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Artigo de método

Ensaios de tolerância ao calor usando o sistema de monitoramento de atividade de Drosophila : um guia para um aplicativo executável para análise de dados

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DOI:

10.3791/67814

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13 de dezembro de 2024

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Neste artigo

Resumo

Este relatório descreve um método para medir o tempo adulto de Drosophila melanogaster para nocautear usando um Drosophila Activity Monitor (DAM2) em resposta a um estressor de calor de condução de ar dentro de uma câmara de incubadora. O DAM2 mede a atividade registrando movimentos individuais de moscas à medida que cruzam um feixe infravermelho. A análise dos dados é facilitada por um novo arquivo executável criado pelos autores.

Resumo

O estudo da tolerância ao calor em Drosophila melanogaster tem sido de particular interesse para os pesquisadores há décadas, com uma abordagem comum para avaliar a tolerância ao calor sendo monitorar o tempo de nocaute (TKD) após a exposição a uma temperatura elevada. Classicamente, as moscas são alojadas em frascos individuais e colocadas dentro de um banho-maria aquecido. O TKD é então monitorado manualmente pelos pesquisadores. Embora muito bem estabelecidos, permanecem problemas de subjetividade e aplicação consistente de uma definição tangível de cessação de todos os movimentos, incluindo espasmos musculares, ao implementar esses ensaios manuais. Desenvolvemos um método de alto rendimento para automatizar ensaios de tolerância ao calor usando os Monitores de Atividade de Drosophila TriKinetics (DAM2). Para acompanhar o sistema DAM2, escrevemos um programa e criamos um executável fácil de usar para ler automaticamente a última vez de movimento a partir dos dados de atividade gerados. Este script então grava em um arquivo .csv o tempo para paralisia de calor (TKD) para cada mosca. Nossos dados mostram que esse método DAM2 automatizado é consistente e confiável. Enquanto isso, os perfis de atividade criados a partir dos dados de contagem de atividades são de interesse. Esses perfis de atividade podem ser compilados e têm o potencial de expandir os ensaios de tolerância ao calor para incluir os componentes comportamentais relativamente não estudados da tolerância ao calor. Este protocolo descreverá em detalhes como usar o sistema DAM2 e o HoTDAM! para estimar a tolerância ao calor em D. melanogaster.

Introdução

Os ectotérmicos geralmente respondem ao estresse térmico com aumento da atividade locomotora. Esse fenômeno tem sido aparente para os pesquisadores há décadas, com a resposta comportamental característica descrita por Cowles e Bogert em 19441. Eles descreveram como um organismo sob estresse térmico mostrará primeiro um aumento do movimento locomotor. À medida que o estresse térmico aumenta, pequenas explosões de atividade são intercaladas com períodos de inatividade. A temperatura na qual o organismo não pode mais mostrar movimento coordenado é o máximo térmico crítico (CTmax). Seguem-se os espasmos musculares e, por fim, o organismo entra em colapso 1,2. Esse colapso é difícil de definir e representa algo semelhante a "rigor térmico, coma ou morte"2. Aqui usaremos o termo colapso fisiológico para teoricamente nos referirmos a esse ponto final embaçado do estresse térmico.

Drosophila melanogaster e outros pequenos insetos têm sido modelos valiosos para estudar o estresse térmico. Para estimar pelo menos uma parte da complexa coleção de características que constituem a tolerância ao calor, muitos pesquisadores observaram manualmente o tempo e a temperatura em que ocorre o colapso fisiológico, representando o tempo para knockdown (TKD) e CTmax, respectivamente. Embora muito bem estabelecidos, esses métodos de ensaio manual sofrem algumas desvantagens. Uma definição operacional de colapso fisiológico pode ser difícil de estabelecer e aplicar adequadamente a todos os casos, especialmente quando os observadores são menos experientes. Por exemplo, em que ponto o organismo passa de espasmos musculares para o colapso? O padrão de espasmos musculares e atividade convulsiva antes do colapso pode ser imprevisível e pode complicar a observação precisa 2,3, ameaçando a exatidão e a precisão. Enquanto isso, a dificuldade de observação também limita o número de organismos que podem ser testados ao mesmo tempo, limitando a escalabilidade.

Como um aumento na atividade é uma resposta consistente ao calor e o TKD e o CTmax são, em última análise, o ponto em que a atividade cessa, procuramos empregar os monitores de atividade de Drosophila (DAM2) da TriKinetics para automatizar os ensaios de tolerância ao calor. Recentemente, publicamos um método para um ensaio automatizado, juntamente com um software fácil de usar, usando o sistema DAM24. O ensaio foi validado comparando medidas de tolerância ao calor em termos de TKD com um ensaio clássico de TKD baseado em observação manual em vários fatores. Também exploramos o componente de atividade locomotora dos ensaios de TKD para caracterizar ainda mais o fenótipo de termotolerância induzível. Chamamos o ensaio e o software que o acompanha de HoTDAM! (Ensaios de tolerância ao calor usando o Sistema de Monitoramento de Atividade de Drosophila). Aqui, fornecemos uma descrição detalhada do método automatizado de ensaio de tolerância ao calor usando o sistema DAM2 e o HoTDAM! software. O ensaio é fácil de usar e é facilmente escalável para permitir a medição de muitos organismos ao mesmo tempo.

Neste manuscrito, realizamos ensaios de TKD em moscas mutantes termossensoriais (potencial receptor transitório anquirina 1; TRPA1) e seus controles genéticos (White1118; W1118). Esses organismos foram escolhidos para enfatizar a importância do aumento da atividade característica observada durante o estresse térmico para o ensaio. Ou seja, os organismos TRPA1 não apresentam esse comportamento de fuga, ilustrando a conexão intrínseca entre as respostas comportamentais conservadas e as estimativas de tolerância ao calor, como o TKD. Realizamos o ensaio para fêmeas e machos, juntamente com a implementação de um pré-tratamento de endurecimento térmico. Os resultados representativos apresentados aqui são dados de ensaios totalmente novos do que aqueles usados nos ensaios de validação originais publicados anteriormente.

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Protocolo

1. Criação de moscas

  1. Escolha o estoque/linha de mosca apropriado para a investigação.
    NOTA: Para ilustrar o ensaio, usamos o estoque de nocaute TRPA1 do potencial receptor transitório e seu controle genético, o estoque w1118 .
  2. Manter as matérias-primas em condições consistentes, conforme adequado. Para seguir este protocolo, armazenar estoques a 25 ° C sob um ciclo diurno de 12:12 em alimentos padrão (fubá, melaço e levedura de torula).
  3. Separe machos e fêmeas com anestesia leve.
    NOTA: Dependendo do experimento, moscas virgens ou acasaladas podem ser usadas.
    1. Permitir que machos e fêmeas adultos (separadamente para ambos os estoques) acasalem e ovipositem por 5 dias. Limpe os adultos das garrafas.
    2. Quando os adultos começarem a fechar vários dias depois, limpe as garrafas novamente. Após 2 dias, separe os machos e as fêmeas com anestesia de éter leve e deixe-os amadurecer separadamente a uma densidade de 25 moscas por frasco.

2. Pré-tratamento

  1. Aplicar o pré-tratamento ou variável independente que definirá os grupos experimentais (genético, ambiental, farmacológico ou outro).
    1. Para seguir este protocolo, separe os adultos por sexo e, após 5 dias, pré-trate metade dos adultos imergindo um frasco lacrado contendo os organismos em banho-maria a 37 °C por 1 h. Manter os controlos na incubadora a 25 °C. Deixar as moscas recuperarem durante 24 horas após o pré-tratamento, antes do ensaio de tolerância ao calor.

3. Configuração do sistema DAM2

  1. Carregue as moscas nos tubos do monitor DAM2 e tampe os tubos em ambas as extremidades com algodão. Se as moscas forem avaliadas quanto à tolerância ao calor imediatamente, não use anestesia enquanto carrega os organismos nos tubos do monitor para evitar possíveis efeitos de confusão associados à exposição à anestesia. Em vez disso, aspire moscas individuais dos frascos de retenção para os tubos do monitor.
  2. Coloque os tubos de ensaio nos monitores de atividade, anotando em quais números de slot os diferentes grupos estão carregados.
    NOTA: Estes podem ser randomizados dependendo do experimento se a localização dentro do monitor puder ser considerada uma variável de confusão.
  3. Software de aquisição de dados DAM2
    NOTA: O sistema e o software DAM2 são descritos detalhadamente na Folha de Dados do Software DAMSystem3 disponível no site da empresa (consulte a Tabela de Materiais). Consulte as instruções do DAM2 para solução de problemas específica e funcionalidade geral. Aqui, fornecemos orientação para o uso do sistema no contexto de nosso ensaio de tolerância ao calor.
    1. O sistema DAM2 monitora o número de vezes que uma mosca individual dentro de cada tubo quebra um feixe infravermelho. O software de aquisição de dados indexa e redefine essa contagem a cada intervalo de tempo definido. Em preferências, selecione o intervalo de leitura a ser usado no ensaio. Encontramos um intervalo de leitura de 15 s para alcançar um bom equilíbrio entre resolução e erros de leitura.
      NOTA: Recomenda-se que o intervalo de leitura não seja menor em segundos do que o número de monitores que estão sendo usados. Um intervalo de leitura mais curto dará melhor resolução temporal ao ensaio, mas também aumentará potencialmente os casos de erros de leitura. O software pode ficar para trás ao tentar indexar as leituras. Além disso, um computador mais novo e mais rápido ajuda muito a evitar erros de leitura.
    2. Ao considerar erros de leitura, certifique-se de que o computador que está sendo usado para executar o software de aquisição de dados DAM2 esteja configurado para nunca dormir ou hibernar para não interromper o ensaio. Além disso, certifique-se de que as atualizações automáticas (incluindo quaisquer atualizações de rede controladas pela instituição) estejam desativadas durante a coleta de dados.
    3. Verifique se todos os monitores estão conectados e se comunicando com o software. Confirme se o status de cada monitor está verde na guia de dados atual .
      NOTA: Consulte a folha de dados do software DAMSystem3 para obter detalhes sobre os problemas a que se referem os diferentes códigos de cores.
    4. O software de aquisição de dados gravará automaticamente as contagens de atividades em arquivos de texto na pasta Dados dentro dos arquivos do sistema. Para facilitar a análise de dados, exclua todos os arquivos de texto dentro desta pasta de dados antes de iniciar o software de aquisição de dados para qualquer ensaio.
      NOTA: Os arquivos de texto serão preenchidos automaticamente, portanto, é permitido removê-los desta pasta para limpar os dados antigos sem impedir o programa.

4. Ensaio de tolerância ao calor

  1. Carregue os monitores na incubadora de ensaios.
  2. Inicie o software de aquisição e deixe o software indexar por um período de tempo definido (por exemplo, 40 índices ou 10 min se o intervalo de leitura for definido como 15 s) antes de aplicar o estresse térmico.
    NOTA: Isso permite alguma aclimatação aos tubos e recuperação do movimento dos monitores durante a configuração. Especialmente se a atividade durante o ensaio estiver sendo analisada, esse tempo de aclimatação estabelecerá uma atividade de linha de base antes da indução do estresse térmico. Dependendo da natureza específica do ensaio que está sendo realizado, essa fase de aclimatação pode ser ignorada, com os monitores colocados diretamente na incubadora já na temperatura de tensão.
  3. Se estiver realizando um ensaio estático (TKD), configure a incubadora para rampar o mais rápido possível para a temperatura nociva definida após o período de aclimatação. A variável resposta será operacionalizada como o último tempo de movimento registrado (ou seja, último índice diferente de zero) para estimar o TKD.
    1. Se estiver realizando um ensaio dinâmico, determine a taxa na qual a temperatura aumentará após o período de aclimatação. Aqui, a variável de resposta medida é tecnicamente o tempo novamente. O tempo em que o último movimento é registrado coincidirá com uma temperatura (CTmax), dependendo da taxa de rampa.
    2. Monitore as contagens de atividades em tempo real na tela do sistema DAM no software de aquisição ou examine diretamente os arquivos de texto na pasta de dados nos arquivos do programa DAMSystem3. Copie os arquivos de texto e abra a cópia em vez do arquivo original na pasta de dados para evitar problemas com a gravação de dados ao vivo.
    3. Depois que nenhum movimento for visto em nenhuma das moscas por vários minutos, pare o software de aquisição.
      NOTA: Com nossos ensaios, descobrimos que alguns a vários minutos de inatividade são indicativos de colapso fisiológico devido ao estresse térmico semelhante ao observado nos ensaios manuais clássicos de TKD. Isso depende, no entanto, do comportamento de fuga espontânea. Como tal, considere possíveis variáveis de confusão se o tratamento específico na investigação puder alterar essa resposta comportamental. Além disso, dependendo dos parâmetros específicos do ensaio (por exemplo, temperatura, tratamento), a duração do ensaio obviamente variará.

5. Organização e análise dos dados

OBSERVAÇÃO: consulte o Vídeo Suplementar S1 para obter um passo a passo de como baixar o aplicativo executável do GitHub, bem como a funcionalidade básica do software.

  1. Depois que os dados forem adquiridos, verifique os arquivos de texto em busca de erros usando o software referenciado (consulte a Tabela de materiais) e selecione pontos de início e parada específicos para os dados da atividade de compartimentalização. Se um intervalo de aclimatação de 10 minutos foi implementado, inicie o binning 10 minutos na gravação da atividade. Consulte a discussão para obter mais detalhes sobre o binning.
  2. Abra o HoTDAM! software de análise e importe os arquivos de dados do monitor digitalizados clicando em Arquivo | carregar dados do monitor.
    NOTA: O software e o aplicativo executável estão disponíveis no GitHub (https://github.com/MatthewR47/HoTDAM) ou no site da empresa na seção Software de análise . Observe que o aplicativo executável é compatível apenas com sistemas operacionais Windows no momento.
  3. Adicione designações de grupo para indicar quais grupos de tratamento correspondem a qual célula dentro dos monitores DAM2.
    NOTA: O layout da interface do software corresponde ao layout dos monitores.
  4. Clique em Iniciar definição de vários grupos para abrir uma caixa de diálogo para adicionar uma designação de grupo que será aplicada a várias células. Assim que a designação do grupo for aceita, clique nas células para aplicar a designação do grupo e, em seguida, clique em Parar designação de vários grupos.
    NOTA: O software organiza e exporta dados DAMSystem3 para .csv arquivos a serem analisados no software de estatística.
  5. Exporte o TKD (ou seja, o último índice diferente de zero) para cada mosca dentro dos monitores para um arquivo .csv clicando em Arquivo | Exportar dados de knockdown | Exportar todos os monitores ou Exportar monitores selecionados. O TKD para cada mosca será organizado na saída por designação de grupo.
  6. Exporte os dados de atividade para cada mosca clicando em Arquivo | Exportar dados de atividade | Exporte todos os monitores ou exporte monitores selecionados para um arquivo .csv, mantendo apenas os dados de carimbo de data/hora e contagem, facilitando o trabalho com o arquivo de dados, ao mesmo tempo em que atribui rótulos de grupo designados para cada mosca.
    NOTA: As primeiras colunas nos arquivos de dados DAMSystem3 correspondem aos dados internos dos monitores (por exemplo, monitoramento de luz ou mensagens de erro) durante a aquisição. Os dados de contagem estão nas colunas 11-42 (consulte a Folha de Dados DamSystem3 para obter detalhes). Exportar os dados da atividade com o software de análise removerá todas as colunas, exceto as colunas de carimbo de data/hora e dados de contagem.
  7. Se estiver realizando um experimento CTmax, use o TKD para determinar o CTmax usando a taxa de rampa de temperatura.
    figure-protocol-1
    NOTA: O software de análise foi escrito de forma orientada a objetos em C# (código-fonte disponível no GitHub; https://github.com/MatthewR47/HoTDAM) de modo que aspectos do programa podem ser facilmente modificados para permitir a personalização para atender a propósitos específicos.

6. Estatísticas

NOTA: Muitos testes diferentes podem ser usados para analisar os dados TKD, dependendo das especificidades da configuração experimental.

  1. Use a análise de sobrevivência (por exemplo, regressão de Cox, Kaplan-Meier) para conceituar o knockdown como um evento que cada mosca dentro do ensaio experimentará.
    NOTA: Para uma revisão detalhada, consulte a série de 4 artigos de Bradburn e Clark discutindo a análise de sobrevivência e sua implementação 5,6,7,8.
  2. Use a ANOVA para avaliar as diferenças de grupo e comparar modalidades, especialmente ao validar o ensaio automatizado para condições específicas.
  3. Analise os dados de TKD usando a análise de sobrevida de Kaplan-Meier. Divida o arquivo por estoque de forma que a análise seja realizada separadamente (por exemplo, para linhas de estoque TRPA1 e w1118). Escolha a variável tempo como TKD (em min), knockdown como o evento, pré-tratamento como fator e sexo como estratos.
  4. Realize os testes log-rank, Breslow e Tarone-Ware para comparar o pré-tratamento para cada estrato (ou seja, sexo), para fins ilustrativos, mostrando vários métodos.
  5. Construa parcelas de sobrevivência.

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Resultados

As análises para os estoques TRPA1 e w1118 foram realizadas separadamente. Os tempos percentuais de TKD e outros descritivos podem ser encontrados na Tabela 1.

Percentisa
SexoTratamento25.00%50.00%...

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Discussão

O método de ensaio de tolerância ao calor que descrevemos aqui é versátil e escalável. Publicamos anteriormente um estudo de validação onde comparamos o HoTDAM! método para um ensaio TKD clássico baseado em observação e descobriu que o ensaio automatizado mostrou a mesma tendência geral em vários fatores4 (Figura 3). Em outras palavras, da mesma forma que o ensaio TKD manual clássico, o ensaio automatizado DAM2 foi capaz de diferenciar organismos por sexo, temperatura...

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Divulgações

Os autores declaram não ter conflitos de interesse.

Agradecimentos

O projeto descrito foi apoiado por bolsas do Prêmio de Desenvolvimento Institucional (IDeA) do Instituto Nacional de Ciências Médicas Gerais dos Institutos Nacionais de Saúde (5P20GM103427 e 1U54GM115458). O Programa de Bolsas de Pesquisa de Graduação da UNK e o Programa de Pesquisa de Verão para Estudantes de Medicina da UNMC.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tubos de ensaio de poliestireno de 14 mLFalcon352057
tanque de peixes de 30 galõesWal-mart
garrafas de 8 ozGenesee32-129F
MemmertHPP750eco
fubáLab ScientificFLY801010
DAM2  Drosophila Activity MonitorTriKineticsDAM2(DAMSystem3 Data Sheet) https://www.trikinetics.com/Downloads/DAMSystem%20Price%20List%202024.7.pdf
DAMSystem software de aquisição de dadosTriKineticsdownload grátis
Drosophilaágar Lab ScientificFLY80201
etanolFisher ScientificBP82011
EtherFisher ScientificE134-4
FileScan softwareTriKineticspara digitalização de erros de texto, binning de dados e saída
FlyStuff Flugs para garrafasGenesee49-100
FlyStuff Flugs para frascosGenesee49-102
Frascos FlyStuffGenesee32-113RL
HoTDAM softwareGithub ou Trikineticshttps://github.com/MatthewR47/HoTDAM
Aquecedor de circulação de imersãoPolyScienceMX-CA11B
melaçoLab ScientificFLY80084
ácido propiônicoFisher ScientificA258-500
Pyrex Tubos de vidro 5 x 65 mm para DAM2TriKineticsPGT 5x65https://www.trikinetics.com/Downloads/DAMSystem%20Price%20List%202024.7.pdf
pincel pequenoWal-mart
SPSS StatisticsIBM
tegoseptLab ScientificFLY55015
torula leveduraMP Biomedicals290308505
TRPA1 mutant stockBloomington Stock Center26504w[1118]; TI{w[+mW.hs]=TI}TrpA1[1]
w1118 stockBloomington Stock center3605
Câmara de Clima Constante

Referências

  1. Cowles, R. B., Bogert, C. M. A preliminary study of the thermal requirements of desert reptiles. Bull Am Mus Nat Hist. 83, 261-296 (1944).
  2. Lutterschmidt, W. I., Hutchison, V. H. The critical thermal maximum: history and critique. Can J Zool. 75, 1561-1574 (1997).
  3. Jørgensen, L. B., Malte, H., Overgaard, J. How to assess Drosophila heat tolerance: Unifying static and dynamic tolerance assays to predict heat distribution limits. Funct Ecol. 33 (4), 629-642 (2019).
  4. Rokusek, B., et al. HoTDAM! An easy-to-use automated assay expands the inducible thermotolerance phenotype in Drosophila melanogaster: Heat hardening reduces motility. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. 286, 111522(2023).
  5. Bradburn, M. J., Clark, T. G., Love, S. B., Altman, D. G. Survival analysis part III: Multivariate data analysis - Choosing a model and assessing its adequacy and fit. Br J Cancer. 89 (4), 605-611 (2003).
  6. Bradburn, M. J., Clark, T. G., Love, S. B., Altman, D. G. Survival analysis part II: Multivariate data analysis- An introduction to concepts and methods. Br J Cancer. 89 (3), 431-436 (2003).
  7. Clark, T. G., Bradburn, M. J., Love, S. B., Altman, D. G. Survival analysis part IV: Further concepts and methods in survival analysis. Br J Cancer. 89 (5), 781-786 (2003).
  8. Clark, T. G., Bradburn, M. J., Love, S. B., Altman, D. G. Survival analysis part I: Basic concepts and first analyses. Br J Cancer. 89 (2), 232-238 (2003).
  9. Hazra, A., Gogtay, N. Biostatistics series module 9: survival analysis. Indian J Dermatol. 62 (3), 251-257 (2017).
  10. Stevenson, R. D. The relative importance of behavioral and physiological adjustments controlling body temperature in terrestrial ectotherms. Am Nat. 126 (3), 362-386 (1985).
  11. Grigg, G. C., Beard, L. A., Augee, M. L. The evolution of endothermy and its diversity in mammals and birds. Physiol Biochem Zool. 77 (6), 982-997 (2004).
  12. Soto-Padilla, A., et al. Thermosensory perception regulates speed of movement in response to temperature changes in Drosophila melanogaster. J Exp Biol. 221 (10), jeb174151(2018).
  13. Hoffmann, A. A., Sørensen, J. G., Loeschcke, V. Adaptation of Drosophila to temperature extremes: bringing together quantitative and molecular approaches. J Therm Biol. 28 (3), 175-216 (2003).
  14. Terblanche, J. S., et al. Ecologically relevant measures of tolerance to potentially lethal temperatures. J Exp Biol. 214 (22), 3713-3725 (2011).
  15. Rezende, E. L., Castaneda, L. E., Santos, M. Tolerance landscapes in thermal ecology. Funct Ecol. 28 (4), 799-809 (2014).
  16. MacLean, H. J., Hjort Hansen, J., Sørensen, J. G. Validating the automation of different measures of high temperature tolerance of small terrestrial insects. J Insect Physiol. 137, 104362(2022).
  17. Gioia, A., Zars, T. Thermotolerance and place memory in adult Drosophila are independent of natural variation at the foraging locus. J Comp Physiol A. 195, 777-782 (2009).
  18. Kjærsgaard, A., et al. The effect of developmental temperature fluctuation on wing traits and stressed locomotor performance in Drosophila melanogaster, and its dependence on heterozygosity. Evol Ecol Res. 14 (7), 803-819 (2012).
  19. Bak, N. K., Rohde, P. D., Kristensen, T. N. Strong sex-dependent effects of malnutrition on life- and healthspan in Drosophila melanogaster. Insects. 15 (1), 9(2023).
  20. Bettencourt, B. R., et al. Natural variation in Drosophila stressed locomotion meets or exceeds variation caused by Hsp70 mutation: analysis of behavior and performance. Behav Genet. 393, 306-320 (2009).
  21. Kjærsgaard, A., et al. Locomotor activity of Drosophila melanogaster in high temperature environments: plastic and evolutionary responses. Clim Res. 43 (1-2), 127-134 (2010).

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