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Artigo de método

Modificando os níveis de ácido fólico ou colina na dieta materna para estudar o impacto das deficiências nos resultados de saúde da prole

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DOI:

10.3791/66827

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28 de junho de 2024

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Neste artigo

Resumo

Este protocolo descreve o método para reduzir a ingestão dietética de ácido fólico ou colina em camundongos fêmeas antes da gravidez com o objetivo de investigar o impacto da dieta materna nos resultados de saúde da prole.

Resumo

A nutrição materna durante a gravidez e lactação desempenha um papel importante no neurodesenvolvimento da prole. O metabolismo de um carbono (1C), que gira em torno do ácido fólico e da colina, bem como de outras vitaminas do complexo B, desempenha um papel fundamental durante o fechamento do tubo neural do feto em desenvolvimento. No entanto, o impacto dessas deficiências nutricionais maternas durante a gravidez nos resultados de saúde da prole após o nascimento permanece relativamente indefinido. Além disso, as deficiências dietéticas maternas em ácido fólico ou colina podem afetar outros resultados de saúde na prole - tornando este um modelo valioso. Este protocolo tem como objetivo delinear o procedimento para induzir uma deficiência no metabolismo de 1C em camundongos fêmeas por meio de modificações na dieta. As fêmeas são colocadas em dietas no desmame, até 2 meses de idade, por 4-6 semanas antes do acasalamento e permanecem na dieta durante a gravidez e lactação. Os descendentes dessas fêmeas podem ser avaliados quanto a resultados de saúde. As fêmeas podem ser usadas várias vezes para gerar descendentes, e os tecidos das fêmeas podem ser coletados para medir as medições de metabólitos 1C. Este protocolo fornece uma visão geral de como induzir deficiências dietéticas maternas em ácido fólico ou colina para estudar os resultados de saúde da prole.

Introdução

A nutrição materna durante a gravidez e lactação desempenha um papel vital no desenvolvimento da prole. O metabolismo de um carbono (1C) é uma rede metabólica chave que integra sinais nutricionais com biossíntese, homeostase redox e epigenética. O ácido fólico e a colina são componentes centrais do 1C que desempenham um papel importante no fechamento do tubo neural. É amplamente recomendado para as mulheres suplementarem com ácido fólico e colina durante a idade fértil1. Embora o papel crítico do ácido fólico no desenvolvimento fetal esteja claramente estabelecido, os mecanismos subjacentes envolvidos permanecem obscuros. Recomenda-se que as mulheres em idade fértil tomem ácido fólico antes de engravidar, pois o fechamento do tubo neural ocorre no primeiro trimestre2. Mães grávidas com deficiência de ácido fólico ou outros componentes do 1C, como a colina, têm maior incidência de partos com defeitos do tubo neural devido à alta demanda de síntese de nucleotídeos e outros processos exigidos pelo início do período gestacional3.

O impacto a longo prazo de dietas maternas deficientes na ingestão do metabolismo 1C nos resultados de saúde da prole é pouco compreendido. Pesquisas de nossos laboratórios, bem como de outros, demonstraram que dietas maternas deficientes em ácido fólico ou colina realmente afetam os resultados de saúde da prole após AVC isquêmico usando modelos pré-clínicos 4,5,6. O impacto da dieta materna também foi demonstrado em estudos clínicos em que foram descritos volumes cerebrais menores e níveis alterados de metilação7. A teoria das Origens do Desenvolvimento da Saúde e da Doença (DOHaD) sugere que as doenças crônicas prospectivas são programadas no útero 8,9, e a dieta materna desempenha um papel importante.

Este protocolo foi desenvolvido para delinear o método para alterar o consumo dietético de 1C em camundongos fêmeas antes da gravidez, com o objetivo de examinar os efeitos da nutrição materna nos resultados de saúde da prole.

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Protocolo

Este protocolo foi aprovado e todos os animais foram utilizados de acordo com as diretrizes do Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Universidade do Meio-Oeste (Protocolo 2983). Camundongos C57BL / 6J fêmeas, 2 meses de idade (peso corporal, ~ 20 g), foram usados neste estudo. Em geral, camundongos fêmeas em idade reprodutiva podem ser usados10. Para garantir que os efeitos da ninhada sejam evitados, várias fêmeas precisam ser usadas para cada dieta11. Os detalhes dos reagentes e do equipamento utilizado no estudo estão listados na Tabela de Materiais.

1. Preparação experimental

  1. Obtenha ácido fólico ou dieta deficiente em colina de fabricantes comerciais de alimentos para roedores. Consulte a Tabela 1 para obter a lista detalhada de micro e macronutrientes, incluindo a quantidade exata de ácido fólico ou colina necessária em dietas deficientes.
    NOTA: Uma dieta de controle correspondente também precisa ser solicitada; os detalhes estão listados na Tabela 1. Essas dietas foram baseadas em AIN93G e continham os nutrientes recomendados para roedores10.
  2. Em colaboração com o fabricante, determine a coloração das dietas, pois isso pode ajudar na distribuição de dietas corretas durante os estudos experimentais. Este estudo usou verde para dietas deficientes em ácido fólico, amarelo para colina e branco para dieta controle. Todos eles são facilmente distinguíveis.
    NOTA: Não há restrições ao consumo de água. A água não contém ácido fólico, colina ou outros metabólitos 1C.

2. Induzir deficiência dietética de ácido fólico ou colina

  1. Antes de colocar as fêmeas em dietas, pesar todos os animais. Isso será chamado de peso da linha de base.
  2. Dependendo da configuração individual da gaiola de laboratório (ventilada ou não, consulte a Tabela de Materiais), substitua ou complete os pellets de dieta especial para cada gaiola algumas vezes por semana. Não encha demais os hoopers de alimentos da gaiola com dietas especiais, pois isso pode levar à deterioração dos pellets quando eles interagem com a saliva dos animais e à deterioração com o tempo.
    NOTA: Certifique-se de que o estoque de dieta seja armazenado de acordo com as diretrizes do fabricante e usado antes da data de validade.
  3. Mantenha os camundongos fêmeas nas dietas por 4-6 semanas antes do acasalamento.
  4. Introduza os camundongos machos nas gaiolas das fêmeas para o acasalamento. Certifique-se de que os machos sejam introduzidos em gaiolas femininas depois que as fêmeas estiverem em dietas especiais por um período mínimo de 4-6 semanas. Introduza um macho em uma gaiola fêmea por um a vários dias.
    NOTA: No presente estudo, os machos foram mantidos com as fêmeas durante toda a duração do experimento (~ 4 meses) para aumentar o número de filhotes produzidos, uma vez que o acasalamento em camundongos pode ocorrer após o nascimento12. Mulheres após 6 meses de idade não foram utilizadas em nenhum estudo.
  5. Verifique as fêmeas diariamente em busca de um tampão copulatório, o que indica que ocorreu reprodução.
  6. Colete as medidas de peso das ratas todas as semanas para acompanhar sua saúde e estado de gravidez.
    NOTA: É seguro para as fêmeas serem mantidas na dieta para gravidez (~ 21 dias) e lactação (~ 21 dias).
  7. Quando os filhotes forem desmamados da mãe (~ 21 dias após o nascimento), coloque-os em uma dieta deficiente em ácido fólico e colina, bem como em uma dieta controle. Para obter detalhes, consulte a seção de resultados.
    NOTA: Ao estudar o impacto da dieta materna nos resultados de saúde da prole, recomenda-se que a prole seja colocada em uma dieta controle após o desmame. A dieta controle deve conter quantidades adequadas de vitaminas e nutrientes para a sobrevivência.
  8. Ao final do estudo (determinando os pesos semanais para monitorar a saúde geral das fêmeas mantidas em dietas com ácido fólico ou deficientes em colina), eutanasiar as mães usando uma overdose de CO2 (dosagem, deslocamento de volume de 10% a 30% por minuto, seguindo protocolos aprovados institucionalmente) e coletar os tecidos (etapa 3) para confirmar as deficiências alimentares.

3. Coleta de tecido para as medições de 1C e os metabólitos relacionados

NOTA: Ao sacrificar animais, é importante certificar-se de que os animais não respondam a um beliscão no dedo do pé. Uma vez que os animais não respondem, a dissecção dos tecidos pode começar. O tecido que será dissecado precisa ser determinado previamente13,14, e os materiais precisam ser preparados. Esses materiais incluem tubos para armazenamento, ferramentas de dissecação apropriadas e gelo seco ou nitrogênio líquido.

  1. Coletar sangue e tecidos hepáticos seguindo protocolos previamente publicados 15,16.
    1. Colete ~ 500-1000 μL de sangue usando uma punção cardíaca seguindo as etapas abaixo. Para detalhes, consulte Parasuraman et al.17:
      1. Faça um corte em forma de V na pele e na parede abdominal. Mova os órgãos abdominais para o lado e insira uma agulha através do diafragma e no coração para coletar a amostra de sangue.
      2. Coloque as amostras de sangue em tubos revestidos com EDTA. O tubo pode ser deixado à temperatura ambiente até que todas as amostras tenham sido coletadas.
    2. Centrifugar as amostras de sangue numa centrifugadora a 1000-2000 x g durante 7 min a 4 °C para isolar o plasma sanguíneo. Colete o plasma em um tubo de microcentrífuga de 1,5 mL e armazene-o a -80 ° C até a análise.
    3. Para remover o fígado, abra o abdome e disseque todo o fígado seguindo o protocolo publicado anteriormente15.
      1. Depois de remover o fígado da cavidade corporal, corte o tecido em pedaços menores com uma pequena tesoura e congele-os com gelo seco ou nitrogênio líquido.
        NOTA: Os pedaços de tecido congelados podem ser colocados em um tubo de microcentrífuga criogênica de 1,5 mL e mantidos a -80 ° C até a análise.

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Resultados

O foco deste estudo foi investigar o impacto das deficiências alimentares maternas no ácido fólico ou colina nos resultados de saúde da prole. Os pesos semanais foram determinados para monitorar a saúde geral das fêmeas mantidas em dietas com ácido fólico ou deficiência de colina. Em nosso trabalho anterior, não foram observadas alterações no peso corporal entre os grupos dietéticos maternos4. A Figura 1 mostra os pesos basais e semanais para as fêmeas mantidas em die...

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Discussão

Durante a implementação deste protocolo em laboratórios de pesquisa, existem várias notas importantes que os pesquisadores precisam considerar antes de iniciar os experimentos. Em primeiro lugar, na fabricação de dietas, é necessário tempo suficiente para fabricar a dieta antes do início do estudo experimental. Os prazos de entrega podem variar de empresa para empresa, e o envio de dieta também precisa ser levado em consideração. Camundongos fêmeas que estão em idade reprodutiva (~ 2-2,5 meses de idade) podem ser colocad...

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tubos de 1,5 mLEppendorf
C57BL/6 Camundongos FêmeasCharles River27Os camundongos também podem ser criados em casa.
Dieta Deficiente em ColinaEnvigoTD.06119
Dieta de ControleEnvigoTD.190790
Tubos
Dieta Deficiente em Ácido FólicoEnvigoTD.01546
GraphPad prismahttps://www.graphpad.com/features
Habitação para roedoresProdutos de Laboratório, LLCUm GaiolaRacks ventilados e Cromatografia líquida em gaiolas-espectrometria
de massa em tandem (LC-MS/MS)Sciex, Framingham, MA5500 QTrap
Cromatografia líquida de ultra-eficiência (UPLC)Shimadzu, Columbia, MD, EUANexera
EDTA

Referências

  1. Van Gool, J. D., Hirche, H., Lax, H., De Schaepdrijver, L. Folic acid and primary prevention of neural tube defects: A review. Reprod Toxicol. 80, 73-84 (2018).
  2. Ali, S. A., Economides, D. L. Folic acid supplementation. Curr Opin Obstet Gynecol. 12 (6), 507-512 (2000).
  3. Osterhues, A., Ali, N. S., Michels, K. B. The role of folic acid fortification in neural tube defects: a review. Crit Rev Food Sci Nutr. 53 (11), 575966(2013).
  4. Hurley, L. Maternal dietary deficiencies in folic acid and choline result in larger damage volume, reduced neuro-degeneration and -inflammation and changes in choline metabolites after ischemic stroke in middle-aged offspring. Nutrients. 15 (7), 1556(2023).
  5. Clementson, M. Maternal dietary deficiencies in folic acid or choline worsen stroke outcomes in adult male and female mouse offspring. Neural Regen Res. 18 (11), 2443-2448 (2023).
  6. Pull, K., et al. Impact of maternal dietary folic acid or choline dietary deficiencies on vascular function in young and middle-aged female mouse offspring after ischemic stroke. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 325 (6), H1354-H1359 (2023).
  7. Virdi, S., Jadavji, N. M. The impact of maternal folates on brain development and function after birth. Metabolites. 12 (9), 8766(2022).
  8. Barker, D. J. P. Fetal nutrition and cardiovascular disease in later life. Br Med Bull. 53 (1), 96-108 (1997).
  9. Barker, D. J. P. Maternal nutrition, fetal nutrition, and disease in later life. Nutrition. 13 (9), 807-813 (1997).
  10. Jackson, S. J. Does age matter? The impact of rodent age on study outcomes. Lab Anim. 51 (2), 160-169 (2017).
  11. Jiménez, J. A., Zylka, M. J. Controlling litter effects to enhance rigor and reproducibility with rodent models of neurodevelopmental disorders. J Neurodev Disords. 13 (1), 2(2021).
  12. Breeding and Reproduction of Mice - All Other Pets. Merck Veterinary Manual. , Available from: https://www.merckvetmanual.com/all-other-pets/mice/breeding-and-reproduction-of-mice 159-185 (2024).
  13. Jena, S., Chawla, S. The anatomy of the laboratory mouse. Essentials of Laboratory Animal Science: Principles and Practices. , 159-185 (2021).
  14. The anatomy of the laboratory mouse. , Available from: https://www.informatics.jax.org/cookbook/imageindex.shtml (2024).
  15. Mortimer, T., Welz, P. S., Benitah, S. A., Sassone-Corsi, P., Koronowski, K. B. Collecting mouse livers for transcriptome analysis of daily rhythms. STAR Protoc. 2 (2), 100539(2021).
  16. Aboghazleh, R. Rodent brain extraction and dissection: A comprehensive approach. MethodsX. 12, 102516(2024).
  17. Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. Blood sample collection in small laboratory animals. J Parmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).
  18. Jadavji, N. M., Deng, L., Malysheva, O. V., Caudill, M. A., Rozen, R. MTHFR deficiency or reduced intake of folate or choline in pregnant mice results in impaired short-term memory and increased apoptosis in the hippocampus of wild-type offspring. Neuroscience. 300, 1-9 (2015).
  19. Pickell, L., et al. High intake of folic acid disrupts embryonic development in mice. Birth defects research. Birth Defects Res A Clin Mol Teratol. 91 (1), 8-19 (2011).
  20. Mikael, L. G., Deng, L., Paul, L., Selhub, J., Rozen, R. Moderately high intake of folic acid has a negative impact on mouse embryonic development. Birth Defects Res A Clin Mol Teratol. 97 (1), 47-52 (2013).
  21. Mikael, L. G., Pancer, J., Wu, Q., Rozen, R. Disturbed one-carbon metabolism causing adverse reproductive outcomes in mice is associated with altered expression of apolipoprotein ai and inflammatory mediators. J Nutr. 142 (3), 411-418 (2012).

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