Artigo de método

Aplicação de código de barras de DNA para identificar plantas medicinais

2.7K vistas

⸱

DOI:

10.3791/66925

⸱

1 de novembro de 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1School of Pharmacy, Guizhou University of Traditional Chinese Medicine, 2School of Pharmacy/School of Modern Chinese Medicine Industry, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 3Institute of Herbgenomics, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine

Neste artigo

Resumo

O presente protocolo descreve o uso da tecnologia de código de barras de DNA para autenticar materiais medicinais à base de plantas, e a planta medicinal Angelica sinensis (Oliv.) Diels foi identificado como um exemplo.

Resumo

As plantas medicinais são recursos valiosos em todo o mundo e são usadas em todo o mundo para manter a saúde e tratar doenças; no entanto, a presença de adulteração obstrui seu desenvolvimento. O código de barras de DNA, uma técnica para identificação de espécies por regiões de DNA padrão, facilita a identificação rápida e precisa de plantas medicinais tradicionais. O processo de código de barras de DNA envolve seis etapas básicas: 1) processamento das plantas medicinais, 2) extração de DNA total de alta qualidade das plantas medicinais usando o método da coluna centrífuga, 3) amplificação do espaçador transcrito interno da região do DNA alvo 2 (ITS2) com primers universais de plantas e realização do sequenciamento de Sanger, 4) emenda e alinhamento da sequência para obter a sequência alvo, 5) combinar a sequência do código de barras com a biblioteca de códigos de barras para identificação, 6) alinhar a sequência, comparando a variação intraespecífica e interespecífica, construindo a árvore filogenética de junção de vizinhos. Conforme mostrado nos resultados, o primer universal pode amplificar a região-alvo. A Basic Local Alignment Search Tool (BLAST) demonstra que a porcentagem identificada foi de 100%, e a árvore de junção de vizinhos demonstra que as sequências de splicing foram agrupadas com o clado A. sinensis OR879715.1 e o valor de suporte do clado é 100. Este protocolo fornece uma referência para a aplicação da tecnologia de código de barras de DNA como um método eficaz para identificar plantas medicinais e adulterantes.

Introdução

As plantas medicinais têm uma ampla gama de efeitos farmacológicos e são substâncias importantes para o tratamento e prevenção de doenças. A demanda do mercado por plantas medicinais em medicamentos fitoterápicos e produtos farmacêuticos é enorme e ainda está crescendo. Com o aumento do mercado de plantas medicinais, o problema da adulteração tem dificultado o desenvolvimento de plantas medicinais. Atualmente, a adulteração de plantas medicinais sofre dos seguintes motivos: 1) a morfologia semelhante das plantas medicinais dificulta sua identificação e uso correto 1,2,3,4,5, 2) a crescente demanda por plantas medicinais tem levado a uma oferta insuficiente no mercado 6,7, 3) as plantas medicinais são caras e têm preços flutuantes, e o uso de ervas baratas em vez de materiais economicamente valiosos levou à adulteração e ao lucro do mercado 8,9. Para resolver os problemas de identificação e uso adequados de plantas medicinais, há necessidade de uma tecnologia que permita que não especialistas identifiquem a fonte10.

Existem limitações para identificar e usar adequadamente as plantas medicinais apenas pela aparência e odor11. Para identificação e controle de qualidade mais precisos, são empregados métodos físico-químicos12. A cromatografia em camada delgada (TLC), por exemplo, é um método rápido para identificar ervas medicinais e está incluída na Farmacopeia Chinesa. No entanto, requer padrões de referência para identificar as plantas13. A cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC) pode realizar testes qualitativos e quantitativos, tornando-a adequada para testes de qualidade de medicamentos. No entanto, esse instrumento é caro e requer conhecimento especializado para operar14,15. A tecnologia de código de barras de DNA é uma tecnologia de identificação de espécies rápida e precisa que identifica espécies usando sequências de DNA estáveis para diferenciar plantas com morfologia semelhante. Hebert et al. propuseram a tecnologia de código de barras de DNA para identificar espécies, que usa uma sequência de DNA reconhecida e relativamente curta dentro do genoma16, Chen et al. propuseram ITS2 como uma sequência universal para a identificação molecular de plantas medicinais e identificaram mais de 6600 plantas e encontraram uma alta capacidade de identificação17. O estudo de plantas medicinais com base em fragmentos de genes de ITS2 e cloroplastos demonstrou a capacidade de distinguir espécies em nível de espécie, com aplicações nas áreas de proteção de recursos, regulação de mercado e comércio internacional 17,18,19. A aplicação do código de barras de DNA pode superar as limitações dos métodos tradicionais de identificação, o que é útil para garantir a qualidade e segurança das plantas medicinais, evitando abuso de recursos e confusão20. Tem se mostrado benéfico para o estudo de plantas medicinais, apoiando o crescimento da indústria fitoterápica de maneira sustentável e fornecendo uma garantia de que o consumidor usa o medicamento correto 21,22,23,24.

O artigo descreve protocolos de como aplicar o código de barras de DNA para identificar plantas medicinais usando A. sinensis como exemplo. O código de barras de DNA utiliza um ou mais marcadores genéticos curtos padronizados no DNA de um organismo para reconhecê-lo como pertencente a uma espécie específica. Os métodos atuais para identificar plantas medicinais têm certas limitações. A identificação morfológica tradicional depende muito da vasta experiência dos especialistas, que pode ser influenciada por fatores humanos, enquanto a identificação química é propensa a problemas como a adulteração de compostos-chave. Em contraste, o código de barras de DNA fornece um meio mais preciso de identificação de espécies, oferecendo vantagens como velocidade, alta reprodutibilidade e estabilidade. Além disso, essa tecnologia permite o gerenciamento centralizado e o compartilhamento de dados de sequência de espécies existentes por meio da internet e plataformas de informação, melhorando significativamente a eficiência e a confiabilidade da identificação de espécies11,12. Devido à sua morfologia e partes medicinais semelhantes, A. sinensis é frequentemente confundido com outras espécies e é frequentemente mal utilizado ou intencionalmente substituído no mercado25. Yang et al. identificaram A. anomala usando código de barras de DNA para distingui-lo de drogas falsas26. Yuan et al. coletaram 23 espécies de Angélica e usaram código de barras de DNA para diferenciar entre as várias espécies27. Seguindo os procedimentos descritos neste protocolo, os usuários poderão autenticar materiais medicinais à base de plantas desde o pré-processamento até a correspondência da sequência de código de barras com o banco de dados de código de barras (Figura 1).

Protocolo

1. Preparação da amostra

  1. O presente estudo utilizou A. sinensis , de dois anos de idade, com baixa temperatura e longa luz do sol, a uma altitude de 2800 m do condado de Min, província de Gansu, como materiais experimentais. Foram selecionadas três plantas, das quais mais de três raízes foram selecionadas para experimentação. Enxágue as raízes primeiro com água esterilizada e depois limpe-as com um pulverizador de álcool ou cotonetes com álcool para evitar contaminação que possa afetar a precisão dos resultados experimentais. Corte as raízes em pedaços menores que 5 mm usando um bisturi esterilizado e misture para análise posterior. (Figura 2).
    NOTA: Como alternativa, coloque as raízes em nitrogênio líquido para ficarem crocantes, tornando-as mais fáceis de quebrar. Dependendo da forma, dureza e outras características das plantas medicinais, use instrumentos para lidar com elas.
  2. Preparar três tubos de amostras experimentais para experiências paralelas. Rotule cada amostra como AS-1, AS-2 e AS-3. Pegue cerca de 100 mg de tecido fresco ou 20 mg de tecido seco (seco ao ar) e coloque-o em um tubo de centrífuga de 2 mL.
  3. Coloque dois grânulos de aço inoxidável de 5 mm nos tubos de centrífuga de 2 mL. Transfira os tubos para um triturador de papel tissue de alto rendimento operando a 60 Hz por 60 s.

2 Extração de DNA da amostra

NOTA: Este estudo utiliza um Kit de Extração de DNA Genômico de Plantas, que é baseado no método CTAB. A extração de DNA é realizada seguindo o manual de instruções com algumas modificações, incluindo a adição de um tampão de isolamento nuclear (NIB) exclusivo. O protocolo melhora a pureza do DNA separando primeiro os contaminantes do tecido e, em seguida, adicionando uma etapa inicial de isolamento de núcleos 28,29,30.

  1. Adicione 800 μL de NIB pré-resfriado e coloque a amostra em um misturador de vórtice, vibrando por 5 min.
  2. Coloque em uma centrífuga e processe a 13.780 x g por 10 min. Remova o sobrenadante.
  3. Repita as etapas 2.1-2.2 por mais 3 rodadas.
    NOTA: O NIB extrai DNA de alta qualidade e sua preparação contém alguns produtos químicos perigosos que devem ser manuseados em uma hotte, dificultando o manuseio pelos novatos. No entanto, esta etapa não é obrigatória. Os usuários podem optar por seguir esta recomendação ou pular essas etapas. Sua formulação detalhada está na Tabela 1.
  4. Adicione 600 μL de tampão P1 e 5 μL de RNase A (10 mg / mL). Coloque a amostra em um misturador de vórtice e vórtice para misturar. Incubar as amostras em banho-maria a 65 °C por 1,5 h, invertendo os tubos 2x-3x durante a incubação.
  5. Adicione 200 μL de tampão P2, misture bem, coloque no gelo por 15 min e centrifugue a 13.780 x g por 10 min.
  6. Aspirar cuidadosamente o sobrenadante para uma coluna de filtro AF, centrifugar a 13.780 x g durante 2 min e transferir o filtrado inferior recolhido no tubo de recolha para um novo tubo de centrifugação de 1,5 ml.
  7. Calcule o volume do filtrado, adicione 1,5x o volume de P3 e agite imediatamente para obter uma solução misturada.
  8. Adicione 650 μL da mistura preparada a uma coluna de adsorção adsorvente (AC) e incube por 5 min, depois centrifugue a 13.780 x g por 30-60 s.
  9. Adicionar novamente o filtrado obtido no passo 2.8 à CA, centrifugar e eliminar o líquido residual. Repita o procedimento com a solução misturada restante da etapa 2.7.
  10. Adicione 600 μL de solução de enxágue WB, centrifugue a 13.780 x g por 30 s, descarte a solução residual e repita o procedimento 1x.
  11. Colocar a coluna AC de volta no tubo de recolha vazio, centrifugar a 13.780 x g durante 2 min e deixar à temperatura ambiente para remover o etanol residual.
  12. Pegue a coluna adsorvente AC e coloque-a em um tubo de centrífuga limpo de 1,5 mL. Adicione 45 μL de água deionizada esterilizada (ddH2O) ao meio da membrana adsorvente, que foi aquecida a 65 °C. Deixe em temperatura ambiente por 5 min. Centrifugue a 13.780 x g por 2 min.
  13. Adicione a solução resultante de volta à coluna e centrifugue a 13.780 x g por 2 min à temperatura ambiente.
  14. Recolha a solução filtrada. Use um espectrofotômetro para determinar a concentração de DNA; OD260 representa a absorbância de ácidos nucléicos. Use os seguintes critérios para o padrão de determinação da qualidade do DNA: OD260 / OD280 = 1,80-2,00, a faixa normal; OD260/OD280>2.00; há uma grande quantidade de contaminação por RNA; OD260 / OD280 < 1,80, existem proteínas, fenóis e outros contaminantes.

3 Amplificação e detecção de fragmentos de alvo

NOTA: Selecione os primers de amplificação apropriados com base nas regiões de código de barras de DNA propostas pela planta; as condições de reação são mostradas na Tabela 2.

  1. Configure as condições de reação correspondentes à amplificação do primer. Use tubos de centrífuga de 0,2 mL cheios de 9,5 μL de ddH2O, 12,5 μL de 2x PCR Master Mix e 1 μL de primer direto, primer reverso e DNA molde para um volume total de 25 μL. Prepare um controle negativo, substituindo o molde por água.
  2. Adicione 20 mL de tampão 1x Tris Acetato-EDTA (TEA) e 0,2 g de agarose para aquecer e prepare um gel de agarose a 1%, em seguida, adicione 2 μL de corante de gel de ácido nucleico (10.000x) e misture bem. Despeje a mistura em uma bandeja de fundição de gel e deixe solidificar para obter o gel de agarose. Adicione 3 μL do produto de PCR e 2 μL de marcador de DNA 5000 pb ao gel.
  3. Defina a tensão em 120 V, a corrente em 400 mA e eletroforese por 40 min. Use um sistema versátil de análise de imagem de gel para visualizar géis e verificar os resultados.

4. Coleta e análise dos dados

NOTA: Existe uma ampla gama de software de montagem e análise de sequências; usamos o código Codon Aligner V11.0.1 e MEGA11 como exemplos para ilustração.

  1. Use o alinhador para abrir o arquivo de sequenciamento para observar o mapa de pico e unir os arquivos de mapa de pico de sequenciamento bidirecional.
    1. Selecione Criar um novo projeto e clique em OK para ir para a página inicial do software. Selecione Adicionar Amostras no menu Arquivo, selecione o Arquivo a ser processado como formato de rastreamento de sequência e importe-o diretamente para o software como o arquivo importado em Amostras Desmontadas.
    2. Escolha Contig e, na seção, escolha Montagem avançada e, em seguida, escolha Montar em grupos. Os usuários iniciantes, depois de selecionar Montar em grupos, verão esta caixa de diálogo: Escolha Definir nomes. Modifique as partes Definir nome de amostra de acordo com o nome do arquivo e clique em Montar. A sequência alinhada será exibida.
    3. Recupere as sequências ITS2 completas de acordo com a análise de modelo baseada no modelo oculto de Markov (HMM). Use as sequências 5.8s (CGAGGGCACGCCTGCCTGCCTGGGCGTCA) e 28s (CGACCCCAGGTCAGGCGGGGCCACC)31 para pesquisar a sequência alinhada desde o início para remover as regiões 5.8s e 28s.
    4. Selecione Ir e, na seção, selecione Sequência de Pesquisa e clique em OK para obter a sequência correspondente. Escolha Contig, escolha Excluir na seção para remover as regiões 5.8s e 28s e as sequências de baixa qualidade e, em seguida, o software produzirá as sequências de emenda para correspondência.
  2. Use as sequências de splicing obtidas das três etapas experimentais paralelas para identificação, selecione a pesquisa BLAST usando o banco de dados de nucleotídeos no National Center for Biotechnology Information (NCBI) e selecione a Ferramenta de Identificação de Espécies e o Specific Primer ITS2 correspondente no banco de dados do Banco de Dados do Genoma da Farmacopeia Global (GPGD).
    NOTA: O NCBI32 e o GPGD33 incluem as sequências de nucleotídeos de plantas e animais medicinais e são reconhecidos como bancos de dados confiáveis. Seus principais métodos de identificação são os métodos baseados na comparação de sequências34 (BLAST). A identidade percentual dos resultados de identidade é usada para determinar se a espécie com maior semelhança é o gênero alvo.
  3. Use MEGA11 para alinhamento de sequência, analise e compare a variação de sequência intraespecífica e interespecífica e construa uma árvore filogenética de junção de vizinhos.
    1. Faça o download das sequências de três espécies de Angélica e uma espécie de Peucedanum praeruptorum como um grupo externo do NCBI. Analise essas sequências juntamente com a sequência de resultados obtida.
    2. Clique em Arquivo, escolha Abrir um arquivo/sessão para importar o arquivo e uma caixa de diálogo será exibida. Escolha Align > DNA e selecione Align by ClustalW para comparação de sequência. Escolha Análise filogenética em dados e retorne à página inicial. Clique em Construir/Testar árvore de junção de vizinhos em FILOGENIA. O software gera uma árvore filogenética.

Resultados

Qualidade do DNA da amostra

A faixa de taxas de absorbância OD260 / OD280 foi de 1,80-1,84. A quantidade de DNA medida por espectrofotômetro para cada amostra foi superior a 100 ng/μL (Tabela 3), indicando uma boa qualidade da extração do DNA da amostra. Isso indica que as amostras não foram contaminadas por proteínas, RNA ou reagentes durante o processo de extração e que eram de boa qualidade e adequadas para amplificação por PCR a jusante.

Análise de PCR

A eletroforese em gel foi realizada no produto da PCR das três amostras experimentais paralelas. A configuração foi: Marker, amostras 1-3 (AS-1, AS-2, AS-3) e controle negativo (0), conforme mostrado na Figura 3. Os tamanhos de AS-1, AS-2 e AS-3 estão todos entre 500 pb com bandas simples, brilhantes e claras, e não há bandas no 0, indicando que o DNA extraído foi amplificado para 500 pb usando primers ITS2.

Comparação do banco de dados dos resultados do sequenciamento

Os resultados do sequenciamento identificaram A. sinensis com 100% de similaridade de sequência, combinando os resultados de identificação BLAST do banco de dados NCBI, que é o mesmo que os resultados de identificação de espécies do banco de dados GPGD (Tabela 4). O resultado do BLAST foi determinado usando a maior pontuação percentual de identidade e o menor valor e. A identificação de espécies foi considerada bem-sucedida quando a maior porcentagem máxima de identidade incluiu uma única espécie e pontuou >99%. Se uma pontuação for ≤ 99%, verifique a qualidade do arquivo de sequenciamento ou se o produto de PCR está contaminado.

Análise filogenética baseada em árvores da identificação de espécies

Os resultados mostraram que na árvore filogenética NJ construída, todas as quatro espécies foram agrupadas em clados separados, e o P. praeruptorum como um grupo externo foi separado dos clados Angelica . As sequências de Splicing foram agrupadas com o clado A. sinensis OR879715.1, e o valor de suporte do clado (bootstrap) foi 100, e então as outras duas espécies, A. dahurica e A. cartilaginomarginata foram agrupadas em um clado separado, provando assim que as sequências de Splicing eram A. sinensis (Figura 4).

figure-results-1
Figura 1: Fluxograma de identificação de espécies de plantas medicinais. (A) Planta de processo, extração de DNA e sequenciamento de plantas medicinais, (B) comparação da sequência de espécies usando bancos de dados e (C) empregando árvores filogenéticas para validação taxonômica para confirmar as relações filogenéticas entre as espécies. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

figure-results-2
Figura 2: Fluxo de trabalho de extração de DNA de plantas medicinais. (A) Um total de 6 etapas estão envolvidas na extração de DNA de plantas medicinais. (B) Amplificação do instrumento de PCR e processo de ciclagem de PCR. (C) Eletroforese. (D) Sequenciamento de Sanger e o cromatograma de sequenciamento. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

figure-results-3
Figura 3: Eletroforese em gel de Angelica sinensis (Oliv.) Diels. Usando o marcador de DNA DL5000 como marcador molecular, AS-1, AS-2 e AS-3 são usados como amostras e 0 como grupo controle. A eletroforese em gel foi realizada e os resultados mostraram que as amostras AS-1, AS-2 e AS-3 apresentaram bandas a 500 pb, enquanto o controle não apresentou bandas. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

figure-results-4
Figura 4: Árvore filogenética de junção de vizinhos criada a partir de 13 sequências. Um total de 10 sequências de quatro espécies de plantas foram baixadas do banco de dados do NCBI, e as sequências de Splicing foram comparadas para analisar e comparar a variação de sequência intraespecífica e interespecífica e para construir árvores filogenéticas de junção de vizinhos. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Nome do Material/Equipamentodose
Polivinilpirrolidona10 gramas
Tris-HCl1 M 50 mL
Ácido etilenodiaminotetracético0,5 M 20 mL
NaCl20,45 gramas
β-mercaptoetanol10 mL
Água deionizada esterilizada500 mL

Tabela 1: Reagentes de formulação de tampão de isolamento nuclear.

Código de barrasCartilhaSequência de primer (5'-3')Sequenciamento de amplificação de PCR
SEU 2R:3RGACGCTTCTCCAGACTACAAT94°C5min
94°Canos 3040 ciclos
56°Canos 30
F: 2FATGCGATACTTGGTGTGAAT72°C45 anos
72°C10min

Tabela 2: Primers de código de barras de DNA e condições de reação de PCR.

AmostrasExtração de DNA (ng / μL)OD260/OD280
AS-11241.84
AS-21841.81
AS-31641.82

Tabela 3: Angelica sinensis (Oliv.) Diels extraiu a qualidade do DNA.

AmostrasComprimento alinhado da sequência (bp)Comprimento da sequência de emenda (bp)GC (%)NCBI: Porcentagem de explosão (%)GPGD: Percentagem de identificação das espécies (%)
AS-1500 pb229 pb55.50%100%100%
AS-2504 pb229 pb55.50%100%100%
AS-3499 pb229 pb55.50%100%100%

Tabela 4: Comparação do banco de dados dos resultados do sequenciamento.

Discussão

A tecnologia de identificação molecular é mais fácil de aprender e dominar do que os métodos tradicionais de identificação. Ele supera as limitações da identificação de ervas medicinais tradicionais, pois não é afetado pelo estágio de crescimento da planta e não depende de julgamento subjetivo ou do acúmulo de conhecimento especializado35. Outras espécies são confundidas com A. sinensis devido à sua morfologia e partes medicinais semelhantes, mas com o uso de código de barras de DNA, pode ser definitivamente identificada36.

As principais etapas deste protocolo envolvem várias considerações críticas. Primeiro, evitar a contaminação ao manusear ervas e extrair DNA é essencial para evitar que DNA estranho ou impurezas comprometam os resultados. A limpeza adequada das amostras é necessária para remover contaminantes externos, enquanto a pulverização completa aumenta a extração de DNA, aumentando a área de superfície para interação do reagente. Também é importante usar uma quantidade adequada de amostra para garantir uma mistura eficiente com os reagentes, permitindo uma melhor citólise e liberação de DNA. Por fim, controlar o tempo de banho-maria é crucial, pois o aquecimento excessivo pode levar à degradação do DNA, afetando a qualidade do DNA extraído. Juntas, essas etapas garantem a extração bem-sucedida de DNA de alta qualidade para análise.

As plantas medicinais contêm polissacarídeos e polifenóis que afetam a extração e amplificação do DNA. O uso do tampão de isolamento nuclear reduz o efeito dessas substâncias e permite a lise dos núcleos, resultando em melhor extração de gDNA de alta pureza 28,29,30. Atualmente, existem três métodos primários de extração de DNA: o método da coluna centrífuga, o método CTAB e o método SDS. No entanto, este estudo escolheu o método da coluna centrífuga para os experimentos devido à sua estabilidade, simplicidade, eficiência e capacidade de extrair altas concentrações de DNA37, e o aquecimento do tampão de eluição pode ajudar a eluir o DNA com melhor qualidade. Aqui, este estudo escolheu primers específicos para ITS217 , 38 , a sequência curta de ITS2 serve como uma marca de sequência taxonômica eficiente em comparação com os outros primers39, que possuem alta variação interespecífica e uma gama mais ampla de identificações. A possível razão para a falha de amplificação é a degradação do DNA em algumas amostras; outra possibilidade é que o par de primers universais ITS2 usado pode não funcionar para certas espécies ou usando o conjunto alternativo de primers universais40. O resultado do BLAST foi determinado usando a maior pontuação percentual de identidade e o menor valor e. A identificação da espécie foi considerada bem-sucedida quando a maior porcentagem máxima de identidade incluiu uma única espécie e pontuou >99%40,41, para a pontuação ≤99%, verificar a qualidade do arquivo de sequenciamento ou se o produto da PCR está contaminado.

Em resumo, o código de barras de DNA deve desempenhar um papel fundamental no controle de qualidade da fitoterapia tradicional e no comércio internacional de ervas. Este artigo fornece alguns insights sobre a extração de DNA de plantas e um guia detalhado sobre o uso da tecnologia de código de barras de DNA para identificar plantas medicinais. Ele destaca os principais pontos a serem observados durante o processo experimental. Assim, este artigo fornece referências para a identificação básica de ervas e ajuda mais pessoas a dominar rapidamente a tecnologia. No entanto, em casos especiais em que a eficiência da identificação de código de barras de locus único é insuficiente, depende da biblioteca de referência. A construção de uma biblioteca de referência com alta cobertura de espécies seria um passo importante para a identificação de espécies usando códigos de barras de DNA42, e muitos pesquisadores propuseram que a tecnologia de código de barras multilocus pode melhorar a eficiência43,44. Além disso, com o desenvolvimento da tecnologia molecular, Zheng et al. combinou a tecnologia de código de barras de DNA com a tecnologia de amplificação isotérmica de DNA e detecção RPA-LFD para autenticar rapidamente plantas venenosas45 e alguns kits prontos para uso também foram desenvolvidos46. O banco de dados de código de barras de DNA está em constante aprimoramento, o que desempenha um papel importante na promoção da generalização, padronização e internacionalização dos métodos de identificação da fitoterapia.

Divulgações

Os autores declaram que a pesquisa foi conduzida na ausência de quaisquer relações comerciais ou financeiras que pudessem ser interpretadas como um potencial conflito de interesses.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado por introduz a talentosa pessoa projeto de subsídio de fundos de início de pesquisa científica da Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Chengdu (030040015).

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Kit de extração de DNA genômico de planta rápida CTABShanghai Huiling Biotechnology Co.NG411MAdequado para extração rápida de DNA genômico de alta qualidade de diferentes tecidos de uma ampla gama de plantas
DL5000 DNA MarkerNanjing vazyme Bio-technology Co.MD102-02Produto pronto para uso, tome uma quantidade adequada deste produto diretamente para eletroforese ao executar o gel.
EletroforesePequim Liuyi Biotechnology Co.DYY-6CAdote o design da tela sensível ao toque, pode exibir a tensão definida, definir a corrente ao mesmo tempo, saída paralela
Ácido etilenodiaminotetracéticoBeijingpsaitongBiotechnologyCo., LtdE70015-100GReagentes de formulação de tampão de isolamento nuclear.
Coloração de gel de ácido nucleico Goldview (10.000 vezes;)Yisheng Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd10201ES03Ao usar eletroforese em gel de agarose para detectar DNA, ela se liga ao DNA e produz um forte sinal fluorescente.
Centrífuga de mesa de alta velocidadeChangsha Zona de desenvolvimento industrial de alta tecnologia Xiangyi Centrifuge Instrument Co.H1650Para uma separação rápida e eficiente de amostras, esta centrífuga compacta e leve oferece segurança confiável
Moedor de Tissue de Alto RendimentoShanghai Jingxin Industrial Development Co.Tiss-48Um instrumento de vibração de alta frequência para moer amostras
http://www.gpgenome.com/Instituto de Matéria Médica Chinesa, Academia Chinesa de Ciências Médicas Chinesas-Banco dedados HerbGenomics inclui sequências de genoma, conjuntos de genes, genomas de organelas, dados de genoma de baixa cobertura e sequências de código de barras de DNA.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Biblioteca Nacional de Medicina dos EUA-O Centro Nacional de Informações sobre Biotecnologia promove a ciência e a saúde, fornecendo acesso a informações biomédicas e genômicas.
Kylin-BellHaimen Qilinbel Instrumento Fabricação Co.VORTEX-5Mistura rápida na forma de um vórtice de alta velocidade, velocidade de mistura, uniformidade, rigor
LifeTouchHangzhou BORI Technology Co.TC-96/G/H(b)BAdoção de tecnologia avançada de refrigeração termoelétrica e tecnologia TAS recém-criada para melhorar seu desempenho geral
Sistema de análise de imagem de gel multifuncionalCentro de Operação do Sudoeste de Xangai Tianneng Life Science Co.Tanon-Mini Space 2000Realiza experimentos rápidos de amplificação de genes com uma função de gradiente para mapear condições de amplificação e uma faixa de temperatura de gradiente de até 30 graus; C
NaClPequim Solarbio Science& Tecnologia Co., Ltd.S8210-100Reagentes de formulação de tampão de isolamento nuclear.
Nanodrop OneGenes Ltda.ND ONEQuantifique amostras de DNA, RNA e proteínas em segundos com apenas 1-2 µ L da amostra
de polivinil pirrolidonaShanghai yuanye Bio-Technology Co., LtdS30268-500gReagentes de formulação de tampão de isolamento nuclear.
Fabricante de gelo de floco de neveShanghai Zhixin Experimental Instrument Technology Co.ZX-60XAdotando o método de fabricação de gelo por extrusão rotativa, velocidade rápida de fabricação de gelo e alta eficiência na produção de gelo
Grânulos de aço inoxidável para homogeneizador de tecidosBeyotime Biotechnology. F6623Equipamento para moagem e mistura de tecidos e outras amostras por
vibração Tampão de acetato-EDTA TrisBeyotime Biotech IncST716TAE é um tampão comumente usado para eletroforese de DNA, freqüentemente empregado em eletroforese em gel de agarose.
Tris-HClPequim Solarbio Science& Tecnologia Co., Ltd.T8230Reagentes de formulação de tampão de isolamento nuclear.
Chaleira de banho-mariaShanghai Senxin Experimental Instrument Co.DK-8DTermostato preciso e regulação de temperatura, controle de temperatura preciso
β-mercaptoetanolShanghai Eon Chemical Technology Co.R054186-100ml   Reagentes de formulação de tampão de isolamento nuclear.

Referências

  1. Chen, S. L., et al. Conservation and sustainable use of medicinal plants: Problems, progress, and prospects. Chin Med. 11, 37(2016).
  2. Han, J., et al. An authenticity survey of herbal medicines from markets in China using DNA barcoding. Sci Rep. 6, 18723(2016).
  3. Zhang, W., et al. Integration of high-throughput omics technologies in medicinal plant research: The new era of natural drug discovery. Front Plant Sci. 14, 1073848(2023).
  4. Ji, C., et al. Determination of the authenticity and origin of panax notoginseng: A review. J AOAC Int. 105 (6), 1708-1718 (2022).
  5. Parveen, I., Techen, N., Khan, I. A. Identification of species in the aromatic spice family apiaceae using DNA mini-barcodes. Planta Med. 85 (2), 139-144 (2019).
  6. Techen, N., Parveen, I., Pan, Z., Khan, I. A. DNA barcoding of medicinal plant material for identification. Curr Opin Biotechnol. 25, 103-110 (2014).
  7. Xiong, Y., et al. Market access for Chinese herbal medicinal products in Europe-a ten-year review of relevant products, policies, and challenges. Phytomedicine. 103, 154237(2022).
  8. Virk, J. K., Gupta, V., Kumar, S., Singh, R., Bansal, P. Ashtawarga plants - suffering a triple standardization syndrome. J Tradit Complement Med. 7 (4), 392-399 (2017).
  9. An, Y. L., Wei, W. L., Guo, D. A. Application of analytical technologies in the discrimination and authentication of herbs from fritillaria: A review. Crit Rev Anal Chem. 54 (6), 1775-1796 (2024).
  10. Li, M., Cao, H., But, P. P. H., Shaw, P. C. Identification of herbal medicinal materials using DNA barcodes. J Systemat Evolut. 49 (3), 271-283 (2011).
  11. Khan, A., et al. Herbal spices as food and medicine: Microscopic authentication of commercial herbal spices. Plants (Basel). 13 (8), 1067(2024).
  12. Techen, N., Crockett, S. L., Khan, I. A., Scheffler, B. E. Authentication of medicinal plants using molecular biology techniques to compliment conventional methods. Curr Med Chem. 11 (11), 1391-1401 (2004).
  13. Sasidharan, S., Chen, Y., Saravanan, D., Sundram, K. M., Yoga Latha, L. Extraction, isolation and characterization of bioactive compounds from plants' extracts. Afr J Tradit Complement Altern Med. 8 (1), 1-10 (2011).
  14. Wei, Y., et al. Identification techniques and detection methods of edible fungi species. Food Chem. 374, 131803(2022).
  15. Mehle, N., Trdan, S. Traditional and modern methods for the identification of thrips (thysanoptera) species. J Pest Sci. 85 (2), 179-190 (2012).
  16. Hebert, P. D., Cywinska, A., Ball, S. L., Dewaard, J. R. Biological identifications through DNA barcodes. Proc Biol Sci. 270 (1512), 313-321 (2003).
  17. Chen, S., et al. Validation of the its2 region as a novel DNA barcode for identifying medicinal plant species. PLoS One. 5 (1), e8613(2010).
  18. Li, D. Z., et al. Comparative analysis of a large dataset indicates that internal transcribed spacer (its) should be incorporated into the core barcode for seed plants. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (49), 19641-19646 (2011).
  19. Raskoti, B. B., Ale, R. DNA barcoding of medicinal orchids in asia. Sci Rep. 11 (1), 23651(2021).
  20. Chen, S., et al. DNA barcoding in herbal medicine: Retrospective and prospective. J Pharm Anal. 13 (5), 431-441 (2023).
  21. Pei, Y., et al. Whole-genome sequencing in medicinal plants: Current progress and prospect. Sci China Life Sci. 67 (2), 258-273 (2024).
  22. Zhu, S., Liu, Q., Qiu, S., Dai, J., Gao, X. DNA barcoding: An efficient technology to authenticate plant species of traditional chinese medicine and recent advances. Chin Med. 17 (1), 112(2022).
  23. Pang, X., Shi, L., Song, J., Chen, X., Chen, S. Use of the potential DNA barcode its2 to identify herbal materials. J Nat Med. 67 (3), 571-575 (2013).
  24. Ajmal Ali, M., et al. The changing epitome of species identification - DNA barcoding. Saudi J Biol Sci. 21 (3), 204-231 (2014).
  25. Peng, H., Chen, G., Ou, L. L., Luo, M., Zhang, C. Development of a new efficient scar marker for authentication of Angelica sinensis, an important traditional Chinese medicine. Scienceasia. 47 (6), 751-757 (2021).
  26. He, Y., et al. Authentication of Angelica anomala avé-lall cultivars through DNA barcodes. Mitochondrial DNA. 23 (2), 100-105 (2012).
  27. Yuan, Q. J., et al. Identification of species and materia medica within Angelica l. (umbelliferae) based on phylogeny inferred from DNA barcodes. Mol Ecol Resour. 15 (2), 358-371 (2015).
  28. Xie, P. J., Ke, Y. T., Kuo, L. Y. Modified ctab protocols for high-molecular-weight DNA extractions from ferns. Appl Plant Sci. 11 (3), e11526(2023).
  29. Stefanova, P., Taseva, M., Georgieva, T., Gotcheva, V., Angelov, A. A modified ctab method for DNA extraction from soybean and meat products. Biotech Biotechnol Equipment. 27 (3), 3803-3810 (2013).
  30. Li, Z., Parris, S., Saski, C. A. A simple plant high-molecular-weight DNA extraction method suitable for single-molecule technologies. Plant Meth. 16, 38(2020).
  31. Keller, A., et al. 5.8s-28s rrna interaction and hmm-based its2 annotation. Gene. 430 (1-2), 50-57 (2009).
  32. Morgulis, A., et al. Database indexing for production megablast searches. Bioinformatics. 24 (16), 1757-1764 (2008).
  33. Liao, B., et al. Global pharmacopoeia genome database is an integrated and mineable genomic database for traditional medicines derived from eight international pharmacopoeias. Sci China Life Sci. 65 (4), 809-817 (2022).
  34. Ghahramanlu, A., Rezaei, M., Heidari, P., Balandari, A. Species survey of iranian barberry genotypes using ITS2 sequences and basic local alignment search tools. Erwerbs-Obstbau. 65, 2491-2499 (2023).
  35. Han, K., Wang, M., Zhang, L., Wang, C. Application of molecular methods in the identification of ingredients in Chinese herbal medicines. Molecules. 23 (10), 2728(2018).
  36. Wang, X., Liu, Y., Wang, L., Han, J., Chen, S. A nucleotide signature for the identification of Angelicae sinensis radix (danggui) and its products. Sci Rep. 6, 34940(2016).
  37. Chen, R., et al. DNA based identification of medicinal materials in Chinese patent medicines. Sci Rep. 2, 958(2012).
  38. Hou, D. Y., et al. Molecular identification of corni fructus and its adulterants by ITS/ITS2 sequences. Chin J Nat Med. 11 (2), 121-127 (2013).
  39. Han, J., et al. The short ITS2 sequence serves as an efficient taxonomic sequence tag in comparison with the full-length its. Biomed Res Int. 2013, 741476(2013).
  40. Trujillo-Argueta, S., Del Castillo, R. F., Velasco-Murguía, A. Testing the effectiveness of rbcla DNA-barcoding for species discrimination in tropical montane cloud forest vascular plants (oaxaca, mexico) using blast, genetic distance, and tree-based methods. PeerJ. 10, e13771(2022).
  41. Marizzi, C., et al. DNA barcoding brooklyn (new york): A first assessment of biodiversity in marine park by citizen scientists. PLoS One. 13 (7), e0199015(2018).
  42. Antil, S., et al. DNA barcoding, an effective tool for species identification: A review. Mol Biol Rep. 50 (1), 761-775 (2023).
  43. Pang, X., et al. Utility of the trnh-psba intergenic spacer region and its combinations as plant DNA barcodes: A meta-analysis. PLoS One. 7 (11), e48833(2012).
  44. Tripathi, A. M., et al. The internal transcribed spacer (its) region and trnh-psba [corrected] are suitable candidate loci for DNA barcoding of tropical tree species of India. PLoS One. 8 (2), e57934(2013).
  45. Zheng, X. S., An, W. L., Yao, H., Xu, J., Chen, S. L. Rapid authentication of the poisonous plant Gelsemium elegans by combining filter-paper-based DNA extraction and rpa-lfd detection. Engineering. 7 (1), 14-16 (2021).
  46. Jiang, C., et al. Barcoding melting curve analysis for rapid, sensitive, and discriminating authentication of saffron (Crocus sativus l.) from its adulterants. Biomed Res Int. 2014, 809037(2014).

Reimpressões e permissões

Solicitar permissão para reutilizar o texto ou as figuras deste artigo JoVE

Solicitar permissão

Etiquetas

Identifica o de Plantas MedicinaisIdentifica o de Esp ciesExtra o de DNAAmplifica o de ITS2Sequenciamento de SangerEletroforese em GelBusca BLASTrvore Filogen ticaPrimers Universais

Artigos relacionados