione 2-3 vezes o volume da amostra de solução liquefeita. Para amostras com viscosidade moderada, adicione 5-6 vezes o volume da amostra de solução liquefeita. Para amostras com alta viscosidade, adicione 8 a 10 vezes o volume da amostra de solução liquefeita.
   1. Ajuste o volume de NaOH a 10% de acordo com a viscosidade da amostra. Dispersar as amostras o mais uniformemente possível utilizando um misturador de vórtices durante 15 s e incubar a 37 °C durante 30 min para liquefação.
      NOTA: Para amostras mais espessas, aumente o volume de NaOH ou estenda o tempo de liquefação. A qualidade da liquefação das amostras influencia diretamente a eficiência de extração subsequente. Idealmente, as amostras liquefeitas devem exibir uma consistência consistente e não pegajosa.
2. Pipete 1 mL da amostra liquefeita em um tubo de centrífuga de 1,5 mL. Centrifugar a uma velocidade de 15,777 × g durante 5 min a 2-6 °C e, em seguida, utilizar uma pipeta para remover e eliminar o sobrenadante.
   NOTA: Ao aspirar a amostra, evite retirar impurezas do fundo do tubo; Se houver muitas impurezas, a amostra pode ser centrifugada a 1.753-2.739 × g por 1 min antes da aspiração.
3. Adicione 1 mL de solução de lavagem ao tubo da centrífuga e ao vórtice para levantar o precipitado do fundo do tubo. Não há necessidade de dispersá-lo completamente.
   1. Centrifugar a solução a 15,777 × g durante 5 min, rejeitar o sobrenadante e tentar não tocar no precipitado.
      NOTA: Certifique-se de remover completamente a solução de lavagem para evitar afetar a amplificação subsequente.
4. Adicione 100 μL de solução de extração de ácido nucleico ao tubo da centrífuga. Use uma pipeta para aspirar e misture bem o precipitado. Transfira o líquido e precipite juntos para um tubo de extração de ácido nucleico. A composição da solução de extracção de ácidos nucleicos é apresentada no quadro 1.
5. Coloque os tubos de extração de ácido nucleico em um misturador de vórtice e vórtice em velocidade média por pelo menos 5 min. Após o vórtice, transferir os tubos de extracção de ácidos nucleicos para um banho metálico com temperatura constante e aquecer a 100 °C durante 5 min.
6. Centrifugar a 15,777 × g a 2-6 °C durante 5 min e retirar a página.
   NOTA: Se a reação de amplificação por PCR for realizada dentro de 24 h, o ácido nucleico pode ser armazenado a 4 °C. Após a amplificação, armazenar o ácido nucleico a -20 °C. Para armazenamento de longo prazo (além de 24 h), armazene o ácido nucleico a -20 °C. Quando estiver pronto para usar novamente, descongele a amostra naturalmente, vortex para misturar, aqueça em banho-maria a 95 °C por 5 min, centrifugue a 10.956 × g por 1 min e use o sobrenadante para amplificação por PCR.

Solução	Componentes	Número	Especificação
Solução de lavagem	EDTA de 10 mM	1 garrafa	24 mL/frasco
Reagente de extração de ácido nucleico	10mM Tris-HCl, 1mM EDTA, conservantes de ácido nucleico	2 tubos	1,2 mL/frasco
Tubo de extração de ácido nucleico	Contas de vidro	1 saco	24 garrafas/saco

Tabela 1: Composição do reagente de extração de ácido nucleico.

3. Amplificação isotérmica mediada por loop e chip de microfluido

1. Reagente e chip microfluídico
   1. Conduza reações de amplificação isotérmica em um chip microfluídico em forma de disco (consulte a Tabela de Materiais). Efectuar a amplificação a temperatura constante a 65 °C.
   2. Realize a análise de fluorescência em tempo real usando um método de incorporação de corante fluorescente¹⁴ no analisador de ácido nucleico de chip microfluídico de amplificação de temperatura constante. Observe uma curva de amplificação em forma de S para amostras positivas usando uma polimerase com funcionalidade de deslocamento de fita.
2. Amplificação isotérmica mediada por loop
   1. Segmente seis regiões de sequência com quatro primers específicos, incluindo dois primers internos e dois primers externos (fornecidos com o kit LAMP).
      NOTA: O DNA é continuamente replicado e amplificado a uma temperatura constante usando uma DNA polimerase com funcionalidade de deslocamento de fita. O processo de reação envolve o estágio de síntese do modelo em forma de haltere, estágio de amplificação cíclica, alongamento e estágio de reciclagem, formando uma mistura de fragmentos de DNA com estruturas semelhantes a alças e couve-flor. Consulte as instruções do kit para obter informações detalhadas (Arquivo Suplementar 1).
   2. Adicione primers de duas alças ao sistema de reação para aumentar a eficiência da reação, que se liga às estruturas da alça da haste, iniciando a síntese do deslocamento da fita e a replicação cíclica. A composição do kit de detecção de ácidos nucleicos para patógenos do trato respiratório é apresentada na Tabela 2.
      NOTA: O kit de reagentes utiliza o método LAMP. O princípio é baseado no equilíbrio dinâmico do DNA em torno de 65 ° C, onde qualquer primer que se estenda através do emparelhamento de bases no local complementar do DNA de fita dupla faz com que a outra fita se dissocie, formando uma fita simples.
3. Chip microfluídico
   NOTA: Cada chip microfluídico (consulte a Tabela de Materiais) é equipado com 24 poços de reação numerados no sentido anti-horário, com a entrada e saída do poço 1 correspondendo ao poço de reação 1 (Figura 2). Um conjunto específico de primers para amplificação e detecção de uma determinada sequência alvo de ácido nucleico é incorporado e fixado em cada poço de reação.
   1. Misturar o ADN da amostra com o reagente de amplificação. Injete a mistura no chip e distribua-a para cada centrífuga de poço de reação a 1.000 × g por 30 s em temperatura ambiente.
      NOTA: Reações independentes de amplificação isotérmica e detecção de fluorescência em tempo real co-ocorrem em cada poço de reação no chip. Se uma curva de amplificação em forma de S for detectada em um determinado poço de reação, o índice de detecção correspondente para esse poço é positivo.

Componentes	Composição	Número
Cavaco	Primers	12 alojamentos
Filme de vedação	/	1 folha
Reagente de amplificação isotérmica	Corante fluorescente, enzima	270 μL/tubo
Controle Positivo	DNA genômico de Escherichia coli	160 μL/tubo

Tabela 2: Composição do kit de detecção de ácido nucleico para patógenos do trato respiratório.

Figura 2: Diagrama da estrutura do chip do disco. Os poços de reação são numerados sequencialmente no sentido anti-horário, onde a porta de entrada/saída 1 corresponde ao poço de reação número 1. Os alvéolos de reação 1, 4, 7, 10, 13, 16, 19, 22 e 24 são controles negativos. O poço de reação 6 é um controle positivo (E. coli). O poço de reação 12 é um controle positivo interno e o poço de reação 23 é um controle positivo externo. O poço de reação 2 detecta spn. O poço de reação 3 detecta sau. O poço de reação 5 detecta MRSA. O poço de reação 8 detecta kpn. O poço de reação 9 detecta pae. O poço de reação 11 detecta aba. O poço de reação 14 detecta sma. A reação bem 15 detecta hin. Consulte a Tabela 5 para obter detalhes da amostra. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

4. Preparação de amostras e detecção bacteriana

1. Preparar o sistema de reação de amplificação isotérmica
   1. Retire o reagente de amplificação isotérmica do kit e deixe-o descongelar totalmente à temperatura ambiente. Agite suavemente para misturar bem e centrifugue brevemente para coletar no fundo do tubo.
   2. Na área de armazenamento e preparação do reagente, pipetar 20 μL do reagente de amplificação isotérmica para um tubo de centrífuga preparado de 200 μL. Cubra o tubo e mova-o para a área de preparação da amostra com um tubo de centrífuga por amostra.
   3. Na área de preparação da amostra, adicione 34,5 μL da amostra de ácido nucleico alvo. Agite suavemente para misturar bem e centrifugue brevemente para coletar no fundo do tubo. O volume total de cada sistema de reação de amplificação de ácido nucleico é de 54,5 μL (Tabela 3).
2. Procedimento de carregamento de cavacos
   1. Na embalagem do chip, rotule o número da amostra. Abra o chip microfluídico com a etiqueta da embalagem voltada para cima.
   2. Coloque o chip com as portas de entrada e saída voltadas para cima. Usando uma pipeta, retire 50 μL do sistema de reação de amplificação preparado e adicione-o ao canal principal do chip através da porta de entrada. Pare de adicionar quando o canal principal estiver cheio e limpe rapidamente qualquer excesso de líquido ao redor das portas de entrada e saída com um lenço de papel sem fiapos.
   3. Use uma pinça para pegar um filme de vedação e cobri-lo sobre as portas de entrada e saída. Pressione uma ponta de pipeta limpa no filme de vedação em uma direção. Garanta uma vedação hermética.
3. reação de qPCR
   1. Depois que a fonte de luz do analisador de ácido nucleico concluir o pré-aquecimento, clique no botão Abrir bandeja . Coloque o chip com a frente voltada para cima na bandeja, certificando-se de que o pequeno cilindro de localização saia da abertura central do chip para prendê-lo. Alinhe o dispositivo de posicionamento central na bandeja com o grande orifício central no chip.
   2. Clique no botão Fechar bandeja para inserir o chip no analisador de ácido nucleico.
   3. Na área Informações da amostra na interface de detecção, insira as informações para testar a amostra. O número da amostra, o número do chip e o tipo de amostra são obrigatórios; outros são opcionais.
   4. Clique no botão Iniciar detecção na área de operação para iniciar a detecção da amostra. O instrumento realizará testes de amostra de acordo com o programa predefinido.
      NOTA: Após a conclusão da detecção, o software que acompanha o dispositivo conduzirá automaticamente a análise dos dados. Simultaneamente, o analisador de ácido nucleico iniciará um processo de resfriamento automático. Quando a temperatura cai para 37 °C, o instrumento abre automaticamente a bandeja e ejeta o chip para recuperação. Os resultados serão interpretados automaticamente pelo sistema (Tabela 4).
4. Padrões de controle de qualidade
   1. Um controle de qualidade positivo e nove controles de qualidade negativos estão incluídos em cada chip neste kit de reagentes. Certifique-se de que os resultados da detecção para o controle de qualidade positivo sejam positivos e, simultaneamente, os resultados para todos os nove controles de qualidade negativos sejam negativos.
      NOTA: Os resultados são exibidos no lado direito da imagem informando "Resultados do controle de qualidade: Experimento normal (normal positivo, normal negativo)", indicando que os resultados do teste são válidos. O novo teste é necessário se algum resultado estiver incorreto e o resultado do teste de amostra for considerado inválido. Um controle interno positivo usando primers específicos para humanos é colocado no chip, cujo resultado é positivo para testes clínicos de amostras e é negativo se a amostra tiver um baixo conteúdo de DNA genômico humano, indicando uma contagem de células mais baixa. Recolha e teste novamente as amostras nesses casos.
5. Análise de resultados
   1. Após a conclusão da detecção, utilize o método máximo da segunda derivada combinado com algoritmos protegidos comercialmente no software para calcular o primeiro ponto de inflexão da curva de amplificação em forma de S durante a fase de amplificação rápida. Os detalhes são descritos na parte "Princípios do Teste" das Instruções do Kit de Detecção de Ácido Nucleico de Patógenos Respiratórios (Arquivo Suplementar 1).
      NOTA: O valor TP é a diferença de tempo entre o ponto de inflexão e a origem. O resultado é interpretado com base nos valores de TP e julgamento positivo. Se o valor de TP para um índice de detecção for menor ou igual ao valor de julgamento positivo para esse índice, ele será interpretado como positivo. Se o valor do TP exceder o valor de julgamento positivo, ele é interpretado como negativo, de acordo com os critérios de "valor de decisão positivo" nas instruções. A "Área da curva de fluorescência" exibe a curva normalizada e a área "Resultado da detecção" mostra o controle de qualidade e os resultados da detecção para cada parâmetro (Tabela 5).

Reagente	Volume (μl)
Reagente de amplificação isotérmica	20
DNA do modelo	34.5

Tabela 3: Sistema de reação de amplificação isotérmica.

Passo	Um	Dois
Temperatura (°C)	37	65
Tempo (min)	3	47

Tabela 4: Programa de reação de amplificação de ácido nucleico.

Nome do indicador	Valor de controle positivo
Streptococcus pneumoniae (sp)	30
Staphylococcus aureus (sau)	34
Staphylococcus aureus resistente à meticilina (mrsa)	22
Klebsiella pneumoniae (kpn)	29
Pseudomonas aeruginosa (pae)	36
Acinetobacter baumannii (aba)	36
Stenotrophomonas maltophilia (sma)	27
Haemophilus influenzae (hin)	36

Tabela 5: Valor de controle positivo para indicador de infecção.

Resultados

Este experimento emprega tecnologia de amplificação isotérmica, conduzindo reações em um chip de disco microfluídico. A reação ocorre em um analisador de ácido nucleico de chip microfluídico, empregando um método de inserção de corante de fluorescência. A reação isotérmica é realizada a uma temperatura constante de 65 °C e a análise de fluorescência em tempo real é realizada simultaneamente. As amostras positivas sofrem amplificação sob a ação da polimerase com funcionalidade de deslocamento da cadeia, resultando em uma curva de amplificação em forma de S. Este processo de uma etapa completa a amplificação e detecção do gene alvo. Este estudo selecionou 7 amostras com diferentes resultados experimentais para demonstrar a confiabilidade do desenho experimental. A letra maiúscula S representa uma amostra. S1 é uma amostra infectada com uma única cepa de K. pneumoniae. S2 a S7 são amostras com infecções polimicrobianas, todas infectadas com K. pneumoniae. Para resultados de detecção eficazes, a interpretação pode ser feita através das curvas de fluorescência normalizadas exibidas nas imagens. Um indicador positivo é representado por uma curva de amplificação exibindo uma forma de S, enquanto uma linha horizontal representa um indicador negativo (Figura 3).

Figura 3: Resultados representativos de amplificação de ácidos nucleicos via LAMP. A letra maiúscula S significa amostra. S1 é uma amostra infectada com uma única cepa de kpn. S2 a S7 são amostras com infecções polimicrobianas, todas infectadas com kpn. S2 representa uma amostra infectada com kpn e sma. S3 denota uma amostra infectada simultaneamente com kpn, sau e MRSA. S4 significa uma amostra infectada simultaneamente com kpn, sau, MRSA e aba. S5 indica uma amostra infectada simultaneamente com kpn, sma, sau, MRSA e aba. S6 denota uma amostra infectada simultaneamente com kpn, sma, pae, sau, MRSA e aba. S7 representa uma amostra infectada simultaneamente com kpn, sma, pae, sau, MRSA, aba e E. coli. Consulte a Tabela 5 para obter detalhes da amostra. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Este kit de reagentes utiliza o método ROC para calcular valores de limite positivos para oito indicadores de teste. Quando o valor TP de um indicador de detecção é menor ou igual ao seu valor limite positivo correspondente, ele é interpretado como positivo. Por outro lado, quando o valor TP de um indicador de detecção é maior que seu valor limite positivo, ele é interpretado como negativo. Os limiares positivos para cada indicador são detalhados na Tabela 5. Os valores de TP verdadeiros positivos que detectamos para as 7 amostras com diferentes resultados experimentais são mostrados na Tabela 6.

AMOSTRA	KPN	Sma	pae	Sau	mrsa	Hin	Aba	eco
	TP (+/-)	TP (+/-)	TP (+/-)	TP (+/-)	TP (+/-)	TP (+/-)	TP (+/-)	TP (+/-)
S1	19.68 (+)	U (-)	U (-)	U (-)	U (-)	U (-)	U (-)	U (-)
S2	17.73 (+)	18.30 (+)	U (-)	U (-)	U (-)	U (-)	U (-)	U (-)
S3	16.73 (+)	U (-)	U (-)	18.05 (+)	12.18 (+)	U (-)	U (-)	U (-)
S4	21.66 (+)	U (-)	U (-)	27.07 (+)	19.61 (+)	U (-)	18.29 (+)	U (-)
S5	16.16 (+)	20.85 (+)	U (-)	23.80 (+)	17.13 (+)	U (-)	15.22 (+)	U (-)
S6	11.20 (+)	16.79(+)	17.18(+)	23.09 (+)	16.14 (+)	U (-)	14.28 (+)	U (-)
S7	14.69 (+)	24.84(+)	19.70(+)	24.07(+)	14.16 (+)	- (+)	15.23 (+)	20.12 (+)
Cada Amostra+/-, resultado qualitativo; +, resultado positivo; -, resultado negativo.

Tabela 6: Tabela de valores de TP para detecção após infecção.

Tabela Suplementar 1: Lista de abreviaturas. Clique aqui para baixar este arquivo.

Arquivo Suplementar 1: Instruções do kit de detecção de ácido nucleico de patógenos respiratórios. Clique aqui para baixar este arquivo.

Discussão

As infecções do trato respiratório são infecções hospitalares prevalentes, impondo graves consequências aos pacientes e aumentando as taxas de mortalidade¹⁶. A identificação oportuna e precisa de patógenos potenciais seguidos de antibióticos eficazes é a chave para o sucesso do tratamento e a melhoria do prognóstico, principalmente devido às limitações inerentes aos métodos tradicionais^{de cultura 17}. Neste estudo, usamos um método baseado em LAMP para determinar infecções únicas ou múltiplas para detecção rápida e precisa de ITRs. Este sistema de detecção rápida é estabelecido combinando a tecnologia LAMP com a tecnologia microfluídica. O ácido nucléico de amostras clínicas, como escarro, BLF e ALF, pode ser extraído rapidamente. Esse material extraído facilita a detecção rápida e precisa de patógenos bacterianos, orientando as práticas clínicas para melhorar o controle e o tratamento das ITRs.

Estudos anteriores mostraram que, em comparação com métodos baseados em cultura e reação em cadeia da polimerase, os resultados do LAMP alcançaram 100% de sensibilidade, especificidade e nenhuma reação cruzada com outras bactérias em culturas puras e amostras de sangue¹⁸. Os ensaios LAMP também podem detectar patógenos diretamente de fluidos biológicos, como sangue, líquido pleural e peritoneal e líquido cefalorraquidiano¹⁹. Foi demonstrado anteriormente que o DNA exógeno e os inibidores podem reduzir significativamente a sensibilidade da PCR e, para ensaios LAMP, a purificação do DNA de amostras clínicas não é necessária²⁰. Esta técnica utiliza genes de levedura e primers durante o processo de amplificação para avaliar a normalidade da amplificação, determinando assim a qualificação do controle de qualidade de controle externo. Controles internos, empregando primers de genes humanos, determinam a normalidade dos processos de amostragem, extração de ácido nucleico e amplificação. A utilização simultânea de controles internos e externos garante a confiabilidade dos resultados. Ao mesmo tempo, vários poços de controle positivo e negativo também são configurados, o que garante muito a precisão do teste. O chip microfluídico LAMP tem recursos semelhantes ao qPCR na detecção de amostras clínicas. Possui as características de alta sensibilidade e forte capacidade de detecção, fornecendo uma base confiável para detecção clínica rápida e tratamento preciso²¹. A cultura microbiana leva de 3 a 5 dias ou até mais, e alguns patógenos, como Chlamydia pneumoniae e Legionella pneumophila, não podem ser cultivados. Em contraste, o LAMP detecta vários patógenos bacterianos, mesmo os não cultiváveis, em menos de 3 h, aumentando significativamente a velocidade de detecção.

Ele também pode realizar várias detecções. O chip microfluídico LAMP é dividido em várias unidades de reação que detectam múltiplos patógenos em paralelo, garantindo a independência de cada reação e a precisão dos resultados^22,23. Os dados do Centro de Vigilância Antibacteriana da Rede da China mostraram que a prevalência de K. pneumoniae ficou em primeiro lugar entre os isolados bacterianos de amostras respiratórias em 2022¹⁵. Entre as amostras respiratórias coletadas pelo Hospital Popular da Província de Guangdong em 2022, a taxa positiva de K. pneumoniae testada pelo LAMP foi de 18,6%, que também é uma das bactérias com maior prevalência. Em todas as amostras positivas para K. pneumoniae, 30,6% foram infecções causadas exclusivamente por K. pneumoniae e 29,7% foram infecções em que K. pneumoniae coexistiu com outras espécies bacterianas. Além disso, houve infecções triplas (23,9%) e quadruplicadas (10,5%) envolvendo infecção por K. pneumoniae, constituindo a maioria nas amostras KP-positivas, aproximadamente 95%. Houve muito poucos casos de infecções quíntuplas e sêxtuplas e, até agora, infecções além do sêxtuplo não foram detectadas. Os resultados demonstram seis cenários representativos, cada um representando os resultados da detecção de infecções causadas por K. pneumoniae isoladamente ou coexistindo com 1-5 outras espécies bacterianas.

Além disso, a tecnologia de chip LAMP usada neste estudo também pode detectar resistência bacteriana. Ele detecta MRSA resistente à meticilina por meio do gene mecA . Quando os poços que representam Staphylococcus aureus e os poços para o gene mecA são positivos, eles representam uma infecção por meticilina-MRSA. Os pesquisadores estão continuamente explorando métodos para detectar simultaneamente patógenos e traços de resistência a antibióticos. Por exemplo, um método de diagnóstico rápido para infecção por Helicobacter pylori e resistência a antibióticos é baseado na reação em cadeia da polimerase quantitativa (qPCR)²⁴. Outra abordagem envolve a previsão rápida de K. pneumoniae multirresistente por meio da análise de aprendizado profundo dos espectros de espalhamento Raman aprimorado por superfície (SERS)²⁵ e um método para detectar os genes K. pneumoniae e carbapenemase usando espectros SERS²⁶. Além disso, existe um método de classificação e previsão para diferentes perfis de tipagem de sequência multilocus (MLST) de cepas de K. pneumoniae com base na análise de espectros SERS²⁷. Posteriormente, também desenvolveremos a detecção sensível e precisa dos genes K. pneumoniae e carbapenemase, com desempenho comparável aos métodos clínicos padrão-ouro que consomem tempo ou são baseados em instrumentos especializados caros. Além disso, a abordagem diagnóstica ideal é rápida, precisa, econômica e fácil de usar¹⁸. Um estudo estimando o custo dos reagentes para as tecnologias de diagnóstico atuais mostrou que o teste de amostra baseado na tecnologia de PCR custa até US$ 6,4-7,7, em comparação com apenas US$ 0,71-2 para a tecnologia LAMP²⁸.

O método de amplificação isotérmica mediada por loop multicanal (LAMP), embora ofereça vantagens significativas para a detecção rápida de patógenos bacterianos em infecções do trato respiratório, tem suas limitações. A alta sensibilidade do LAMP representa um risco de contaminação cruzada, onde a contaminação mínima do DNA pode levar a resultados falso-positivos²⁹; assim, protocolos rigorosos de manuseio de amostras e procedimentos são necessários para mitigar esse risco. Apesar da simplicidade do método, a interpretação dos resultados requer conhecimentos e experiência específicos para evitar interpretações errôneas ou erros diagnósticos, enfatizando a necessidade de pessoal bem treinado. Reconhecer essas limitações é essencial para a aplicação efetiva e o desenvolvimento do método LAMP no campo do diagnóstico clínico. Em conjunto, o método LAMP combinado com um chip microfluídico pode detectar rapidamente vários patógenos bacterianos em paralelo. Tem as vantagens de alta sensibilidade e forte especificidade e as características de baixo custo, rapidez e conveniência. Ele mostra considerável significado prático para prevenir e controlar RTIs causadas por infecções patogênicas em ambientes clínicos. A característica significativa do teste LAMP proposto neste estudo é que é fácil para a equipe do laboratório dominar, o que é de grande ajuda para hospitais primários, prevenção de doenças, centros de controle e departamentos de inspeção e quarentena. Em resumo, o sistema de chip microfluídico LAMP é uma poderosa ferramenta de detecção em laboratórios clínicos, que pode resolver os desafios de alto gasto e baixo tempo de resposta no diagnóstico clínico de infecções e tem valores de aplicação significativos em ambientes clínicos.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
Incubadora de banho (MK2000-2)	ALLSHENG		Fornecer um ambiente de temperatura constante
Cabeça coletora de fluido de lavagem brônquica	TIANPINGHUACHANG	SEDA 20172081375	Coletando fluido de lavagem broncoalveolar
Broncoscópio de fibra óptica	OLYMPUS	SEDA 20153062703	Um broncoscópio flexível equipado com uma fonte de luz de fibra óptica e câmera, para examinar visualmente as vias aéreas e estruturas dentro dos pulmões. Auxiliar na coleta da lavagem broncoalveolar
HR1500-B2	Haier	SEDA 20183541642	Gabinete de biossegurança
NAOH	MACKLIN	S817977	Liquefazer amostra viscosa do trato respiratório inferior
Kit de detecção de ácido nucleico para patógenos do trato respiratório	Capitalbio Technology	SEDA 20173401346	Teste de infecção
Reagente de extração de ácido nucleico	Capitalbio Technology	SEDA 20160034	For DNA extração
RTisochip-W	Capitalbio Technology	SEDA 20193220539	Amplificação isotérmica mediada por loop
THERMO ST16R	Thermo Fisher Scientific	SEDA 20180585	Centrifugue o líquido residual da parede do tubo.
Misturador de vórtice VM-5005	JOANLAB		Para mistura de reagente