Isolamento de microrganismos do solo usando a tecnologia iChip

Resumo

A técnica iChip faz uso de um dispositivo de isolamento in-situ simples e barato que aumenta as taxas de descoberta de novos microrganismos do solo. Novos microrganismos podem ser usados para estudos adicionais relativos ao microbioma do solo ou descoberta de produtos naturais, entre outras aplicações.

Resumo

A técnica de isolamento iChip usa um dispositivo de isolamento in-situ que aumenta a capacidade de cultivo de microrganismos anteriormente não cultiváveis. Os microrganismos são uma fonte importante de novos produtos químicos e moléculas potencialmente bioativas. No entanto, apenas 1% dos microrganismos ambientais podem ser cultivados usando métodos laboratoriais convencionais. Com o aumento da resistência antimicrobiana, encontrar novos medicamentos para combater infecções e doenças é de suma importância, e um método crítico para encontrar novas moléculas é a descoberta de novos microrganismos. Ao incubar colônias de microrganismos do solo nos poços de uma placa de 96 poços, selados com uma membrana semipermeável e incubados no topo do solo, os micróbios estão em contato com a água e os fatores de crescimento do solo, permitindo o isolamento de novos micróbios em um ambiente de laboratório. Após um período de domesticação em um iChip, os microrganismos podem ser subcultivados em meios convencionais e usados para estudos posteriores. Este dispositivo é valioso para a descoberta de moléculas bioativas e pesquisa do microbioma do solo e já foi usado anteriormente em ambas as aplicações.

Introdução

As bactérias ambientais são uma rica fonte de produtos naturais (NPs)¹. Esses metabólitos não são vitais para a sobrevivência dos microrganismos, mas são produzidos para facilitar sua colonização, superando outros microrganismos em seu entorno². A evolução ajustou as estruturas químicas e as atividades dos NPs, tornando-os agentes antimicrobianos eficazes. Um exemplo é a daptomicina, um antibiótico aprovado pelo FDA em 2003³. Nos últimos anos, a resistência microbiana aumentou em ocorrência e gravidade, e novos medicamentos como a daptomicina são tratamentos de última linha contra infecções que desenvolveram resistência a antibióticos mais antigos⁴. O desenvolvimento de novos antibióticos e outros medicamentos é essencial para manter as infecções e doenças comuns tratáveis.

Embora os NPs muitas vezes sejam bons medicamentos, a indústria farmacêutica voltou-se para métodos sintéticos para a descoberta de medicamentos após a era de ouro dos antibióticos nas décadas de 1950 a 1960⁵. Na década de 1970, os mesmos microrganismos e metabólitos antimicrobianos continuaram a ser reisolados repetidamente, com cada vez menos novos candidatos a medicamentos sendo descobertos ^1,6. O microbioma do solo contém grande diversidade microbiana, mas apenas um pequeno número de microrganismos pode ser isolado em condições convencionais de laboratório. A grande maioria dos microrganismos do solo detectados pela genômica não são observados quando cultivados usando métodos convencionais de cultura, levando a que a questão seja cunhada como "a grande anomalia da contagem de placas"⁷. Esses micróbios não cultiváveis foram chamados de matéria escura microbiana, pois são conhecidos, mas não podem ser estudados in vitro até que possam ser isolados como culturas puras. Esses microrganismos não cultiváveis provavelmente podem produzir uma grande variedade de candidatos a medicamentos, o que é de grande importância na era da resistência microbiana.

A técnica iChip é um método que pode ser usado para aumentar a recuperação de novos microrganismos do ambiente ^8,9. Essa tecnologia ajuda a simular o ambiente natural das bactérias durante a incubação, aumentando assim a capacidade de cultivo de microrganismos que, de outra forma, não sobreviveriam às condições convencionais^{de laboratório 10}. Os iChips modificados já foram desenvolvidos e usados para isolar microrganismos de muitas fontes diferentes, como solo, sedimentos, ambientes marinhos e intestinos de animais 11,12,13,14,15,16. Talvez o caso mais impactante do uso dessa tecnologia tenha sido pela NovoBiotic Pharmaceuticals, onde uma nova bactéria, Eleftheria terrae, foi descoberta¹⁷. Descobriu-se que esse microrganismo produz Teixobactina, um antibiótico de uma nova classe, que inibe várias espécies bacterianas resistentes pertinentes à saúde humana sem detectar o desenvolvimento de resistência ^5,18. Esta foi uma descoberta impactante, pois a teixobactina é a primeira nova classe de antibióticos descoberta em décadas e é um sinal de que essa técnica é uma rota promissora para descobertas de novos medicamentos e superação da grande anomalia da contagem de placas¹⁹. Aqui, é apresentado um iChip modificado com base em uma publicação anterior de Berdy et al., que foi otimizado para facilidade de uso e prevenção de contaminação⁹.

Protocolo

1. Preparação e esterilização de meios

1. Prepare e esterilize o meio de sais mínimos de succinato (SMS), que consiste em 0,1 g de amido de batata, 1 g de casaminoácidos, 0,125 g de digestão de caseína e 15 g de ágar bacteriológico ou técnico em 1 L de água.
2. Esterilize em autoclave o meio e 100 mL de água de grau molecular usando um ciclo líquido de 20 min, 121 °C.
   NOTA: Certifique-se de que todos os outros itens que entrarão em contato com a mistura de células de ágar sejam adquiridos estéreis, incluindo pontas de pipeta e tubos de centrífuga, caso contrário, autoclave-os também.

2. Construção modificada do iChip

1. Remova o fundo dos poços em quatro placas de 96 poços usando uma ferramenta de punção de ágar de 5 mm.
2. Corte as membranas de policarbonato de 0,05 μm em retângulos de 7,6 cm x 11 cm, ou igual às dimensões da parte inferior da placa de 96 poços.
3. Usando um selante de silicone, cole membranas de policarbonato de 0,05 μm no fundo das placas de 96 poços, garantindo que o adesivo vede os poços, mas não cubra totalmente as aberturas dos poços. Deixe secar por pelo menos 24 h ou seguindo as instruções do adesivo.
   NOTA: O selante deve ser à prova d'água, não tóxico e 100% silicone. A maioria dos selantes de aquário funcionará bem.

3. Preparação de suspensões celulares

1. Rotule quatro tubos de centrífuga de 15 mL AD e quatro tubos de centrífuga de 50 mL E-H e adicione 4.5 mL de água estéril a cada um.
2. Meça 1 g de solo em um tubo de centrífuga de 50 mL, adicione 10 mL de água estéril e vortex por 10 min.
3. Deixe a suspensão do solo repousar por 10 min.
4. Pipetar 0,5 ml do sobrenadante contendo células do solo para o tubo A e misturar bem.
5. Adicione 0,5 mL da suspensão celular no tubo A ao tubo B e misture bem. Transfira 0,5 ml da solução B para o tubo C e misture bem. Repita isso para todos os tubos de centrífuga restantes, completando uma série de diluições de 10 vezes nos oito tubos de centrífuga.
6. Remova 0,5 mL do tubo H para ter o mesmo volume em todos os tubos.
   NOTA: Essas concentrações são otimizadas para solos locais. Ao tentar este procedimento pela primeira vez, efectue uma gama maior de diluições para encontrar a concentração de amostra adequada.

4. Inoculação iChip modificada

1. Mergulhe completamente os iChips em etanol a 95% por pelo menos 15 min.
2. Retire as placas do etanol e coloque-as sobre papel toalha estéril. Enquanto permite que o etanol evapore, ligue o esterilizador UV na capela de fluxo laminar por 15 min para esterilizá-los ainda mais.
3. Pipete 360 μL de meio SMS estéril na primeira coluna da placa para atuar como poços de controle.
4. Adicionar 45 ml de SMS arrefecido a 50 °C à suspensão celular no tubo E e misturar bem para combinar a suspensão celular e o ágar.
5. Pipetar 360 μL da mistura de ágar-célula da etapa 4.4 em todos os outros poços da placa de 96 poços.
   NOTA: Uma pipeta multicanal é recomendada, pois o ágar-ágar solidifica rapidamente. Não é aconselhável reaquecer a mistura de células de ágar uma vez misturada devido ao risco de matar os microrganismos.
6. Assim que a mídia estiver definida, sele a parte superior das placas com uma tampa de placa PCR.
7. Repita as etapas 3.3 a 3.6 com tubos FH para preencher um total de quatro iChips com diferenças de dez vezes nas concentrações.
   NOTA: A mídia pode ser colocada no micro-ondas por 30 s com uma tampa solta quando necessário ou mantida em banho-maria a 60 °C entre as placas para garantir que permaneça derretida para cada uma.

5. Incubação

1. Coloque as placas em uma caixa contendo aproximadamente uma polegada do solo usado na etapa 3.2, com a membrana voltada para baixo e coloque a cobertura.
2. Incubar as placas no recipiente coberto, num local escuro a 25 °C.
   NOTA: Após uma semana, examine o conteúdo dos iChips modificados para garantir que não ocorreu contaminação durante a configuração. A contaminação é indicada pelo crescimento excessivo de um ou poucos microrganismos em todos os poços de uma placa.
3. Após 6 semanas, examine os iChips. Use as placas contendo crescimento em menos de 25% dos poços para isolamento de colônias.

6. Isolamento de colônias

1. Enxágue os iChips modificados 3x com água estéril para remover todas as partículas de sujeira.
2. Limpe a parte superior e as laterais da placa com etanol a 95%, evitando o lado com a membrana semipermeável.
3. Usando uma lâmina estéril, corte a tampa da placa ao redor de um poço contendo uma colônia.
4. Usando uma ferramenta de estrias estéreis, perfure a colônia e listre em ágar SMS em placas de 100 x 15 mm usando o método de quatro quadrantes.
5. Repita para todas as outras colônias nos iChips que estão crescendo uma colônia por poço.
   NOTA: Para colônias minúsculas, a placa pode ser colocada de volta no solo e incubada até ficar grande o suficiente para subcultura, desde que a cobertura da placa não tenha sido removida ao redor do poço.
6. Incubar as placas SMS a 25 °C e monitorizar o crescimento.
7. Examine as colônias para garantir que as culturas axênicas tenham sido isoladas.

7. Identificação de microrganismos

1. Sequenciar os genomas dos isolados recuperados²⁰.
2. Avalie os genomas usando JSpeciesWS ou outra plataforma de identificação baseada em genoma para determinar o grau de semelhança de cada isolado com microrganismos conhecidos no GenomesDB.
3. Categorize os isolados abaixo dos limites aceitos pela comunidade para identificação de espécies como supostamente novos.

Resultados

Uma visão geral do protocolo é mostrada na Figura 1. Um experimento iChip modificado bem-sucedido resulta em pelo menos uma placa contendo crescimento em menos de 25% dos poços, sem que ocorra crescimento nos poços de controle. Esse número de poços com crescimento geralmente garante que colônias únicas sejam isoladas em poços. Além disso, o número de colônias, ou o número de poços contendo colônias, deve diminuir dez vezes com cada placa subsequente preparada a partir da série de diluições. Os resultados representativos são mostrados na Figura 2. onde as placas 7 e 8 são iChips bem-sucedidos, pois contêm crescimento em menos de 25% dos poços, e a porcentagem de poços contendo colônias diminui a cada placa, conforme mostrado na Tabela 1. Se todas as placas em um teste contiverem mais de uma colônia por poço ou nenhuma colônia em nenhum poço, isso constitui um resultado negativo.

Figura 1: Visão geral esquemática do uso de um iChip modificado para cultivar micróbios do solo. (A,B) Construção da placa (Etapa 2). (C) Preparação do inóculo (Etapa 3). (D,E) Configuração do iChip (Etapa 4). (F) Incubação do iChip (Etapa 5). (G-I) Transferência dos isolados para meios convencionais (Etapa 6). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Ichip	Concentração de solo em suspensão de ágar	Poços com colônias	Unidades Formadoras de Colônias
E	5,0 x 10-6 g/mL	Todo	Muitos para contar
F	5,0 x 10-7 g/mL	Todo	Muitos para contar
G	5,0 x 10-8 g/mL	22	22
H	5,0 x 10-9 g/mL	6	6

Tabela 1: Dados representativos de um experimento iChip bem-sucedido em que o número de poços contendo colônias diminui a cada diluição em série.

Figura 2: Resultados exemplares de dois iChips modificados com sucesso. Os iChips foram do mesmo experimento em que (A) a placa preparada a partir da mistura célula-ágar G contém 22 colônias e (B) a placa preparada a partir da mistura célula-ágar H contém seis colônias, consistente com a diferença de diluição de 10 vezes entre as misturas. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Pode-se visualizar colônias a olho nu ou microscopia, como mostrado na Figura 3A-G. As colônias podem estar crescendo na superfície do ágar, como visto na Figura 3B ou embutidas no ágar, como a colônia na Figura 3F. Pode haver casos em que existem duas colônias no mesmo poço em um iChip modificado bem-sucedido, como na Figura 3G. Em alguns casos, as colônias estão distantes o suficiente para que possam ser perfuradas com uma agulha separadamente e subcultivadas; no entanto, é improvável que aqueles na Figura 3G possam ser facilmente cultivados como microrganismos axênicos. Exemplos de colônias transferidas do iChip para mídia SMS convencional são mostrados na Figura 4.

Figura 3: Visão microscópica representativa das colônias crescendo em um iChip após 6 semanas de incubação. (AF) Colônias únicas são observadas, que devem ser subcultivadas, e em (G) duas colônias são observadas em estreita proximidade, que são difíceis de obter como culturas axênicas. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 4: Resultado representativo de uma bactéria isolada do iChip modificado uma vez crescendo em uma placa de ágar SMS. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

A capacidade de isolar colônias do iChip modificado em placas de ágar convencionais também determina o sucesso do experimento. Nem todas as colônias que crescem no iChip modificado sobreviverão à transferência para placas convencionais. Em um iChip, as colônias são expostas a fatores de crescimento e nutrientes do solo, aumentando sua capacidade de cultivo. Para alguns microrganismos, um período de domesticação não é suficiente para torná-los cultiváveis em condições convencionais. A taxa de recuperação de colônias de um iChip para placas varia de experimento para experimento, mas algumas devem crescer em placas, pois esse método também cultiva microrganismos facilmente cultiváveis. Por exemplo, os iChips modificados na Figura 2 continham 28 colônias no total, e o número de colônias que cresceram em placas de ágar após a subcultura foi de 16, enquanto 12 não sobreviveram à transferência. Os isolados podem ser identificados e usados para estudos posteriores, uma vez cultivados em placas de ágar de tamanho normal, conforme mostrado na Figura 4.

Um experimento iChip modificado bem-sucedido deve resultar no isolamento de microrganismos que diferem de microrganismos conhecidos no nível da espécie. O grau de similaridade de cada isolado com microrganismos conhecidos é encontrado comparando-se o DNA isolado com os genomas de microrganismos conhecidos. Os escores tetra Z dos microrganismos relacionados mais próximos de cada isolado descrevem a porcentagem de similaridade. A Figura 5 mostra que das doze bactérias isoladas, quatro eram novas espécies ou mais, duas provavelmente eram novas cepas e seis eram microrganismos conhecidos. A recuperação de várias novas espécies ou cepas é consistente com experimentos iChip publicados anteriormente, indicando que esta construção modificada do iChip não impede o aumento na recuperação de novas espécies¹¹.

Figura 5: O nível de classificação taxonômica dos isolados recuperados de um experimento iChip. A similaridade percentual foi determinada com base nos escores tetra Z, que descrevem a semelhança dos isolados com bactérias conhecidas, onde >99,9% de similaridade indica uma correspondência de espécie, 98,9%-99,9% de similaridade indica uma possível nova espécie e <98,9% de similaridade indica uma nova espécie ou superior. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Discussão

Numerosos métodos, como mineração de genoma e exame de vias biossintéticas silenciosas, facilitaram a descoberta de novos produtos químicos bioativos nos últimos anos^21,22. No entanto, NPs descobertos usando tais métodos geralmente exibem alta semelhança estrutural com compostos conhecidos. Obter acesso a microrganismos anteriormente não cultivados desbloqueará maior diversidade química e NPs com novos modos de ação que podem ajudar melhor no combate à resistência microbiana. A técnica de isolamento iChip demonstrou aumentar a cultivabilidade de novos microrganismos, que podem ser usados para construir bibliotecas de microrganismos para a descoberta de novos NPs.

A conceituação mais antiga de um iChip foi publicada em 2002, que consistia em anéis metálicos únicos contendo uma mistura de células de ágar selada com membranas semipermeáveis e incubada in situ²³. Mais tarde, foi iterado em 2010 para conter um pequeno chip com muitos poços¹¹, seguido pelo desenvolvimento de um iChip barato construído a partir de materiais comuns de laboratório em uma influente publicação da Nature Protocols em 2017⁹. Várias modificações foram feitas no protocolo da Nature nesta publicação para melhorar sua praticidade e facilidade de uso. O protocolo Nature envolve a colagem de uma membrana semipermeável em ambos os lados de um chip em comparação com esse método, que usa uma tampa de placa adesiva em um lado. Podem surgir problemas ao usar cola de silicone para prender a membrana após o carregamento do iChip. Até onde sabemos, todos os adesivos de silicone não tóxicos emitem ácido acético à medida que endurecem, o que pode afetar a viabilidade celular²⁴. O protocolo descrito neste vídeo também reduz significativamente a quantidade de manuseio necessária após a inoculação, usando a tampa da placa PCR para selar a placa cheia, garantindo ainda mais a esterilidade e reduzindo o tempo de configuração. Com base na identificação de vários novos isolados deste experimento, o uso de apenas uma única membrana semipermeável inibe o aumento nas taxas de descoberta de novos organismos que foi relatado para iChips construídos com duas membranas semipermeáveis. No entanto, mais experimentos com um tamanho de amostra maior seriam necessários para quantificar o impacto.

Outra modificação do método é apenas subcultura dos iChips modificados que contêm crescimento em menos de 25% dos poços. Se as colônias crescem na maioria dos poços de uma placa, provavelmente existem alguns poços que contêm vários microorganismos, mesmo que não sejam facilmente visíveis. Durante o desenvolvimento do método, verificou-se que era praticamente impossível obter culturas axênicas ao subcultivar de poços contendo mais de uma colônia. O isolamento de culturas não axênicas apresenta problemas significativos a jusante em termos de ensaios e identificação de bioatividade. Assim, para simplificar, apenas iChips modificados com colônias crescendo em uma parte dos poços são recomendados para serem subcultivados.

O problema mais significativo que pode surgir com os métodos iChip é a contaminação de poços ou iChips inteiros com outros microrganismos. A contaminação é indicada por colônias que crescem nos poços de controle, ou o mesmo microrganismo que cresce em vários poços ou em uma área inteira do iChip modificado. A fonte de contaminação pode ser devido à esterilização inadequada dos materiais durante a configuração ou técnica asséptica inadequada. Nesses casos, certifique-se de que todos os materiais usados sejam esterilizados em autoclave ou etanol conforme indicado no método e certifique-se de que não ocorra contato entre quaisquer itens não estéreis e o iChip modificado que não seja a mistura de células de ágar. Se um crescimento excessivo de um único microrganismo for observado na parte inferior ou superior de vários poços iChip modificados, é mais provável que seja o resultado de uma vedação incompleta entre os poços e a membrana. Nesse caso, certifique-se de que o adesivo usado seja 100% silicone, que não se degrada em etanol, e certifique-se de que a membrana semipermeável e a cobertura da placa de PCR estejam completamente vedadas ao redor de cada poço durante a construção.

A série de diluições utilizada no protocolo atual deve proporcionar uma diluição adequada para a maioria dos tipos de solo com um período de armazenamento inferior a uma semana, uma vez que inclui uma gama de diluições mil vezes. No entanto, pode haver variação significativa na contagem de microrganismos entre os tipos de solo. Se os poços de controle não contiverem crescimento, mas várias colônias estiverem crescendo em cada poço de todos os quatro iChips modificados, as concentrações de células usadas não foram baixas o suficiente. A série de diluições deve ser modificada para atingir concentrações celulares mais baixas nas misturas de meios celulares utilizadas para configurar os iChips modificados. Do mesmo modo, se não se observar qualquer crescimento em qualquer uma destas placas, as concentrações utilizadas nas misturas células-meios devem ser aumentadas. Alternativamente, é possível que a temperatura do meio utilizado tenha sido muito alta para a sobrevivência dos microrganismos. Nesse caso, o meio deve esfriar o máximo possível sem solidificar antes de ser adicionado à suspensão de células diluídas.

A tecnologia é um avanço importante para superar a grande anomalia da contagem de placas. No entanto, ainda é limitado pela inadequação das técnicas convencionais de cultivo, conforme indicado pelo número de microrganismos que não sobrevivem à transferência do iChip modificado para placas de ágar convencionais. Publicações anteriores relataram que várias rodadas de subcultura e incubação em iChips aumentam ainda mais a cultivabilidade dos microrganismos. O tempo de domesticação prolongado e a exposição a fatores de crescimento do solo durante o uso de ágar no iChip aumentam as chances de uma colônia crescer apenas em ágar. No entanto, não foi relatado que essa abordagem produza uma probabilidade maior de novos microrganismos do que uma única incubação de iChip^25,26.

Muitas outras táticas estão sendo exploradas e modificadas para aumentar a cultivabilidade de novos microrganismos. Por exemplo, a fabricação de um dispositivo iChip inteiro a partir de um material semipermeável foi proposta para facilitar a co-cultura de microrganismos em poços vizinhos²⁷. Dito isto, uma vantagem da construção descrita nesta publicação é seu baixo custo, com o custo de construção de uma placa equivalendo a aproximadamente US$ 12 (US$ 4 por placa de 96 poços, US$ 8 por membrana, US$ 2 por cobertura de PCR). Além disso, sua construção simples o torna uma ferramenta descomplicada quando usada conforme descrito e oferece muitas possibilidades de personalização. Embora este protocolo use um meio seletivo para bactérias, a configuração experimental pode, teoricamente, ser ajustada para atingir uma população microbiana desejada, modificando o meio usado, como o uso de meios supressores de bactérias para atingir fungos ou ágar com baixo teor de nutrientes para esporulação de microrganismos.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
0,1-20 µ Ponteiras de pipeta L	VWR	76322-158	Pacote de 768
tubos PCR de 0,2 mL	ThermoFisher Scientific	AB0337	Caixa de 1000
pipetas monocanal de 0,5-5 mL	VWR	CA11020-004
Frasco de vidro de 1 L	Millipore Sigma	CLS13951L	Deve ser autoclavável.
Placas de Petri de 100 x 15 mm	VWR	25384-342	Caixa de 500
selantes 100% silicone	Marineland	31003
1000 µ L ponteiras de pipeta multicanal	ThermoFisher Scientific	9401113	Caixa de 960
100-1000 µ Ponteiras de pipeta L	VWR	76322-164	Pacote de 768
100-1000 µ L pipeta monocanal	VWR	76169-240
100-1200 µ L pipeta multicanal	ThermoFisher Scientific	46300800	Deve ter 360 µ L capacidade de volume.
1-10 µ L pipeta monocanal	VWR	76169-232
Ponteiras de pipeta de 1-5 mL	VWR	CA11020-008	Pacote de 500
tubos de centrífuga estéreis de 15 mL	VWR	CA21008-918	Caixa de 500
primer rRNA-F de 16s (AGAGTTTGATCCTGGCTCAG) – 10mM	Integrated DNA Technologies	51-01-19-06	10 µ g
16s rRNA-R primer (ACGGCTACCTTGTTACGACTT) – 10mM	Integrated DNA Technologies	51-01-19-07	10 µ g
Broca de cortiça de 4 mm	VWR	470121-860
Tubos de centrífuga estéreis de 50 mL	VWR	CA21008-940	Caixa de 500
etanol a 95%	Thermo Fisher Scientific	A412-500	Placa de 500 mL
com 96 poços	VWR	10062-900	Caixa de 100
Autoclave	Cole-Parmer	UZ-01850-34	8 L, 115 VAC
Ágar bacteriológico	ThermoFisher Scientific	443570010	1 kg
recipiente	Thomas Scientific	1216H91	5 recipientes por embalagem
Casamino ácidos	ThermoFisher Scientific	223120	500 g
Caseína digest	ThermoFisher Scientific	211610	500 g
Eletrofluorese grau agarose	Thermo Fisher Scientific	J66501.30	250 g
Sistema de Imagem iBright FL1500	ThermoFisher Scientific	A44115
Capa de fluxo laminar	Minion CleanTech	1000-6-A
	Oxford Nanopore Technologies	MinIon Mk1C
NanoDrop One/One Microvolume UV-Vis Espectrofotômetro	ThermoFisher Scientific	ND-ONE-W
Água Livre de Nuclease	Thermo Fisher Scientific	AM9937	10 x 50 mL
Nucleobond HMW DNA kit	Takara	740160.2
Toalha de papel	VWR	89402-824
Phusion Green Hot Start II PCR de alta fidelidade Master Mix	Thermo Fisher Scientific	F566L	500 reações
Amido de batata	ThermoFisher Scientific	419690025	2,5 kg
QIAGEN CLC Genomics Workbench Software ou similar	Qiagen
Rapid Barcoding 24 Kit	Oxford Nanopore Technologies	SQK-RBK114.24
Ciclador térmico SimpliAmp	A24811		Applied Biosystems
com agulha	VVWR	76534-512	Caixa de 1000
lâminas cirúrgicas estéreis	VWR	76457-444
SYBR Safe, ou similar	ThermoFisher Scientific	S33101
UltraPure Agarose	ThermoFisher Scientific	16500-500
Vortex	VWR	76549-928	Deve acomodar tubos de centrífuga de 15 e 50 mL
VWR Microscópio Trinocular Stereo Zoom	VWR	89404-476
Whatman  Nuclepore  Membranas Gravadas em Trilho	Millipore Sigma	WHA113502	L x W 8  em. x 10  pol., tamanho do poro 0,03  μ m