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Artigo de método

Colocação periorbital de uma sonda Doppler a laser para monitoramento do fluxo sanguíneo cerebral antes da oclusão da artéria cerebral média em modelos de roedores

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DOI:

10.3791/66839

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22 de novembro de 2024

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Neste artigo

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Resumo

Um procedimento cirúrgico minimamente invasivo é mostrado aqui, que envolve a colocação da sonda Doppler a laser no crânio sobre a região distal da artéria cerebral média (ACM), um local periorbital adequado para ratos e camundongos, para avaliar o fluxo sanguíneo durante a oclusão transitória da ACM.

Resumo

A oclusão da artéria cerebral média (MCAO) é o método padrão-ouro para modelagem pré-clínica de AVC isquêmico em roedores. No entanto, a oclusão bem-sucedida não é garantida nem mesmo pelas mãos cirúrgicas mais habilidosas. Os erros ocorrem principalmente quando o filamento não é colocado na profundidade correta e incluem casos de ausência de infarto ou perfuração do vaso, o que pode causar a morte. A fluxometria Doppler a laser (LDF) é uma técnica confiável que fornece feedback em tempo real sobre o fluxo sanguíneo cerebral regional (CBF) durante o procedimento MCAO. Aqui demonstramos uma técnica rápida para colocação periorbital de uma sonda Doppler a laser para medição de CBF em camundongos e ratos. Nossa justificativa era simplificar a implementação do LDF, incentivando o uso generalizado para melhorar a confiabilidade cirúrgica. A técnica elimina a necessidade de afinamento do crânio e equipamentos especializados, com colocação na região periorbital em vez de colocação dorsal, promovendo eficiência e facilidade de adoção. O protocolo descrito aqui engloba preparações pré-cirúrgicas, colocação de sonda Doppler periorbital e cuidados pós-operatórios. Os resultados representativos incluem representações visuais de elementos processuais, juntamente com traçados representativos de LDF ilustrando cirurgias MCAO bem-sucedidas, com casos de colocação malsucedida de filamentos levando a complicações. O protocolo ilustra o LDF na confirmação da colocação adequada do filamento e oferece um procedimento simplificado em comparação com métodos alternativos.

Introdução

O método de oclusão da artéria cerebral média (MCAO) tem sido amplamente utilizado em roedores desde que foi introduzido na comunidade científica para aplicação em ratos em 19861 com a adaptação de Longa descrita em 19902 e adaptações para camundongos logo após3. Embora não descrito na publicação de Longa, o uso do sinal de fluxometria com Doppler a laser (LDF) para confirmar a colocação do filamento foi logo descrito na literatura4. O emprego de LDF durante o procedimento MCAO é destaque na literatura, mas é designado como uma etapa opcional nos atuais Procedimentos Operatórios Padrão (SOPs) das Redes de Avaliação Pré-clínica de AVC (SPAN)5.

O uso de LDF confirma a colocação correta do filamento durante o procedimento MCAO e, portanto, contribui para o rigor do desenho do estudo e resultados subsequentes, particularmente em experimentos projetados para explorar a eficácia do medicamento. O uso de LDF reduz os erros cirúrgicos decorrentes da colocação incorreta do filamento, o que resulta na situação dicotômica de nenhuma lesão quando o filamento não é colocado longe o suficiente ou mortes de animais devido à perfuração do vaso que ocorre quando o filamento é inserido muito longe. Por outro lado, o uso de LDF não está associado à variabilidade do tamanho do infarto comumente observada após o procedimento MCAO6. O uso de LDF no procedimento MCAO pode ser percebido como difícil e oneroso, particularmente em ratos, porque o crânio é mais espesso do que em camundongos e pode exigir afinamento do crânio antes da colocação de LDF 7,8. Além disso, a colocação da sonda dorsal é frequentemente descrita com alguns protocolos que requerem equipamento especializado ou preparação 7,8,9. Com qualquer uma dessas barreiras, a implementação do LDF para confirmar a colocação do filamento pode não ocorrer.

Neste protocolo, descrevemos a colocação da sonda laser Doppler no crânio e sobre a região distal da artéria cerebral média - uma colocação periorbital - para a avaliação do fluxo sanguíneo durante o procedimento MCAO em camundongos e ratos. Nosso raciocínio foi desenvolver um procedimento que tenha múltiplas vantagens sobre alguns métodos relatados na literatura 7,8,9,10, pois é minimamente invasivo, rápido e não requer afinamento craniano ou equipamento especializado além da sonda Doppler a laser.

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Protocolo

Camundongos e ratos adultos foram usados para ilustrar este protocolo (25 g, C57BL / 6J, Jackson Laboratories; 250 g, Sprague Dawley, Envigo). O manejo dos animais e os procedimentos experimentais foram realizados com aprovação e em conformidade com o Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Universidade do Arizona, leis nacionais e de acordo com os princípios de cuidados com animais de laboratório11. Ratos e camundongos foram alojados em um horário claro/escuro de 12 h (7h-19h) com comida e água disponíveis ad libitum.

1. Preparação pré-cirúrgica

NOTA: Normalmente, a cirurgia MCAO em um roedor é realizada como uma cirurgia de sobrevivência, necessitando do uso de uma técnica cirúrgica asséptica ou apenas de pontas, conforme descrito em um protocolo IACUC específico da instituição. Nesse caso, o cirurgião usa uma técnica somente de dicas com instrumentos e suprimentos esterilizados.

  1. Desinfete a superfície de trabalho cirúrgico com desinfetante comercial e prepare pacotes cirúrgicos estéreis de instrumentos, cortinas, gaze, cotonetes, suturas e lâminas de bisturi em autoclavagem. Manter condições estéreis durante a cirurgia de sobrevivência de acordo com as técnicas aprovadas pela IACUC, como cobrir botões de microscópio e cortinas com filme plástico de qualidade alimentar.
  2. Use um esterilizador de esferas secas germinador para reesterilizar os instrumentos cirúrgicos entre os procedimentos se várias cirurgias de roedores forem realizadas durante uma sessão.
  3. Coloque o rato ou camundongo em uma câmara de indução e induza a anestesia com 3%-5% de isoflurano (1 L/min usando uma mistura combinada de 80% de ar e 20% de oxigênio).
  4. Mova o animal da câmara para a bancada e o nariz para anestesia (camundongo: 0,5 L / min 80% / 20% de mistura de oxigênio / ar; rato: 1,5 L / min 80% / 20% de mistura de oxigênio / ar). Aplique pomada oftálmica em ambos os olhos e raspe cuidadosamente o espaço entre a orelha e a órbita ocular na lateral da cirurgia MCAO (geralmente a direita), para não cortar a pele com um aparador. No rato, quando raspado, a covinha do bigode será visível aproximadamente a meio caminho entre a órbita ocular e a orelha. Continue a raspar as regiões conforme necessário para o procedimento MCAO9 (não no escopo deste artigo).
  5. Volte o animal para a câmara conforme necessário ou coloque-o num nariz na mesa cirúrgica preparada, aquecido a 37 °C. Insira um termômetro retal. O animal deve ser mantido a aproximadamente 36 °C ± 1 °C durante todo o procedimento e de acordo com o protocolo IACUC aprovado.
  6. Aplique betadine em um cotonete e desinfete a pele, espiralando para fora do centro da região cirúrgica. Limpe com uma almofada de preparação de álcool. Repita as duas etapas para um total de três ciclos. Confirme a anestesia adequada e avalie a cada 15 minutos durante o procedimento usando o refluxo de pinça do dedo do pé.

2. Colocação da sonda Doppler periorbital

  1. Com uma tesoura pequena, faça um corte vertical (camundongo: ~ 0,5 cm; rato: ~ 0,7 cm) entre o canto do olho e a dobra da orelha, conforme mostrado na Figura 2A (camundongo) e na Figura 3A (rato) para expor o super fácio e o músculo subjacente.
    NOTA: Trate a dor no pré-operatório de acordo com a aprovação do protocolo IACUC.
  2. Usando uma pinça afiada e uma tesoura curva, corte cuidadosamente a camada muscular até que o crânio seja alcançado. O crânio será plano e difícil de tocar com a ponta da pinça. Esta é a janela na qual a sonda Doppler a laser ficará, conforme visualizado na Figura 2B.
  3. Use uma ferramenta de cautério com fórceps para coagular o sangue emergente, alargar a janela e garantir a rota para o crânio.
  4. Assim que a janela estiver aberta, seque com cotonetes para remover o excesso de sangue conforme necessário.
    Coloque o camundongo ou rato em decúbito dorsal.
  5. Use uma pinça para retrair qualquer pele ou tecido e coloque a sonda Doppler na janela periorbital de modo que ela encoste no crânio perpendicularmente sem pele ou músculo presente para impedir o sinal do laser. Esta região está sobre a ACM distal, conforme ilustrado na Figura 1A,B. Prenda a colocação da sonda com fita adesiva de laboratório. Neste protocolo, é descrito o uso de uma sonda reta.
    NOTA: Reconhecemos que os protocolos de cirurgia variam entre os laboratórios. Na literatura (quando relatada), alguns trituram o crânio e outros não9. Pode ser porque o crânio é mais fino na região periorbital, mas isso é apenas especulação. Em nossa experiência, a colocação direta sem trituração pode ser alcançada em camundongos e ratos e é demonstrada neste protocolo.
  6. Monitore as leituras relativas do fluxo sanguíneo no monitor com o software apropriado (Figura 2D, Figura 3C,D). As leituras do LDF variam. No entanto, a faixa ideal para detecção de quedas de fluxo sanguíneo é de >200 unidades de perfusão (UP).
  7. Prossiga para a cirurgia MCAO9 (não no escopo deste artigo). Durante a cirurgia MCAO, teste a colocação da sonda amarrando brevemente a artéria carótida comum, o que deve causar uma queda repentina no fluxo sanguíneo (~ 50%).

3. Remoção da sonda Doppler e cuidados pós-operatórios

  1. Na conclusão do MCAO ou sempre que as leituras do fluxo sanguíneo forem concluídas, remova a sonda Doppler a laser da janela cirúrgica. A sonda Doppler normalmente permanece no lugar durante a cirurgia MCAO do camundongo porque os tempos de isquemia geralmente são inferiores a 90 min. Por outro lado, no procedimento MCAO de rato, a sonda Doppler pode ser removida após a colocação do filamento e durante a isquemia (normalmente > 90 min) e, em seguida, colocada novamente na janela periorbital para confirmar a reperfusão, repetindo as etapas 2.6 e 2.7.
    NOTA: Um rastreamento contínuo LDF típico do MCAO do camundongo pode ser observado na Figura 4A. Os traçados típicos de LDF de um procedimento MCAO de rato são ilustrados na Figura 4B.
  2. Injete anestésico local aprovado pela IACUC por via subcutânea ao longo do local da incisão prospectiva.
  3. Feche a pele com 1-2 suturas usando um nó cirúrgico padrão com fio de sutura absorvível ou cola cirúrgica, de acordo com o protocolo IACUC aprovado. Trate a dor pós-cirúrgica de acordo com a aprovação do protocolo IACUC (por exemplo, bupivacaína HCL 0,5% e lidocaína 2%, uma vez intra-incisão para camundongos e ratos). Os animais não devem ser deixados sozinhos até que sejam capazes de manter a decúbito esternal, e nenhum animal é devolvido à companhia de outros animais até que estejam totalmente recuperados.

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Resultados

A colocação da sonda Doppler a laser na região da ACM é representada visualmente na Figura 1, oferecendo um pictograma da vasculatura e servindo como um guia visual das perspectivas sagital e dorsal. A Figura 2 resume as etapas críticas para a colocação e os resultados da sonda Doppler a laser no mouse. A Figura 2A apresenta uma imagem de um camundongo anestesiado e preparado com uma marcação tracejada no local da incisão vertical n...

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Discussão

O MCAO é o procedimento padrão-ouro para modelar a oclusão e reperfusão da artéria cerebral em roedores e tem sido a pedra angular da pesquisa pré-clínica de AVC, permitindo a indução de isquemia focal em roedores para mimetizar a fisiopatologia do AVC humano. É um procedimento cirúrgico exigente com significativa variabilidade inter e até intra-cirurgião. Embora não haja evidências de que a aplicação do LDF reduza a variabilidade, ela pode melhorar o rigor científico e os resultados do ...

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Esta pesquisa foi financiada pelo NINDS 1R41NS124450. Biorender: KT26JWLYF6

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Materiais

tesoura
Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
de mola curvapinça Castroviejo1501710
#5Ferramentas de ciências finas11250-20
pinça #5/45Ferramentas de ciências finas1151-35
Forcepts Ferramenta de cauterizaçãoConmedM18019-01
Fita de laboratórioFita de rotulagem Fisherbrand15-950
Monitor Doppler a laserMoore Instruments Software MOORVMS-LDF
LDFPerisoft para Windows ou moorSOFTNA
Mouse clippersPhilips NorelcoMG7910
Periflux System 4000, sonda 407Equipamento Perimednão está mais disponível
filme plásticoGladpress n seal
Cortador de ratososterA5 ou similar
Pequena anestesia de roedoresJD Medicalencomenda
pequena tesouraexcelta362 Sissors ou
similar sistema de monitoramento de temperatura com sondaPhysitempTCAT-2AC Controller

Referências

  1. Koizumi, J., Yoshida, Y., Nakazawa, T., Ooneda, G. Experimental studies of ischemic brain edema. I. A new experimental model of cerebral embolism in rats in which recirculation can be introduced in the ischemic area. Japanese J Stroke. 20 (1), 84-91 (1986).
  2. Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 20 (1), 84(1989).
  3. Hata, R., et al. A reproducible model of middle cerebral artery occlusion in mice: hemodynamic, biochemical, and magnetic resonance imaging. J Cereb Blood Flow Metab. 18 (4), 367-375 (1998).
  4. Dirnagl, U., Kaplan, B., Jacewicz, M., Pulsinelli, W. Continuous measurement of cerebral cortical blood flow by laser-Doppler flowmetry in a rat stroke model. J Cereb Blood Flow Metab. 9 (5), 589-596 (1989).
  5. Lyden, P. D., et al. The stroke preclinical assessment network: Rationale, design, feasibility, and stage 1 results. Stroke. 53 (5), 1802-1812 (2022).
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Reimpressões e permissões

Errata


Formal Correction: Erratum: Periorbital Placement of a Laser Doppler Probe for Cerebral Blood Flow Monitoring Prior to Middle Cerebral Artery Occlusion in Rodent Models
Posted by JoVE Editors on 3/18/2025. Citeable Link.

This corrects the article 10.3791/66839

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